페디스토마 성충의 단백질을 정제하여 이를 항원으로 면역시킨 mouse의 spleen cell과 myeloma cell을 세포융합 시킨 결과 융합율은 56% 이었고. 3차 cloning한 후의 항체생산율은 89% 이였으며, 이들 융합세포로 부터 IgM을 생산하는 hybridoma clone과 IgG을 생산하는 hybridoma clone을 얻었다. IgM을 생산하는 hybridoma clone의 supernate는 antibody titer가 희석농도 1 : 64까지 양성이었고. IgG을 생산하는 hybridoma clone의 supernate는 1 : 256까지 양성이었다.
Listeria spp. were isolated from a total of 402 naturally contaminated domestic ready-to-eat (RTE) vegetable samples by the conventional Food and Drug Administration protocol and confinned by API-Listeria kit. Also, the susceptibility to 12 antibiotics, polymerase chain reaction (PCR) assay for virulence gene of pathogenic Listeria monocytogenes isolates, and in vitro virulence assay using myeloma and hybridoma cells from murine and human sources were tested. Among the samples, 17 samples (4.2%) were found to be contaminated with Listeria species. Among the 17 strains of Listeria spp. isolates, only 2 strains (11.8%) of L. monocytogenes and 15 strains (88.2%) of L. innocua were identified. Antibiotic susceptibility test showed that the Listeria spp. isolates were very susceptible to the antibiotics tested, except for nalidixic acid. Among 17 strains of Listeria spp., PCR analysis showed that 2 strains of L. monocytogenes isolates proved to have a virulence hly gene, but none of L. innocua had the hly gene. Also, hybridoma Ped-2E9 cells assay showed that only L. monocytogenes isolates killed approximately 95-99% hybridoma cells after 6 h, but L. innocua isolates had about 0-5% lethal effect. These results indicate that PCR assay with hly primer or hybridoma Ped-2E9 cells assay could be used as a good monitoring tool or in vitro virulence test for L. monocytogenes.
hybridoma cells producing IgM anti-pneuococcal 6B polysaccharide antibodies were induced to switch to IgG-producing cells in vitro by treating with acridine orange. Treating 0.5 $\mu\textrm{g}$/ml of acridine orange for 24 hours generated maximal number of variant cells. The maximal isotype switch frequency was 3${\times}$10-5, which is about 30-fold higher than the frequency of spontaneous switching. Resulting IgG-producing variants were enriched by sib selection and ELISA spot assay. Two IgG3-producing variant cells were finally cloned by limiting dilution. The variant cells produced similar amounts of antibodies as their parental cells did. The two switched antibodies had similar reactivity to pneumococcal 6B polysaccharide. When compared to their parental IgM antibodies, the switched IgG3 than that of IgM antibody. The antibodies will be useful as essential tools for comparative study of the role of heavy chain isotypes in protection against Streptococcus pneumoniae.
In our previous studies, we reported that hybridoma B-lymphocytes can be used to determine the virulence of Listeria species in an in vitro cytotoxicity assay. Here, we examined the cytopathic effect, i.e., membrane damage and the nature of cell death induced by Listeria monocytogenes on murine hybridoma B-lymphocytes (Ped-2E9). Membrane damage was assessed by microscopic analyses and by measuring the release of intracellular alkaline phosphatase(AP) and lactate dehydrogenase (LDH). Cell death was determined by DNA fragmentation analyses using agarose gel electrophoresis. Infection by listeriolysin O (LLO)-producing L. monocytogenes strains induced substantial amounts of AP and LDH release from Ped-2E9 hybridoma B-cells, suggesting severe membrane damage in these cells, while an LLO-negative L. monocytogenes mutant strain had no effect. An LLO-producing recombinant L. innocua ($prifA^+hly^+$) strain also induced high AP and LDH release and cytopathic changes in Ped-2E9 cells. Light or scanning electron microscopic examination revealed L. monocytogenes mediated membrane destabilization, pore formation, intense cytoplasmic granulation, bleb formation, and lysis of Ped-2E9 cells. LLO-producing L. monocytogenes and L. innocua ($prifA^{+}hly{^}+$) also induced ladder-like DNA fragmentation in Ped-2E9 cells. Collectively, these results suggest that L. monocytogenes, specifically LLO-producing strains, can induce a severe cytopathic effect leading to apoptosis in hybridoma B-lymphocytes (Ped-2E9).
Using a murine T cell hybridoma, activation-induced cell death (AICD) was studied. As an in vitro model system for the AICD, 1 cell hybridoma expressing TCR/CD3 complex was incubated onto the immobilized purified anti-CD3 antibody. The immobilized anti-CD3 antibody induced AICD effectively up to 40%. At 1-100 $\mu$M range of SNP, an exogenous source of nitric oxide (NO), the cell proliferation was not affected, but at 1 mM SNP, cell proliferation was significantly reduced. The AICD of T cell hybridoma was inhibited by exogenous NO at non-cytotoxic concentration, In the cells undergoing AICD, the expressions of caspase-3 and FasL were detected, but not iNOS. Similar result was recognized in the apoptosis induced by dexamethasone, an apoptosis-inducing agent. However, the conversion from the inactive form of caspase-3 (32 kDa) to the active form (17 kDa) was significantly reduced in the cells in AICD induced by anti-CD3 antibody, With the result of increased PARP cleavage in the cells, we propose that another PARP cleavage pathway not involving caspase-3 may function in the anti-CD3 antibody induced AICD in the T cell hybridoma.
