Carbon nanotubes (CNTs) stand at the frontier of nanotechnology and are destined to stimulate the next industrial revolution. Rapid increase in their production and use in the technology industry have led to concerns over the effects of CNT on human health and the environment. The prominent use of CNTs in biomedical applications also increases the possibility of human exposure, while properties such as their high aspect ratio (fiber-like shape) and large surface area raise safety concerns for human health if exposure does occur. It is crucial to develop viable alternatives to in vivo tests in order to evaluate the toxicity of engineered CNTs and develop validated experimental models capable of identifying CNTs' toxic effects and predicting their level of toxicity in the human respiratory system. Human lung epithelial cells serve as a barrier at the interface between the surrounding air and lung tissues in response to exogenous particles such as air-pollutants, including CNTs. Monolayer culture of the key individual cell types has provided abundant fundamental information on the response of these cells to external perturbations. However, such systems are limited by the absence of cell-cell interactions and their dynamic nature, which are both present in vivo. In this review, we suggested two viable alternatives to in vivo tests to evaluate the health risk of human exposure to CNTs.
Possibility of using microcarriers for the growth of a transformed human embryonic kidney cell line 293 was investigated. The cell grew well in a static culture such as T-flasks with medium of DME/F12 (3:1) mixture supplemented with 5% FBS, but it was most difficult to make the cells grow on microcarriers mainly due to the low attachment efficiency and poor spreading at initial stage of the culture. Consequently, 30-50% of the cells were lost upon inoculation into microcarrier suspension and significant fraction of the mirrocarrier became bald. The medium supplemented with the concentrated conditioned medium by hepatoma cell line HpG2 supported the active growth of the cells on microcarrier and the cells showed a very healthy and well spreading morphology. It was probable that some spreading and attachment factors of HpG2 conditioned medium were effective for 293 cells.
Mammalian cell cultures have been used extensively to produce proteins for therapeutic agent because of their ability to perform post-translational modification including glycosylation. To produce recombinant protein, many factors and parameter are considered such as media composition, host cell type, and culture process. In this study, recombinant human erythropoietin (rhEPO) producing cell line was established by using glutamine synthetase system. To reduce serum concentration in media, we compared direct adaptation with step adaptation. Cell growth was faster in step adaptation. In low-level serum media, there were insufficient glucose for cell growth. Thus, we added glucose in low-level serum media from 2 g/L to 4.5 g/L. Titer of rhEPO was higher than other conditions at 4.5 g/L of glucose. Additionally, N-methyl-D-aspartate (NMDA), 13-cis-retinal, and pluronic F-68 (PF-68) were added to enhance productivity in CHO cell cultures. In conclusion, we applied CHO cell producing rhEPO to low-level of serum in media using step-adaptation. Also, we confirmed positive effect of NMDA, 13-cis-retinal, and PF-68.
Background and objectives: Salivary hypofunction is one of the common side effects after radioiodine therapy, and its pathophysiology is salivary ductal stenosis resulting from ductal cell injury. This study aimed to develop the functional culture environment of human parotid gland ductal cells in in vitro three-dimensional perfusion culture system. Materials and Methods: We compared plastic dish culture method and three-dimensional culture system containing Matrigel and nanofiber. Morphogenesis of reconstituted salivary structures was assessed by histomorphometry. Functional characteristics were assessed by immunohistochemistry and reverse transcription polymerase chain reaction (aquaporin 5, CK7, CK18, connexin 43, and p21). In addition, we designed the media perfusion culture system and identified higher rate of cell proliferation and expression of connexin 43 in perfusion system comparing to dish. Results: Human parotid ductal cells were well proliferated with the ductal cell characters under environment with Matrigel. In the presence of Matrigel, aquaporin 5, CK18 and connexin 43 were more expressed than 2D dish and 3D nanofiber setting. In the media perfusion culture system, ductal cells in 3D culture media showed higher cells count and connexin 43 expression compared to 2D dish. Conclusion: This in vitro ductal cell perfusion culture system using Matrigel could be used to study for radioiodine induced sialadenitis model in vivo.
