These experiments were carried out to investigate the effects of human follicular fluid (hFF) as a protein supplement on development of mammalian embryo as well as to find out ways toward effective use of hFF. The developmental rates of mouse embryos to the blastocyst and implantation stages were significantly higher in T6 +hFF than T6+hFCS. Classified hFF according to the maturity of contained oocytes (M-hFF and Im-hFF), and compared the rates of development of mouse embryo cultured in M-hFF or Im-hFF to culture medium T6. Total protein, albumin and estradiol concentrations were higher in M-hFF than Im-hFF (P<0.05). The developmental rates of mouse embryos to the blastocyst and hatching blastocyst stages cultured in Im-hFF were significantly lower than those in M-hFF and the basic medium. In accordance of the results of human IVF, hFF has been divided into 4 groups. The developmental rates of mouse embryos to the blastocyst stage in presense of hFF from pregnant patients, who have good grade embryos, were significantly higher than those in hFF from patients who have poor grade embryos or were not pregnant. In addition, the rates of development of human embryo were compared in presense of BSA, hFF or hFCS. The developmental rates of human embryos cultured in Ham's F10+hFF were significantly higher than those in the Ham's F10+BSA. These results suggests that the culture system using hFF could improve the development ability of mammalian embryos and the viability of blastocysts cultured in vitro.
Porcine follicular oocyte, collected from antral follicles (2~5 mm in diameter) of gilt ovaries were matured in vitro porcine follicular fluid (pFF) with PMSG (pFF-PMSG) buffer with at 37$^{\circ}C$ under 5% CO2 in air their ability of maturation promoting factor (MPF), of GV and GVBD formation was examined followed during time after in vitro culture. Formation of second metaphase was observed in 57.6% and 71.2% of matured in with pFF-PMSG buffer to 45 and 50 hours after invitro. Porcine oocytes cultured in pFF-PMSG for various periods of up to 30 hours were stained with Hoechst-33342 and classified according to maturation before assaying. Histone H1 kinase (H1K) activity was assayed during meiotic maturation in porcine oocytes matured in pFF-PMSG buffer in vitro. In oocytes matured in pFF-PMSG, H1K activity was at the 30 hours after culture and increased about 15 fold than at the germinal vesicle stage with before at the cultured in vitro. This pattern is similar to those reported in non-mammalian species and su, pp.rts the concepts that H1K is ubiquitous in eukaryotes and controls the meiotic cell cycle in mammals. These results suggest that the maturation pFF-PMSG buffer used influences the fluctuation pattern of H1K activity and biological characteristics of porcine oocytes cultured in vitro.
The present studt was performed to investigate the effect of treatment and samples of human follicular fluid (hFF) on the development in vitro of mouse embryos. The two cell stage embryos collected at 40 h post-hCG injection were cultured in the modified human tubal fluid (m-RTF) containing 15% synthetic serum substitute (SSS) or human tubal fluid (hFF) for up to 3 days at $37^{\circ}C$ in 5% $CO_2$ incubator. Also the composition of hormone, total protein and protein pattern of hFF samples were analyzed. The developmental rate of mouse embryos developed to blastocyst were not significant difference in the m-RTF containing 15% hFF filtered with 0.22 or 0.8 ${\mu}m$ syringe filter, however, the embryos cultured in the m-RTF containing inactivated hFF were significantly (p<0.05) developed at the high rate to blastocyst than those containing fresh hFF and SSS. The in vitro developmental rate to blastocyst and hatched blastocyst in the m-RTF containing 15% hFF sample A (90.5 and 85.4%, respectively) and SSS (79.4 and 75.3, respectively) were significantly (p<0.05) increased, compared with hFF sample B (64.2 and 54.1 %, respectively). The hFF sample A tended to be higher concentration of LH, FSR, total protein and the ratio of progesterone/$E_2$ and lower concentration of $E_2$ and progesterone than the hFF sample B, but there were no differences in the protein pattern between the two hFF samples. The results of these study suggest that the addition of hFF to the culture medium enhances the development in vitro to blastocyst and hatched blastocyst, but the in vitro developmental rate of mouse embryos is different between hFF samples.