Physiological changes of the murine hybridoma cell line $S3H5/\gamma{2bA2}$ during adaptation to RPMI 1640 medium with 1%(v/v) fetal bovine serum were characterized in terms of cell growth, antibody production, morphology, and metabolic quotients. Cells adapted to 1% serum medium in T-flasks became sensitive to shear induced by mechanical agitation and required at least 5% serum in the medium or spent medium for cell growth in spinner flasks, while cells adapted to 10% serum medium in T-flasks could grow in 1% serum medium in spinner flasks. Consequently, long-term adaptation to low serum media may not give the expected growth enhancement. After adaptation to 1% serum medium, changes in cell morphology were observed. The cells in 10% serum medium were uniform and circular, while cells in 1% medium were irregularly shaped. The DNA contents, which were measured by flow cytometry, were almost constant among the cells in the range of 1% to 10%. Further, no significant changes in energy metabolism and specific monoclonal antibody production rate were observed among these cells.
동물세포에 미치는 웅담의 영향을 조사하기 위해서 원숭이 kidney cell 유래의 COS-7 cell과 hybridoma cell(murine myeloma cell과 rat의 spleen cell을 융합)을 가지고 이들 세포의 생육과 단백질 발현기작에 미치는 영향을 조사했다. COS-7 cell과 hybridoma cell을 웅담이 첨가된 10% FCS DMEM complete medium에서 78시간 배양한 결과 COS-7 cell에는 거의 영향을 미치지 않았으나 myeloma cell과 spleen cell과의 융합세포는 48시간내에 거의 모든 세포가 사멸됐다. 또한 cDNA를 COS-7 cell에 transfection에서 발현되는 단백질양을 조사한바 웅담이 첨가된 배지에서의 단백질 생산량이 첨가되지 않은 배지에서 보다 $30{\sim}40%$ 감소되었다.
The effect of cell density on cell growth was investigated in a suspension batch culture of hybridoma cells. The specific growth rate was found to increase with increasing initial cell density and then to decrease with further increases in initial cell density. In order to quantitatively describe the dependence of specific growth rate on cell density, a kinetic model is proposed, which satisfactorily represents the experimental data.
Zearalenone에 특이한 단크론성 항체를 개발하기위하여 형질세포종세포인 myeloma cell $(P3{\times}63Ag.V653)$과 zearalenone-oxime-bovine serum albumin (BSA) 결합체를 항원으로 면역시킨 BALB/c female mice의 비장세포를 융합시켜 hybridoma cell을 생산하였다. 그들의 항체가를 indirect competitive ELISA법으로 측정한 결과 zearalenone에 대하여 높은 친화력을 갖는 5세포주를 얻었다. 그중 Z-2-M26 hybridoma cell line이 생산하는 단크론성항체는 특히 zearalenone과 민감하게 반응하였고, ${\alpha}-zearalenol$과도 약간의 교차반응을 보였으나 ${\beta}-zearalenol,\;{\alpha}-zearalenol,\;{\beta}-zearalenol$ 및 DON과는 거의 반응하지 않았다. 따라서 본 실험에서 개발된 항체는 앞으로 zearalenone에 대한 민감하고 정량적인 효소면역측정법의 개발을 위한 중요한 면역시약으로 사용될 것으로 생각한다.
본 연구에서 hybridoma 세포는 $K^+$농도를 80 mM까지 높인 배지에 적응시켰다. $K^+$ 80 mM에 적응된 세포는 높은 삼투압과 낮은 pH에서 내성을 가졌다. 적응되지 않은 세포와 $K^+$ 80 mM에 적응된 세포는 Erlenmeyer flask에서 강화 배지로 회분 식으로 배양되었다. 배지의 삼투압이 450 $mOsm/kgH_2O,$일 때 적응되지 않은 세포의 최대 세포 농도가 $4.8{\times}10^5$ cells/ml로 낮은 성장을 보였고, 적응된 세포는 $1.1{\times}10^6$ cells/ml까지 성장하였다. 또한 배지의 초기 pH가 7.0일 때 적응되지 않은 세포는 $5.3{\times}10^5$ cells/ml인 반면, $K^+$ 80 mM에 적응된 세포 농도는 $7.8{\times}10^5$ cells/ml였다. 따라서, 동물세포의 높은 $K^+$농도에의 적응은 세포배양의 한계조건에서 적응되지 않은 세포가 받는 성장 저해를 줄여줄 것이다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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