In this study we examined two ester-containing cross-links, hex-2-enyl acetate and hex-2-enyl propionate, as new cross-linking systems for helix stabilization of short peptides. We demonstrated that these hexenyl ester cross-links can be readily installed via a ruthenium-mediated ring-closing metathesis reaction of L-aspartic acid 4-allyl ester or L-glutamic acid 5-allyl ester at position i and (S)-2-(4'-pentenyl)alanine at position i+4 using second generation Hoveyda-Grubbs catalyst at $60^{\circ}C$. Between these two cross-links, we found that the hex-2-enyl propionate significantly stabilizes the ${\alpha}$-helical conformations of short model peptides. The helix-stabilizing effects of the hex-2-enyl propionate tether appear to be as powerful as Verdine's i,i+4 all-hydrocarbon stapling system, which is one of the most widely used and the most potent helix-stabilizing cross-linking systems. Furthermore, the hex-2-enyl propionate bridge is reasonably robust against non-enzymatic hydrolytic cleavage at a physiological pH. While extended studies for probing its chemical scopes and biological applications are needed, we believe that this new helix-stabilizing system could serve as a useful chemical tool for understanding protein folding and designing conformationally-constrained peptide drugs.
Hydrolytic peptides of salted and fermented anchovy sauce, and anchovy actomyosin for the development of a rapid fermentation method with conventional tastes and flavors were studied. The optimal temperatures of crude enzymes isolated from anchor, liver and viscera of squid were 55, 40$\~$45 and $45\~60^{\circ}C$, respectively. Crude enzyme isolated from anchovy was more effective on hydrolysis of anchovy actomyosin than that from squid liver and viscera. But the crude enzyme from squid liver was less effective on NaCl than that from anchovy. Three peptides occurred in anchovy actomyosin hydrolyzed with crude enzymes from anchovy and squid liver for 30 min. Their molecular weight were determined by Superdex 200 gel chromatography as 10,800, 5,800 and 2,600 dalton. When anchovy sauce was hydrolyzed with crude enzymes of anchovy, squid liver and viscera, and Protamex during 70 days, ranges of their low molecular weight of hydrolyzed peptides were 300$\~$1,000dalton detected by Sephadex G-50 and their major amino acid compositions were glutamic acid, glycine and alanine, which was related with conventional tastes. Those amino acid compositions were similar to those of anchovy sauce hydrolyzed with squid liver, In the case of Protamex treatment, hydrolyzed peptides had high levels of isoleucine and leucine, being associated with the bitter, but a low level of glutamic acid.
Yu, Jae Min;Renchinkhand, G.;Jeong, Seok Geun;Bae, Hyoung Churl;Nam, Myoung Soo
Korean Journal of Agricultural Science
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v.40
no.3
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pp.221-226
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2013
Degrees of hydrolysis by alkaline protease produced from Serratia marcescens S3-R1 is 3.95-6.30% of whey proteins during 5, 15, 30, 60, 90, 120,180, 240 min incubation at $40^{\circ}C$. Proteolytic pattern of the whey proteins showed that various low molecular weight peptides were generated during the incubation periods. The biological function of in Raw 264.7 cells treated with whey protein hydrolytic peptides, anti-inflammatory effect showed exhibit in the expression of pro-inflammatory cytokines such as TNF-${\alpha}$, IL-6, COX-2 and iNOS by PCR analysis. COX-2 and iNOS gene expression inhibited in Raw 264.7 cells on whey protein hydrolysates below 3,000 dalton. The protease from Serratia marcescens S3-R1 showed a potential in production of low molecular weight whey protein hydrolysates which could be used for industrial application.
The purpose of this study was to prepare low-molecular weight collagen using a commercial proteolytic enzyme (Protamex) from collagen extracted from feet of Korean native chicken and to investigate the quality characteristics of this collagen. The collagen content of Korean native chicken feet was 13.9 g/100 g, which was higher than the 6.21 g/100 g of general broilers. It was found that the content of low molecular weight collagen increased as the concentration of proteolytic enzymes and reaction time increased. In particular, reaction with 1% Protamex for 7 h resulted in 55.6% of low molecular weight (1,000-5,000 Da) collagen content, and the average molecular weight was 5,390 Da. Regarding the texture of the enzyme-treated collagen, the collagen with high molecular weight peptides decomposed into low molecular weight peptides, and the gel type could not be formed, whereas the sol type was maintained.
Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry (MALDI-TOF-MS) was used to demonstrate cross-linking of peptides induced by transglutaminase. The presence of ε-( Υ-glutamyl)lysine isopeptide cross-link in the acid hydrolysate of the cross-linking reaction mixture was also demonstrated by MALDI-TOF-MS without prior separation. MALDI-TOF-MS quickly provided peptide mass maps after pronase digestion of the cross-linked peptide adduct, which enabled us to monitor the hydrolytic sequence. Pronase appears to preferentially hydrolyze peptide bonds distant from the cross-link before hydrolyzing peptide bonds around the cross-link. The results suggest that pronase digestion followed by MALDI-TOF-MS could be used for determination of amino acid sequence around a modification site.