Oysters are known to be carriers of food-born diseases, but research on viruses in Korean oysters is scarce despite its importance for public health. We therefore tested oysters cultivated in Goheung, Seosan, Chungmu, and Tongyeong, for viral contamination using cell culture and integrated cell culture PCR (ICC-PCR) with Buffalo green monkey kidney (BGMK) and human lung epithelial (A549) cells. Additional screens via PCR, amplifying viral nucleic acids extracted from oysters supplemented our analysis. Our methods found 23.6 %, 50.9 %, and 89.1 % of all oysters to be positive for adenoviruses when cell culture, ICC-PCR, and direct PCR, respectively, was used to conduct the screen. The same methodology identified enteroviruses in 5.45%, 30.9%, and 10.9% of all cases. Most of the detected enteroviruses (81.3%) were similar to poliovirus type 1; the remainder resembled coxsackievirus type A1. A homology search with the adenoviral sequences revealed similarities to adenovirus subgenera C (type 2, 5, and 6), D (type 44), and F (enteric type 40 and 41). Adenovirus-positive samples were more abundant in A549 cells (47.3%) than in BGMK cells (18.2 %), while the reverse was true for enteroviruses (21.8 % vs. 14.5 %). Our data demonstrate that Korean oysters are heavily contaminated with enteric viruses, which is readily detectable via ICC-PCR using a combination of A549 and BGMK cells.
Ingrid Pernet;Corinne Reymermier;Anne Guezennec;Jacqueline Viac;Branca, Jean-Eric;Joelle Guesnet;Eric Perrier
Proceedings of the SCSK Conference
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2003.09a
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pp.85-96
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2003
Normal human skin, constantly challenged by environmental micro-organisms, has an innate ability to fight invading microbes through antimicrobial peptides. These peptides, described in both plant and animal kingdoms are able to inactivate a broad spectrum of micro-organisms. Mammalian defensins constitute one of the most common antimicrobial peptide family. Among the three human beta-defensins hBD1, hBD2 and hBD3 produced in epithelia, only hBD2 and hBD3 are inducible and additionally have been described as expressed by differentiated keratinocytes at site of inflammation and infection. The aims of these studies were to define a cell culture model in which the basal production of hBD could be detected and up-regulated in order to enhance skin auto-protection against micro-organisms. A specific Polymerase Chain Reaction method have been developed for hBD2 and hBD3 mRNA detection in non-differentiated monolayer keratinocytes cell culture. We have been able to demonstrate that in vitro, hBD2 and hBD3 expression in normal human keratinocytes could be detected and enhanced by TNF-alpha and IFN-gamma, in hypercalcic culture conditions. This research opened the possibility of the development of cosmetic active compounds, able to induce the expression of skin natural antibiotic peptides responsible about microflora ecology of the skin.
The aim of this study was to evaluate the effects of chitosan coating on the attachment, proliferation, functional and morphological change of human gingival fibroblasts. Primary culture of human gingival fibroblasts were grown in Dulbecco's modified Eagle's medium with 10% fetal bovine serum and 1% antibiotics. In experimental group, cells were inoculated in the multiwell plates coated with chitosan in concentration of 0.02, 0.2, and 2 mg/ml. Cell counting and MTT assay were done after 0.5, 1.5, 3, 6 and 24 hours of incubation to evaluate the cell attachment, and then after 2 and 7 days of culture to evaluate the cell proliferation. The alkaline phosphatase activity was measured after 4 and 7 days of culture and the ability to produce mineralized nodules was evaluated after 21 days of culture. The results were as follows : The morphology of cells on the chitosan-coated well was round or spheric. Round cells were aggregated since 6 hours of culture and showed nodule-like appearance after 24 hours of culture and did not achieved confluency at 7 days. The attachment of gingival fibroblasts was inhibited by chitosan coating with a tendency of dose dependent pattern. But, cellular activity of unit cell was higher than control. The proliferation of gingival fibroblasts was inhibited by chitosan coating at 2 mg/ml(P<0.01), while the cell proliferation at 0.02, 0.2 $mg/m{\ell}$ was comparable to the control well. Total alkaline phosphatase activity was inhibited by chitosan coating and decreased in the course of time. While ALP activity of unit cell was the highest at 2mg/ml after 4 days of culture. Finally, gingival fibroblasts produced the mineralized nodule at 2 mg/ml. In summary, the attachment, proliferation, and alkaline phosphatase activity of gingival fibroblasts were influenced differently by the concentration of coated chitosan. From this study, it could be used as the matrix of tissue engineering for gingiva without inhibition on proliferation of gingival fibroblasts using chitosan at the optimal concentration (0.02mg/ml).
