Chemically induced hypoxia has been shown to induce a depletion of ATP. Since intracellular free $Mg^{2+}\;([Mg^{2+}]_i)$ appears to be tightly regulated following cellular energy depletion, we hypothesized that the increase in $[Mg^{2+}]_i$ would result in $Mg^{2+}$ extrusion following hormonal stimulation. To determine the relation between $Mg^{2+}$ efflux and cellular energy state in a hypoxic rat heart and isolated myocytes, $[Mg^{2+}]_i,$ ATP and $Mg^{2+}$ content were measured by using mag-fura-2, luciferin-luciferase and atomic absorbance spectrophotometry. $Mg^{2+}$ effluxes were stimulated by norepinephrine (NE) or cAMP analogues, respectively. $Mg^{2+}$ effluxes induced by NE or cAMP were more stimulated in the presence of metabolic inhibitors (MI). Chemical hypoxia with NaCN (2 mM) caused a rapid decrease of cellular ATP within 1 min. Measurement of $[Mg^{2+}]_i$ confirmed that ATP depletion was accompanied by an increase in $[Mg^{2+}]_i.$ No change in $Mg^{2+}$ efflux was observed when cells were incubated with MI. In the presence of MI, the cAMP-induced $Mg^{2+}$ effluxes were inhibited by quinidine, imipramine, and removal of extracellular $Na^+.$ In addition, after several min of perfusion with $Na^+-free$ buffer, a large increase in $Mg^{2+}$ efflux occurred when $Na^+-free$ buffer was switched to 120 mM $Na^+$ containing buffer. A similar $Mg^{2+}$ efflux was observed in myocytes. These effluxes were inhibited by quinidine and imipramine. These results indicate that the activation of $Mg^{2+}$ effluxes by hormonal stimulation is directly dependent on intracellular $Mg^{2+}$ contents and that these $Mg^{2+}$ effluxes appear to occur through the $Na^+-dependent\;Na^+/Mg^{2+}$ exchange system during chemical hypoxia.
We have investigated the effect of extracellular $Mg^{2+}$ ($[Mg^2+]_o$) on action potential duration (APD) in guinea pig papillary muscles by using microelectrodes. Increasing $[Mg^2+]_o$ resulted in progressive negative inotropic effect, progressive ascending depolarization of membrane potential, and increase in intracellular $Mg^{2+}$ concentration. In addition, increase in $[Mg^2+]_o$ from 1.1 to 3, 6, 10, and 20 mM produced a reversible dose-dependent shortening of both APD at 30% ($APD_{30}$) and 90% repolarization ($APD_{90}$), especially showing a tendency towards more remarkable prominent shortening in $APD_{30}$ than $APD_{90}$. Cooling from 37 to 33 and $27^{\circ}C$ diminished the $[Mg^2+]_o$-induced APD shortening. Increase in extracellular $Ca^{2+}$ concentration from 1.8 to 3.6 and 5.4 mM caused a significant depressed effect on the increasing $[Mg^2+]_o$-induced APD shortening. Furthermore, increase in $[Mg^2+]_o$ from 1.1 to 10 and 20 mM produced a significant depressed effect on the APD shortening induced by extracellular $Ca^{2+}$. Pretreatment of verapamil and imipramine significantly attenuated the increasing $[Mg^2+]_o$-induced APD shortening in both $APD_{30}$ and $APD_{90}$, whereas the $[Mg^2+]_o$-induced APD shortening was not affected by strophanthidin, glibenclamide and tetrabutylammonium. These findings suggest that the effects of $[Mg^2+]_o$ on APD are probably due to a decrease in ionic transport across plasma membrane. In conclusion, the present study indicates that $[Mg^2+]_o$ exerts antiarrhythmic activities by antagonistic actions on intracellular $Ca^{2+}$.
