The objective of this study was to develop an effective in vitro production system capable of obtaining more porcine embryos from immature oocytes. These experiments were thus conducted to examine the effect of oocytes type and maturation time on the in vitro maturation(IVM) and fertilization(IVF) of oocytes and the in vitro development (IVD)of IVF embryos. 1. The degree of oocyte maturation based on cumulus expansion index(GEI) did not differ for A- and B-typed oocytes but the index of oocyte type C was lower(P<0.05) than that of other oocyte types. 2. When the oocytes of type A and B were matured for 36, 42 and 48hrs, the GEl was not different between the 36- and 42-h maturation but the GEl after 48hrs was greatly lower(P<0.05) than that of other maturation times. 3. The highest cleavage rate(48.6%) of IVF oocytes was obtained from A typed oocytes and 42-h maturation but the developmental potential based on cleavage index was the highest when B-typed oocytes were matured for 42hrs.
Although piglets have been delivered by embryo transfer (ET) with in vitro produced (IVP) embryos and blastocysts, a success rate has still remained lower level. Unlike mouse, human, and bovine, it is difficult to a production of piglets by in vitro fertilization (IVF) because of an inappropriate in vitro culture (IVC) system in pig. Therefore, the present study was conducted to investigate whether minimized exposure time in IVC can improve the pregnancy and delivery rates of piglets. Immediately after IVM, the oocytes were denuded and co-incubated with freshly ejaculated boar semen for 3.5 to 4 hours at $38.5^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air. To avoid long-term exposure to in vitro state, we emitted IVC step after IVF. After that the presumptive zygotes were transferred into both oviducts of the surrogate on the same day or 1 day after the onset of estrus. Pregnancy was diagnosed on day 28 after ET and then was checked regularly every month by ultrasound examination. The 3 out of 4 surrogates were determined as pregnant (75%) and a total of 5 piglets (2 females and 3 males) were delivered at $118.3{\pm}2.5$ days of pregnancy period. In conclusion, a short-term exposure time may be an important factor in the production of IVP-derived piglets. It can be apply to the in vitro production system of transgenic pig by IVF, cloning, and pronuclear microinjection methods.
Objective: To evaluate incidence of microbial growth from the tip of the embryo transfer catheter after embryo transfer in relation to clinical pregnancy rate following in-vitro fertilization and embryo transfer. Method: This study was performed prospectively at the time of transcervical embryo transfer following conventional in-vitro fertilization and intracytoplasmic sperm injection procedures. Sixty three patients were enrolled in this study. Microbiological cultures were performed on endocervical swabs and embryo transfer catheter tips. Results: Positive microbial growths were observed from endocervical swabs in 45 (71.4%) women and from catheter tips in 30 (47.6%) women. There was no statistically significant difference seen in the mean number of oocytes fertilized or number and grade of embryos transferred between the group of patients without growth and the group of patients with positive microbial growth from catheter tips. The clinical pregnancy rate were 30.3% in the group of patients without growth and 13.3% in the group with positive microbial growth from catheter tips. This difference in clinical pregnancy rates was statistically significant. Conclusion: Our finding is that microbial contamination at embryo transfer may influence implantation rates. The major questions arising from our finding are whether eradication of endocervical micro-organisms is possible and whether their eradication will improve implantation rates.
The effect of bovine growth hormone digested with trypsin on whole-body protein synthesis in vitro of chicken embryos was investigated by using a whole-embryo culture system. Bovine growth hormone at 5.3 and 530 ng/ml was digested partially and completely with trypsin for 4 min and 18 h, respectively. After culturing chicken embryos with a synthetic medium containing $L-[4-^3H]$ pheylalanine, whole-embryo protein synthesis was determined from the ratio of specific radioactivities of free and protein-bound pheylalanine. Whole-embryo protein synthesis of the control group cultured with no bovine growth hormone was $49.5{\pm}2.2%/d$. There was no significant interaction between digestion time and the concentration of trypsin-digested bovine growth hormone. Tryptic digestion of bovine growth hormone increased fractional synthesis rates of whole-body protein compared to the 0-min groups, and there was no significant difference between the 4-min and 18-h groups. The higher concentration (530 ng/ml) of trypsin-digested bovine growth hormone was more effective in enhancing whole-embryo protein synthesis than the lower concentration (5.3 ng/ml).
