We have examined the feasibility of using the specific interaction between mistletoe lectin I (ML I) and ${\beta}$-Dgalactose instead of the anti-ML I antibody in developing a homogeneous type competitive binding assay for ML I. We also have examined the feasibility of adapting the biotin/avidin mediated homogeneous assay for this system. Alkaline phosphatase (AKP) was employed as a single substrate enzyme label. The dose-response curve shows a detection range of 1-25 ${\mu}$g/mL and a linear response with a correlation coefficient of 0.99. To demonstrate the analytical utility of this method, 10 ${\mu}$g/mL of ML I was spiked into distilled water. The results show that the mean recovery was 10.03 ${\mu}$g/mL with an SD of 0.18. The difference between the spiked value and the mean recovery was 0.03 ${\mu}$g/mL, with a relative error of 0.3 and 1.6 % of RSD.
Adenosine deaminase (ADA) has been utilized as the label in devising a potentiometric homogeneous assay for riboflavin and riboflavin binding protein (RBP). The proposed homogeneous assay method employs an ADA-biotin conjugate as the signal generator and an avidin-riboflavin conjugate as the signal modulator in the solution phase. The catalytic activity of the ADA-biotin conjugate is inhibited in the presence of an excess amount of the avidin-riboflavin conjugate, and the observed inhibition is reversed in an amount proportional to the concentration of RBP added. When the analyte riboflavin is added to this mixture of ADA-biotin, avidin-riboflavin and RBP, the activity of the enzyme conjugate is re-inhibited in an amount proportional to the concentration of riboflavin. Since the enzyme label used in this system is ADA, an ammonia-producing enzyme, a potentiometric rather than photometric detection scheme is used to monitor the enzymatic activity in the assay.
Mistletoe lectin I(ML I)에 대한 간단하고 빠른 용액상 효소결합 분석법을 렉틴의 당 특이성을 이용하여 개발하였다. ML I에 특이성을 가지고 있는 D-galactose를 사용하였으며, 용액상 분석법의 효소로는 malate dehydrogenase(MDH)를 사용하였다. 분석신호물질로 사용되는 MDH-galactose 접합체는 isothiocyanate 방법을 통해 합성하였으며, 이 접합제는 thiourea 결합을 하고 있다. ML I의 존재하에, ML I은 D-galactole와의 특이 인식결합을 통해 MDH-galartose 접합체의 활동도를 억제한다. 그러므로, 존재하는 ML I의 농도는 MDH-galactose 접합제의 촉매활동도의 억제도에 비례하게 된다. 따라서, 본 용액상 효소결합 분석법을 통하여 ${\mu}g/mL$ 수준의 ML I의 측정이 분석 시간 10분 이내에 가능하였다.
Kim, Bok-Hee;Park, Eun-Yong;Lee, Yong-Tae;Lee, Jung-Hun;Lee, Sang-Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권6호
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pp.1002-1009
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2007
A rapid, convenient homogeneous competitive enzyme immunoassay for estimating the amount of fenthion is described. The assay utilizes glucose-6-phosphate dehydrogenase-hapten conjugates that are inhibited in solution by antibodies obtained from bovine serum albumin-hapten conjugates. In order to investigate the effects of bridging group recognition on the sensitivity of dose response characteristics, the bridging groups of varying alkyl chain length were attached at the phosphate position of fenthion. Among the antibodies used, the one obtained from the use of hapten (fenthion analog) with the same bridging group structure that was used in preparing the enzyme-fenthion conjugates showed maximum inhibition (up to 51.8%) in the absence of fenthion. In the presence of fenthion, the activity of the enzyme-hapten conjugate is regained in an amount proportional to the fenthion concentration. Under the optimized condition, the $ED_{50}$ value for fenthion was $0.809{\mu}g/ml$. The assay developed in this study is a rapid effective screening method for fenthion prior to precise analysis.
The immunoassay method is frequently used for the identification and quantitation of ultratrace amount of bioactive substances. Homogeneous liposome immunoassays, which can avoid the use of radioisotopes and separation steps, have recently been reported in many publications. Cytolysin-mediated liposome immunoassay using melittin ever been studied but showed limited applications. Here, we designed a homogeneous liposome immunoassay using Clostridium perfringens phospholipase C (PLC), an enzyme which catalyzes the hydrolysis of phosphatidylcholine in biological membranes, as a cytolysin.