$Mg^{2+}$ is an important regulator of many cardiac functions. However, regulation of intracellular $Mg^{2+}$ activity in the heart is not well characterized. To assess the effect of histamine $H_2$-receptor stimulation on intracellular $Mg^{2+}$ regulation, changes in extracellular $Mg^{2+}$ concentration were examined under a variety of conditions in perfused guinea pig hearts. $Mg^{2+}$ in the cardiac perfusate was measured by atomic absorbance spectrophotometry. The histamine ($10^{-6}$ M) inuced a marked $Mg^{2+}$ efflux from the heart. The $H_2$-receptor antagonists, cimetidine ($10^{-6}$ M), ranitidined ($10^{-5}$ M), but not a H1-receptor antagonist, diphenhydramine ($3{\times}10^{-6}$ M), completely blocked the histamine-induced $Mg^{2+}$ efflux. The $Mg^{2+}$ efflux could also be induced by forskolin ($3{\times}10^{-6}$ M), 8-Cl-cAMP ($2{\times}10^{-4}$ M), permeable cAMP analogue, or dimaprit, ($10^{-5}$ M). However, the carbachol ($10^{-5}$ M) considerably decreased the efflux of $Mg^{2+}$. In the presence of papaverine ($10^{-5}$ M), a phosphodiesterase inhibitor, dimaprit-induced $Mg^{2+}$ efflux was potentiated. These results suggest that a significant $Mg^{2+}$ efflux from perfused guinea pig heart by histamine can be induced by the histamine $H_2$-receptor stimulation and it is suggested that cytosolic cAMP may be linked.
Recent studies have implicated reactive oxygen species (ROS) as determinants of the pathological pain caused by the activation of peripheral neurons. It has not been elucidated, however, how ROS activate the primary sensory neurons in the pain pathway. In this study, calcium imaging was performed to investigate the effects of NaOCl, a ROS donor, on the intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]i$) in acutely dissociated dorsal root ganglion (DRG) neurons. DRG was sequentially treated with 0.2 mg/ml of both protease and thermolysin, and single neurons were then obtained by mechanical dissociation. The administration of NaOCl then caused a reversible increase in the $[Ca^{2+}]i$, which was inhibited by pretreatment with phenyl-N-tertbuthylnitrone (PBN) and isoascorbate, both ROS scavengers. The NaOCl-induced $[Ca^{2+}]i$ increase was suppressed both in a calcium free solution and after depletion of the intracellular $Ca^{2+}$ pool by thapsigargin. Additionally, this increase was predominantly blocked by pretreatment with the transient receptor potential (TRP) antagonists, ruthenium red ($50\;{\mu}M$) and capsazepine ($10\;{\mu}M$). Collectively, these results suggest that an increase in the intracellular calcium concentration is produced from both extracellular fluid and the intracellular calcium store, and that TRP might be involved in the sensation of pain induced by ROS.
An intracellular protease form cells of Pseudomonas carboxydovorans DSM 1227 grown on carbon monoxide was purified 57-fold in six steps to homogeneity with a yield of 4.3% using azocoll as a substrate. The molecular weight of the enzyme was determined to be 150,000. Sodium dodecyl sulfate-gel electrophoresis revealed the purified enzyme to be a dimer with two identical subunits of molecular weight 72,000. The enzyme was stimulated by $Mg^{2+}$ but was inhibited completely by $Cd^{2+}$$Fe^{2+}$$Hg^{2+}$, and $^Zn{2+}$ The enzyme activity was also inhibited by EDTA, EGTA, phenylmethylsulfonyl fluoride, and phenyl glyoxal, but was increased by 1-ethyl-3(dimethyl aminopropyl fluoride, and phenyl glyoxal, but was increased by 1-ethyl-3(dimethyl aminopropyl)carbodiimide, iodoacetamide and dithiothereitol. The optimal pH and temperature for the enzyme reaction were found to be 7-8 and 50.deg.C, respectively. Casein and bovine serum albumin were hydrolyzed by the enzyme, but carbon monoxide dehydrogenase was not.
An intracellular protease from cells of Pseudomonas carboxydohydrogena grown on nutrient broth was purified to better than 95% homogeneity in five steps using azocaseine as a substrate. The molecular weight of the native enzyme was determined to be 125, 000. Sodium dodecyl sulfate-gel electrophoresis revealedat least two non-identical subunits of molecular weight 70, 000 and 56, 000. The enzyme activity was completely ingibited by phenylmethylsulfonyl fluoride and diisopropyl fluorophosphate. The enzyme was also inhibited by $Mg^{2+}$ , $Zn^{2+}$ , $Cd^{2+}$, $Cu^{2+}$ , and $Fe^{2+}$ , but was stimulated by iodoacetamide. Maximal reaction rate of the enzyme was observed at pH8.0 and 30.deg.C. The isoelectric point of the enzyme was found to be 7.5. The enzyme was unable to hydrolyze carbon monoxide dehydrogenase.
