Selected kinetic parameters and degree of hydrolysis(DH) were measured using commercial proteases(trypsin, alcalase and pronase) to study the affinity of these enzymes to 7S and 11S soy proteins. Electrophoretic patterns of the hydrolysates were also investigated. In general, the order of affinity between the proteins and the proteases was 11S(protein-rich fraction)and 7S PRF for unheated proteins, and 7S PRF and 11S PRF for preheated proteins. Substrate inhibition was present at a substrate concentration of 1.5% or higher when preheated protein was used as the substrate. The maximum DH values of alcalase were obtained from 7S PRF(60%) and 11S PRF(80%) at 1 hr hydrolysis, respectively. Trypsin hydrolyses did not affect 11S soy protein but the acidic subunits in contrast to alcalase and pronase hydrolyses which changed almost all subunits. Alcalase hydrolysis induced distinct changes on 2S soy protein.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2001.06a
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pp.40-45
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2001
Raw starch-digesting amylase (BF-2A, M.W. 93, 000 Da) from Bacillus circulans F-2 was converted to two components during digestion with subtilisin. Two components were separated and designated as BF-2A' (63, 000 Da) and BF-2B (30, 000 Da), respectively. BF-2A' exhibited the same hydrolysis curve for soluble starch as the original amylase (BF-2A). Moreover, the catalytic activities of original and modified enzymes were indistinguishable in $K_{m}$, Vmax for, and in their specific activity for soluble starch hydrolysis. However, its adsorbability and digestibility on raw starch was greatly decreased. Furthermore, the enzymatic action pattern on soluble starch was greatly different from that of the BF-2A. A smaller peptide (BF-2B) showed adsorb ability onto raw starch. By these results, it is suggested that the larger peptide (BF-2A') has a region responsible for the expression of the enzyme activity to hydrolyze soluble substrate, and the smaller peptide (BF-2B) plays a role on raw starch adsorption. A similar phenomenon is observed during limited proteinase K, thermolysin, and endopeptidase Glu-C proteolysis of the enzyme. Fragments resulting from proteolysis were characterized by immunoblotting with anti-RSDA. The proteolytic patterns resulting from proteinase K and subtilisin were the same, producing 63- and 30-kDa fragments. Similar patterns were obtained with endopeptidase Glu-C or thermolysin. All proteolytic digests contained a common, major 63-kDa fragment. Inactivation of RSDA activity results from splitting off the C-terminal domain. Hence, it seems probable that the protease sensitive locus is in a hinge region susceptible to cleavage. Extracellular enzymes immunoreactive toward anti-RSDA were detected through whole bacterial cultivation. Proteins of sizes 93-, 75-, 63-, 55-, 38-, and 31-kDa were immunologically identical to RSDA. Of these, the 75-kDa and 63-kDa proteins correspond to the major products of proteolysis with Glu-C and thermolysin. These results postulated that enzyme heterogeneity of the raw starch-hydrolysis system might arise from the endogeneous proteolytic activity of the bacterium. Truncated forms of rsda, in which the gene sequence encoding the conserved domain had been deleted, directed the synthesis of a functional amylase that did not bind to raw starch. This indicates that the conserved region of RSDA constitutes a raw starch-binding domain, which is distinct from the active centre. The possible role of this substrate-binding region is discussed.d.
Some structural characteristics of kidney bean starches (3 varieties : Pink kidney bean, Red kidney bean and White kidney bean) were investigated. The amylose content and the ${\beta}$-amylolysis limit of kidney bean starches were $32.6{\sim}34.5%$ and $69.9{\sim}71.0%$, respectively. The kidney bean amylopectin was composed of super long chain of ${\overline{DP}}$ above 60 ($5.28{\sim}12.62%$), B chain of ${\overline{DP}}$$45{\sim}60\;(29.85{\sim}33.65%)$ and A chain of ${\overline{DP}}\;10{\sim}20(22.94{\sim}29.85%).$ The chain distribution of kidney bean starches were different from variety to variety. The acid (2.2 NHCI) hydrolysis of kidney bean starches showed, as hydrolysis time increased, the patterns of three stages. The acid hydrolysis rate and iodine reaction of acid treated starches were different from variety to variety As acid hydrolysis time increased, the amylose and the ${\alpha}$-1.6-glucosidic linkage of amylopectin of amorphous state were gradually hydrolyzed. Finally, the chain of ${\overline{DP}}$ 20 of crystalline state was left in the acid treated starches.
Effects of acid and ${\alpha}$-amylase on resistant starches including retrograded RS3 and cross-linked RS4 prepared from normal maize starch were investigated. Acid and ${\alpha}$-amylase hydrolytic patterns of RS3 were similar, while those of native starch and RS4 differed. Acid hydrolysis rate of RS3 was markedly higher at initial stage, then slowly decreased up to 20 days, whereas that of RS4 increased continuously. The sizes of acid- and ${\alpha}$-amylase-treated RS3 residues decreased, but those of RS4 remained unchanged. X-ray patterns of all treated residues did not change; however, the peak intensities increased. Swelling power of RS3 increased to 150% at $95^{\circ}C$, whereas that of RS4 differed depending on the treatment condition. Swelling power of acid-treated RS4 residue increased markedly, but that of ${\alpha}$-amylase-treated one remained constant. Gel filtration chromatography profiles of untreated RS3 and RS4 residues were similar, whereas that of acid-treated RS4 residue was different from them. RS showed different hydrolytic behavior by acid and ${\alpha}$-amylase depending on the type, and susceptibility of RS3 was higher than that of RS4.