IFN-γ release assays (IGRAs) have been developed as viable alternative diagnostic tools for detecting latent tuberculosis infection (LTBI). A customized homogeneous sandwich luminescent oxygen channeling immunoassay (LOCI) was used to quantify IFN-γ levels in IGRAs. Samples were collected from healthy volunteers (n = 40) who were T-Spot-negative and T-Spot-positive patients (n = 32) at rest. Then the amount of IFN-γ in the supernatant of IGRAs was measured by LOCI. The results demonstrated a low background, and high sensitivity, specificity, accuracy, and reproducibility, and a short assay time (only 30 min) with LOCI for IFN-γ. The recovery range was 81.63-102.06%, the coefficients of variation were below 5%, and the limit of detection was 19.0 mIU/ml. Excellent agreement between LOCI IFN-γ and the T-SPOT.TB test was obtained (97.2% agreement, κ = 0.94). The LOCI IFN-γ concentrations were significantly higher in T-Spot-positive patients than in the healthy group (p < 0.001). Moreover, as observed for the comparative LOCI IFN-γ assay, IFN-γ concentrations were related to the numbers of T-SPOT.TB spots. We have established an in vitro blood test for LTBI diagnosis, defined as LOCI IFN-γ. A high level of agreement between the LOCI IFN-γ method and T-SPOT.TB assay was observed in clinical studies that showed the LOCI IFN-γ method could determine LTBI. This study shows acceptable performance characteristics of the LOCI IFN-γ assay to diagnose LTBI.
For development of $EMIT-T_{3}$ assay, the conjugation of 3, 5, 3'-triiodothyroformic acid NHS ester to G6PDH was attempted in various reaction conditions. Up to now, the best conjugation condition was the ratio of $T_{3}$-NHS:G6PDH=100 in 25% carbitol-Tris buffer at pH 9, $0^{\circ}C$ during overnight. The obtained $T_{3}$-G6PDH conjugates usually had 20% residual enzyme activity which was inhibited by 40-70% with various $anti-T_{3}$ antibodies. Utilizing the conjugate I and an antibody (S2633G), a useful standard curve for $T_{3}$ assay was obtained in the range of 0 to 5ng/ml with 499 EMIT units of separation.
Abkenar, Shiva Dehghan;Hosseini, Morteza;Dahaghin, Zohreh;Salavati-Niasari, Masoud;Jamali, Mohammad Reza
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제31권10호
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pp.2813-2818
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2010
A novel method was developed for the speciation of chromium in natural water samples based on homogeneous liquid-liquid extraction and determination by flame atomic absorption spectrometry (FAAS). In this method, Cr(III) reacts with a new Schiff's base ligand to form the hydrophobic complex, which is subsequently entrapped in the sediment phase, whereas Cr(VI) remained in aqueous phase. The Cr(VI) assay is based on its reduction to Cr(III) by the addition of sodium sulfite to the sample solution. Thus, separation of Cr(III) and Cr(VI) could be realized. Homogeneous liquid-liquid extraction based on the pH-independent phase-separation process was investigated using a ternary solvent system (water-tetrabutylammonium ion ($TBA^+$)-chloroform) for the preconcentration of chromium. The phase separation phenomenon occurred by an ion-pair formation of TBA and perchlorate ion. Then sedimented phase was separated using a $100\;{\mu}L$ micro-syringe and diluted to 1.0 mL with ethanol. The sample was introduced into the flame by conventional aspiration. After the optimization of complexation and extraction conditions such as pH = 9.5, [ligand] = $1.0{\times}10^{-4}\;M$, [$TBA^+$] = $2.0{\times}10^{-2}\;M$, [$CHCl_3$] = $100.0\;{\mu}L$ and [$ClO_4$] = $2.0{\times}10{-2}\;M$, a preconcentration factor (Va/Vs) of 100 was obtained for only 10 mL of the sample. The relative standard deviation was 2.8% (n = 10). The limit of detection was sufficiently low and lie at ppb level. The proposed method was applied for the extraction and determination of chromium in natural water samples with satisfactory results.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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