Despite the frequent incidence of embryo fragmentation in early human embryos, the reason of the embryo fragmentation has not been known yet. This study was conducted to investigate the histological difference(s) between fragmented (FR) and non-fragmented (NFR) human embryos focusing on comparison of mitochondrial distribution and protein synthesis. Multi-pronuclei zygotes (MPZ) such as three or more pronuclei containing in human in vitro fertilization and embryo transfer (IVF-ET) program were used for this study. MPZ were cultured in TCM-199 supplemented with 10% of human fetal cord serum (hFCS) in 5% $CO_2$ incubator at $37^{\circ}C$ for 24 hours. The cleaved embryos to 2-4 cells after 24 hours were grouped by their grade of fragmentation. Embryos were stained with Rhodamine123 (Rh123) and fluorescence was evaluated under the fluorescence microscope through PB 450-490 filter (Leitz). Regarding to protein synthesis during early human embryogenesis, there is no significant difference in the amount of synthetic proteins between FR and NFR embryos. Distribution of cytoplasmic organelles in embryos was evaluated by transmission electron microscope (TEM). The cytoplasmic distribution of mitochondria was different between FR and NFR embryos. The mitochondrial distribution was even in NFR, whereas severely aggregated in FR. It is not able to clarify in the present study whether this uneven mitochondrial distribution in FR embryo is the reason for embryo fragmentation or is the result from fragmentation. Physiological disparity related to the mitochondrial distribution may be one of the reasons for embryo fragmentation. Further studies should be addressed to investigate the physiological differences between FR and NFR embryos.
The present study was conducted to investigate the influence of embryo cell stage at 18h post-fusion and oocyte preactivation on sebsequent in vitro developmental potential in the nuclear transplant rabbit embryos. The embryos of 16-cell stage were collected and synchronized to G$_1$ phase of 32-cell stage. The recipient cytoplasms were obtained by removing the first polar body and chromosome rnass from the oocytes collected by non-dis-ruptive microsurgery procedure. The separated G$_1$ phase blastomeres of 32-cell stage were injected into non-preactivated recipient cytoplasms. Otherwise, the enucleated recipient cytoplasms were preactivated by electrical stimulation at 18h post-hCG injection and the separated G$_1$ phase blastomeres of 32-cell stage were injected. Mter culture until 20h post-hOG injection, the nuclear transplant oocytes were electrofused by electrical stimulation. The fused nuclear transplant embryos were classified into 3~4-cell, 2-cell and 1-cell stage at 18 hrs post-fusion and cultured until the embryos reached blastocyst stage. The developmental rate to blastocyst stage was significantly (P <0.05) higher in all the reconstituted embryos of 3~4-cell stage(58.0%) than in 2 and icell stage. The developmental rate to blastocyst stage in the embryos of 3~4-cell stage at 18 hrs post-fusion was significantly (P<0.05) higher in the reconstituted without oocyte preactivation(77.8%) than in the oocyte-preactivated embryos (33.3%). These results indicated that the higher rate of in the in vitro development to blastocyst stage might be obtained form the embryos which were reconstituted with nuclear donor of G$_1$ phase and non-preactivated oocyte, and developed more rapidly for 18 hrs post-fusion.
As a simple and economical method for in vitro produced embryos, we have used BSA instead of serum for the production and embryo transfer of Hanwoo in vitro fertilized (IVF) embryos and obtained the following results: 1) When using serum (FBS; fetal bovine serum) or BSA-containing culture media as the initial culture media for immature oocytes, it is regarded as inappropriate to add only BSA to the culture solutions from maturation of the immature oocytes to development stage culture, but serum still needs be added though there is no significant difference in the concentration, with a change from 5% to 10%. 2) The results of culturing IVF embryos after development (4 cell stage) in the Medium199 solutions containing BSA instead of serum (FBS) showed that 0.3% BSA concentration is not optimal and 0.5% or higher BSA concentration has no significant difference among 0.5%, 0.7%, 1% and 2% (p > 0.05). 3) The post-freezing survival ratio after development in 5% FBS-Medium199 showed that 1% BSA concentration of the culture solution is the most suitable in the BSA concentrations of 0.3% (51%), 0.5% (67%), 0.7% (69%), 1% (77%) and 2% (75%). 4) The pregnancy rates of the transplanted fresh(not frozen) blastocyst had no significant concentration dependency (p > 0.5), and the average pregnancy rate was 63.8%. 14% of overweight calves were found among the calves given birth to by the transfer of IVF blastocysts cultured in the serum-added culture solution, but none was found in the experimental groups in which BSA was added instead of serum.