The objective of this study was to evaluate the antioxidant effects and acetylcholinesterase (AChE) inhibition activity of mulberry fruit extracts prepared by hot water (MFH) and 80% ethanol (MFE). Total polyphenolic contents of MFH and MFE were $195{\pm}3.4\;mg$ gallic acid equivalents/g MFH and $185{\pm}2.8\;mg$ gallic acid equivalents/g MFE. MFH and MFE significantly quenched 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), hydrogen peroxide dose-dependently, and showed high chelating ability and reducing power in non-cellular systems. MFH and MFE also inhibited the formation of intracellular reactive oxygen species and lipid peroxidation, and elevated intracellular glutathione (GSH) levels in RAW264.7 cells. In addition, MFH and MFE also dose-dependently suppressed AChE activity.
Previously, we have reported that methylene blue (MB) induces cytotoxicity in human brain tumor cells through the generation of free radicals. In this study the effect of deferoxamine (DFO), an iron chelator, on MB-induced cytotoxicity was investigated using SK-N-MC human neuroblastoma and U-373 MG human astrocytoma cells as model cellular systems. The cytotoxic effect of MB was potentiated by DFO. The potentiation effect of DFO was significantly blocked by either stoichiometric amounts of ferric ion, various antioxidants, hydroxyl radical scavengers or intracellular $Ca^{2+}$ release blockers. These results suggest that hydroxyl radical and intracellular $Ca^{2+}$ may act as important mediators of the enhanced cytotoxicity by MB and DFO. These results further suggest that the combined treatment with MB and DFO may be useful for the therapeutical applications of human brain tumors.
Kim, Jin-Kyoung;Ko, Jae-Hong;Nam, Joo-Hyun;Woo, Ji-Eun;Min, Kyeong-Min;Earm, Yung-E;Kim, Sung-Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.9
no.2
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pp.69-75
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2005
TRPM7, a cation channel protein permeable to various metal ions such as $Mg^{2+}$, is ubiquitously expressed in variety of cells including lymphocytes. The activity of TRPM7 is tightly regulated by intracellular $Mg^{2+}$, thus named $Mg^{2+}$-inhibited cation (MIC) current, and its expression is known to be critical for the viability and proliferation of B lymphocytes. In this study, the level of MIC current was compared between immature (WEHI-231) and mature (Bal-17) B lymphocytes. In both cell types, an intracellular dialysis with $Mg^{2+}$-free solution (140 mM CsCl) induced an outwardly-rectifying MIC current. The peak amplitude of MIC current and the permeability to divalent cation ($Mn^{2+}$) were several fold higher in Bal-17 than WEHI-231. Also, the level of mRNAs for TRPM7, a molecular correspondence of the MIC channel, was significantly higher in Bal-17 cells. The amplitude of MIC was further increased, and the relation between current and voltage became linear under divalent cation-free conditions, demonstrating typical properties of the TRPM7. The stimulation of B cell receptors (BCR) by ligation with antibodies did not change the amplitude of MIC current. Also, increase of extracellular $[Mg^{2+}]_c$ to enhance the $Mg^{2+}$ influx did not affect the BCR ligation-induced death of WEHI-231 cells. Although the level of TRPM7 was not directly related with the cell death of immature B cells, the remarkable difference of TRPM7 might indicate a fundamental change in the permeability to divalent cations during the development of B cells.
To investigate effect of caffeic acid on the intracellular reactive oxygen species production, we used DHE for intracellular superoxide anion production, DCF for intracellular ${H_2}{O_2}$ production and DHR for intracellular hydroperoxide production in Raw 264.7 cells. DPPH assay showed that antioxidant activity of caffeic acid with 39.5 ${\mu}M$ of ${IC}_{50}$ values was similar to that of ascorbic acid with 41.3 ${\mu}M$ of ${IC}_{50}$ values. Caffeic acid dose-dependently inhibited silica-induced ${H_2}{O_2}$ and hydroperoxide production but did not affect superoxide anion production in Raw 264.7 cells, which suggest that antioxidant effect of caffeic acid acts on the post-step of superoxide anion. On the other hand, caffeic acid showed a potent antioxidant effect in $lCuSO_4$-induced lipid peroxidation. Furthermore, plasma superoxide dismutase activity (3.43${\pm}$0.23 U/ml) in 10 mg/kg caffeic acid-fed mice was significantly higher than that (2.32${\pm}$0.24 U/ml) of control. From the above results, it is referred that caffeic acid appears to have potent anti-oxidant activity in both cell system and in vivo system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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