Statement of problem. The effects of surface roughness have not or insufficiently been analyzed on earlier events such as cell adhesion though cell behavior most germane to implant performance is cell adhesion. Purpose. The purpose of this study was to evaluate cell adhesion of osteoblast-like cells (MG63) onto three types of titanium disks with varying roughness using the Elisa assay. Materials and methods. Representative disks from each group (SLA, HA, machined) were subjected to surface analysis and surface roughness was measured by the optical interferometer (Accura 2000, Intekplus Co., Seoul, Korea). Following this, MG63 cells were cultured on the titanium disks and released. Cell adhesion measurements using the Elisa assay were performed specifically at three points: after 24, 48, and 72 hours of culture. Results. Among the 3 types of surface analyzed, the SLA surface was the roughest with a Ra value of $1.114{\mu}m$ followed by HA coated surface and machined surface, consecutively. The optical density values for the SLA surface group was significantly higher than that of the machined and HA coated surface groups following 24 and 48 hours of culture. The cell culture on HA coated surface showed significantly higher values compared to the machined surface following 24, 48 and 72 hours of culture. Conclusion. The results suggest that surface treatment of titanium surfaces enhanced cell adhesion of human osteoblast-like cells (MG63).
It has been proved that co-cultivation of human neroblastoma cells and human fibroblast cells can enhance nerve cell growth and the production of BDNF in perfusion cultivation. In batch co-cultivation, maximum cell density was increased up to 1.76${\times}$106 viable cells/mL from 9${\times}$105 viable cells/mL of only neuroblastoma cell culture. The growth of neuroblastoma cells was greatly improved by culturing both nerve and fibroblast cells in a perfusion process, maintaining 1.5${\times}$106 viable cells/mL, which was much higher than that form fed-batch cultivation. The nerve cell growth was greatly enhance in both fed-batch and perfusion cultivations while the growth of fibroblast cells was not. It strongly implies that the factors secreted from human fibrobast cells and/or the environments of co-culture system can enhance both cell growth and BDNF secretion. Specific BDNF production rate was not enhanced in co-cultures; however, the production period was increased as the cell growth was lengthened in the co-culture case. Competitive growth between nerve cells and fibroblast cells was not observed in all cases, showing no changes of fibroblast cell growth and only enhancement of the neuroblastoma cell growth and overall BDNF production. It was also found that the perfusion cultivation was the most appropriate process for cultivating two cell lines simultaneously in a bioreactor.
Hantaan vims production, using human immortalized retina cell (PER. C6), was investigated to develop an inactivated virus vaccine. To infect Hantaan virus into PER. C6, two infection methods (medium-to-cell and cell-to-cell) were tried, and IFA results showed that the cell-to-cell infection method was very useful for producing Hantaan virus-infected PER, C6. Hantaan virus production was significantly affected by the growth rate of PER. C6 and the content of FBS in medium. Higher specific growth rate of infected PER. C6 and lower FBS content induced higher production of Hantaan virus. The inactivated human cell-culture vaccines with various EIA titers were prepared, their antibody responses were compared with those of inactivated suckling mouse brain vaccines ($Hantavax^처리불가$). and the result showed their immunogenicities were slightly higher than those of inactivated suckling mouse vaccines. Therefore, this study shows the possibility of the development of Hantaan virus vaccine from a human cell culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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