Cytokines are protein mediators that possess the ability to assist cell-to-cell communication in immune system-related activities. In general, pathogen endotoxins activate the release of inflammatory mediators, and with time, there is an increase in the cytokine levels in the body. Interleukin (IL)-6 mediates the acute-phase inflammatory response, and elevated IL-6 levels have been reported in peritoneal fluids of women with pelvic inflammation and endometriosis, thereby associating it with oocyte quality and infertility. To overcome subfertility or infertility in humans and animals, the present study was done to examine the effect of recombinant IL-6 on porcine oocytes matured in vitro and subsequently to determine the fertilization rate and embryo development. Porcine oocytes were incubated with varying concentrations of IL-6 (0 - 2 ㎍·mL-1) for 44 h followed by in vitro fertilization and culturing of the oocytes. The oocytes or embryos were fixed with 3.7% paraformaldehyde (PFA) and stained with fluorescence dyes, and the meiotic spindle, chromosome organization, fertilization status and embryo development were subsequently assessed under a fluorescence microscope. We observed induction of an abnormal meiotic spindle alignment in the oocytes incubated with IL-6 compared to the control oocytes incubated without IL-6. Moreover, significantly decreased fertilization rates and embryo development were observed for oocytes incubated with IL-6 (p < 0.05). Thus, an increased IL-6 level during oocyte maturation could be associated with fertilization failure due to an aberrant chromosomal alignment and a disruption of the cortical granules. Taken together, our results indicate that successful assisted reproduction can be achieved by controlling the levels of inflammatory cytokines.
Kim, Sung Woo;Kim, Min Su;Kim, Chan-Lan;Kim, Dongkyo;Kim, Namtae;Seong, Hwan-Hoo
Journal of Embryo Transfer
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v.31
no.3
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pp.191-197
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2016
Historically, Korea old cattle had been consisted with various lines of coat color brindle, black and white-brown breeds or more. The two rare lines of black and white coat color are maintained for animal resources and preserved critically. The present study was carried out to evaluate potential usage of cysteamine supplementation during in vitro matration (IVM) and in vitro culture/production of embryo (IVP) by transvaginal ultrasound-guided follicle aspiration (Ovum Pick-Up: OPU) for the establishment of cryo-banking system. Immature slaughterhouse-derived cumulus-oocyte complexes (SL-COCs) were matured in IVM medium supplemented with 0, 0.1, 0.3 or 0.9 mM cysteamine, and then cultured in mSOF-BAS for 8 days after in vitro fertilization. The treatment of 0.1 mM cysteamine on SL-COCs showed higher rate of blastocyst, so OPU-derived COCs from rare breeds were matured in TCM media supplemented with or without 0.1 mM cysteamine, FSH and 5% FBS. The embryos were evaluated their developmental stages on day 8. During IVM, cysteamine treatment significantly increased the embryo production rate of slaughterhouse-derived COCs (19.6% vs. 30.5%). The presence of cysteamine during IVM of OPU-derived COCs from rare Korean cattle breeds (albino white and black line) also increased embryo production rates than those from SL-COCs (27.4% vs. 41.9% and 36.4%). With these results, cysteamine treatment during IVM is one of key factors IVP of blastocysts to establish banking system of endangered rare Koarean cattle with OPU derived transferable blastocysts.
This study was conducted to determine the optimal DC voltage for NT of in vivo donor embryo nuclei and investigate the effect of donor embryo guality on fusion and in vitro development of NT embryos . Recpient oocytes were enucleated 25~27h after IVM and further cuitured for 18~20h prior to fusion for oocyte aging. Donor embryos of molura stage were recovered from superovulated heifers and classified l into good and low quality group. Their nuclei were transferred in to the emucleated oocytes 42~44h post-IVM and fused 43-45h post-IVM with a single 0.75kV /cm or 1.0kV /cm DC voltage for 70${\mu}\textrm{A}$sec. The fusion rate of oocytes was not different between two DC voltages. However, the cleavage and M + B developmnent was more high at 1.0kV /cm DC voltage and the proportion of M+B was 19.0% at 0.75kV /cm DC and 29.4% at 1.0kV /cm DC voltage. Donor embryo qualtiy did not greatly affect the fusion and cleavage of NT oocytes, but none of NT embryos derived from low embryo quatity reached the morula stage. The results indicate that the most suitable DC v voltage for electrofusion of in vivo donor muclei was a single 1.0kV /cm DC voltage and donor embryo quality was an important factor affecting the development in vitro of NT embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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