Physicochemical properties and characteristics on lintnerization of sweet potato starches from Wouki(the dry type), Shinmi(the intermediate type) ana Chunmi(the moist type) were investigated. Swelling and gelatinization curves of these starches showed a two-stage process. Swelling powers of starches were higher in order of Shinmi, Chunmi and Wonki over a range of temperatures. Amylose content of Wonki was higher than those of other two. Hydrolytic patterns of three starches with 2.2 N HCI at $35^{\circ}C$ showed two distinct stages. Hydrolysis extents of Wonki starch were lower than those of Shinmi and Chunmi starches. X-ray diffraction patterns of native and lintnerized starches were the Ca crystalline type. The relative crystallinities of these starches were higher in order of Worki, Chunmi and Shinmi.
The metabolic profile of triprolidine, 2-[(4-methylphenyl)-3-(1-pyrrolidinyl-1-propenyl)] pyridine, was determined. Urinary extracts obtained with enzyme hydrolysis were derivatized with MSTFA/TMSCl (N-methyl-N-trimethylsilyl trifluoroacetamide/trimethylchlorosilane) and analyzed by GC/MSD. In human urine, which were obtained after the oral administration with triprolidine, hydroxymethyltriprolidine, triprolidine carboxylic acid, oxotriprolidine carboxylic acid and unchanged triprolidine were detected. The maximum urinary excretion rate of triprolidine and hydroxymethyltriprolidine which were extracted from human urine was at 2 to 4 hours after the drug administration. Triprolidine and hydroxymethyl triprolidine were identified by comparison with authentic standards In chromatographic and mass spectral properties. Triprolidine carboxylic acid was detected as a major metabolite of its metabolites in the urine. Oxotriprolidine carboxylic acid and triprolidine carboxylic acid were tentatively identified by the interpretation of its mass spectral patterns. These data suggest that in human, hydroxylation of either the benzyl or pyrrolidine ring can occur during triprolidine elimination.
The study of whole patterns of changes in protein expression and their modifications, or proteomics, presents both technological advances as well as formidable challenges to biological researchers. Nutrition research and the food sciences in general will be strongly influenced by the new knowledge generated by the proteomics approach. This review examines the different aspects of proteomics technologies, while emphasizing the value of consideration of "traditional" aspects of protein separation. These include the choice of the cell, the subcellular fraction, and the isolation and purification of the relevant protein fraction (if known) by protein chromatographic procedures. Qualitative and quantitative analyses of proteins and their peptides formed by proteolytic hydrolysis have been substantially enhanced by the development of mass spectrometry technologies in combination with nanoscale fluidics analysis. These are described, as are the pros and cons of each method in current use.
A fungal strain able to produce filter paper activity (FPase) was isolated from soil by testing the ability to hydrolyze using filter paper. The isolated strain was identified as an Aspergilus sp. judging from its morphological and microscopical characteristics. The cellulase-xylanase system of Aspergillus sp. 8-17 was detected in situ after gel electrophoresis in the presence of SDS and showed that each protein pattern had a distinct polypeptide composition. ${\beta}$-1,4-Glucanase, cellobiohydrolase, and xylanase activity profiles differ from protein patterns. The Aspergillus sp. 8-17 hydrolytic enzymes responsible for the hydrolysis of ${\beta}$-glucan, MUC, and xylan have multiple active forms.
For the production of pullulan from the high concentration of sugar, the utilization of sugars by a pullulan-producing fungus, Aureobasidium pullulans was examined. A. pullulans showed the different utilization patterns for sugars such as sucrose, maltose, and maltotriose. Especially for maltotriose, the hydrolysis of sugar was accompanied by a transferase activity. Glucose and maltose showed the inhibitory effect on the cell growth and the pullulan production at the sugar concentration higher than 0.28M, but sucrose showed the inhibitory effect at the sugar concentration higher than 0.14M. Among the sugars examined, sucrose gave the best result for the pullulan production. 27.5g/l of pullulan was obtained from 5% sucrose.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.43
no.9
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pp.1388-1393
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2014
To enzymatically prepare amylopectin cluster (APC), cyclodextrin glucanotransferase (CGTase I-5) and its mutant enzyme from alkalophilic Bacillus sp. I-5 were employed, after which the hydrolysis patterns of CGTase wild-type and its mutant enzyme toward amylopectin were investigated using multi-angle laser light scattering. CGTase wild-type dramatically reduced the molecular weight of waxy rice starch at the initial reaction, whereas the mutant enzyme degraded waxy rice starch relatively slowly. Based on the results, the molecular weight of one cluster of amylopectin could be about $10^4{\sim}10^5g/mol$. To determine production of cyclic glucans from amylopectin, matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry was performed. CGTase I-5 produced various types of cyclic maltooligosaccharides from amylopectin, whereas the mutant enzyme hardly produced any.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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