Recently, genetic engineering techniques have been used to display various heterologous peptides and proteins (enzyme, antibody, antigen, receptor and fluorescence protein, etc.) on the yeast cell surface. Living cells displaying various enzymes on their surface could be used repeatedly as 'whole cell biocatalysts' like immobilized enzymes. We constructed a yeast based whole cell biocatalyst displaying T. reesei cellobiohydrolase I (CBH I ) on the cell surface and endowed the yeast-cells with the ability to degrade cellulose. By using a cell surface engineering system based on ${\alpha}-agglutinin,$ CBH I was displayed on the cell surface as a fusion protein containing the N-terminal leader peptide encoding a Gly-Ser linker and the $Xpress^{TM}$ epitope. Localization of the fusion protein on the cell surface was confirmed by confocal microscopy. In this study, we report on the genetic immobilization of T. reesei CBH I on the S. cerevisiae and hydrolytic activity of cell surface displayed CBH I.
This paper describes the purification and properties of a multicatalytic proteinase complex, proteasome, from bovine skeletal muscle, in comparision with proteasome prepared from other species or organs. The purified bovine skeletal muscle proteasome exhibited a single band on polyacrylamide gel electrophoresis under nondenaturing conditions. Bovine skeletal muscle proteasome degraded synthetic peptides maximally at pH 8.0. Relative to pH 8.0, activities were gradually decreased with the lowering pH, but the extent of decrease was substrate-dependent, and the activity at pH 5.5 still retained 78-10% of the activity at pH 8.0, indicating the possibility that the proteasome is active in muscle during aging. When the proteasome was heated at 60$^{\circ}C$ for 15 or 30 min and treated in the presence of 0.0125% SDS, the activity increased over 1.8 and 3.1 times (LLVY (Suc-Leu-Leu-Val-Tyr-NH-Mec) as a substrate), respectively. These results (activation with heat or SDS) indicate that the hydrolytic activity of proteasome was stimulated under mild denaturing conditions. The characteristics of the bovine skeletal muscle proteasome obtained in our experiment were almost the same as those of the proteasome prepared from other species or organs.
Heedong Woo;Gyeong A Jeong;Hyunwook Choi;Chang Joo Lee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.5
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pp.656-661
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2023
The aims of this study were to optimize the preparation of low-molecular-weight collagen using a proteolytic enzyme (alcalase) derived from the feet of Korean native chickens, and to characterize the process of collagen hydrolysis. Foreign bodies from chicken feet were removed using ultrasonication at 28 kHz with 1.36 kW for more than 25 min. The hydrolytic pattern and molecular weight distribution of enzyme-treated collagen from chicken feet were analyzed using sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and high-performance liquid chromatography, respectively. Ideally, chicken feet should be treated at 100℃ for 8 h to obtain a high collagen content using hot water extraction. The collagen content of the chicken foot extract was 13.9 g/100 g, and the proportion of low-molecular-weight collagen increased with increasing proteolytic enzyme concentration and reaction time. When treated with 1% alcalase, the average molecular weight of collagen decreased rapidly to 4,929 Da within 5 h and thereafter decreased at a slower rate, reaching 4,916 Da after 7 h. Size exclusion chromatography revealed that low-molecular-weight collagen peptides of approximately 1,000-5,000 Da were obtained after hydrolysis with 1% alcalase for 1 h.
Enzymatic acylations catalyzed by hydrolytic enzymes, along with enzymatic hydrolysis, are established reactions in the synthesis of fine chemicals such as chiral intermediates and polymerizations in the industry. Those reactions have been carried out mostly in organic media due to the thermodynamic limitations. Recently, there have been reports on enzymatic acylations in aqueous media. They have dealt with the elucidation of reaction mechanisms of hydrolases and acyl transferases based on their X-ray structures, homology comparison of the two kinds of enzymes, substrate engineering of acyl donors and computational design of acyl transferases for enzymatic acylations in aqueous media. Enzymatic acylations play an important role in the combinatorial synthesis of natural products such as polyketides and nonribosomal peptides. In this review, the historic developments of enzymatic acylations and industrial examples are described briefly. In addition, recent developments of enzymatic acylations in the modification of natural products and their prospects will be discussed.
In order to enhance the processing quality and utility of alaska-pollack meat, the optimum conditions for the preparation of pronase hydrolysate and the synthesis of plastein were investigated. The optimum temperature and pH for the hydrolysis of alaska-pollack by pronase were $40^{\circ}C$ and pH 7.0. The reaction time and enzyme concentration were 4 hr and 1,000 units per g of substrate. Under the above optimum conditions alaska-pollack was hydrolyzed by pronase yielding a hydrolytic degree of about 89%. Pronase hydrolysate was employed as substrate for plastein synthesis. The 30% pronase hydrolysates were adjusted to pH 7 for fruit-bromelain and pH 5 for stem-bromelain, and then plastein were synthesized by 1% bromelain at $40^{\circ}C$ for 24 hr. The plasteins synthesized by fruit- and stem-bromelain were consisted of peptides having average peptide length of 22.6 and 20.8 under the optimum synthetic conditions. The plastein synthesis reaction reduced considerably the bitterness of pronase hydrolysate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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