사람 정자에 대한 유인능과 운동성에 미치는 난포액의 영향을 밝히기 위하여 난관 폐색으로 내원한 환자에서 채취한 난포액 sample A, 남성 배우자의 불임으로 내원한 환자에서 채취한 난포액 sample B, Sample A를 가열처리한 난포액 그리고 modified human tubal fluid(m-HTF) 중 어느 하나를 함유한 각각의 모세관을 1, 2 및 4시간 동안 배양하여 유인된 정자의 수와 운동성을 가진 정자의 비율을 조사하였다. 유인된 정자 및 운동성을 가진 정자의 비율은 난포액 sample A에서 m-HTF, 난포액 sample B 및 가열 처리한 난포액보다 유의 적으로(P<0.05) 높게 나타났다. 불활성화 난포액보다 신선 난포액에서 유인능 및 운동성이 높게 나타나는 경향을 보였으나 유의적인 차이는 없었다.
Florfenicol(FF)을 넙치(평균체중 $700{\pm}50$ g, $23{\pm}1.5^{\circ}C$)에 1일 1회 경구(20 mg/kg BW) 투여한 다음, 경시적(1시간~168시간)으로 혈청 내 FF의 잔류량을 HPLC로써 분석하였다. FF의 경구 투여에 따른 넙치 체내 약물 혈중농도 측정결과를 바탕으로 two-compartment model로 WinNonlin program을 이용하여 FF의 흡수, 배설, 반감기 등 약물동태학적 매개변수(parameter)를 조사하였다. 혈청중 농도-시간곡선하 면적(AUC)은 22.51 ${\mu}g{\cdot}h/mL$, 혈중최고농도($C_{max}$)는 0.84 ${\mu}L/mL$, 혈중최고농도에 도달하는 시간($T_{max}$)은 8.62 시간, 약물이 혈중에서 완전히 0이 되는 시점인 예상소실시간(Et)은 447 계산되었다. 본 연구에서 얻어진 결과는 넙치에 FF를 처방하여 치료 계획을 수립할 때 유용하게 활용될 것으로 여겨진다.
The aim of this study was to evaluate the improvement of testicular sperm motility following different culture conditions such as human follicular fluid (hFF) and temperature. Testicular tissues obtained from azoospermia (n=21) were minced into small pieces by blade and recovered sperm suspension were cultured in Ham's F10 with or without 40% hFF at different temperatures (Group I: 37$^{\circ}C$/with hFF, Group II: 32$^{\circ}C$/withGroup III: 37$^{\circ}C$/without, Group IV:32$^{\circ}C$ /without The motility and viability of sperm were monitored during culture for 48 hours. Initial motility of testicular sperm was 10.9$\pm$1.9%. After 24 hours culture, sperm motility was 23.5$\pm$2.1% (Group I), 8.1$\pm$1.1% (Group II), 10.4$\pm$ 1.4% (Group III) and 4.0$\pm$0.8% (Group IV), respectively. After 48 hours, the motility had been changed as 32$\pm$2.3% (Group I), 14.3$\pm$1.7% (Group II), 5.3 $\pm$1.4% (Group III) and 4.3$\pm$0.9% (Group IV). In hFF group (I and II), sperm motility of group I cultured at 37$^{\circ}C$ was higher than those of group II at 32$^{\circ}C$. But, sperm viability of group I cultured at 37$^{\circ}C$ was lower than those of group II at 32$^{\circ}C$ (54.4$\pm$4.1% vs. 59.4$\pm$3.7%) after cultured for 48 hours. We acquired the best motility of testicular sperm when performed in vitro culture for 48 hours in hFF supplemented medium at 37$^{\circ}C$. Increase of sperm motility by in vitro culture could be useful tool fur human TESE-ICSI program.
The possible effect of human follicular fluid(hFF) on the growth and development of fertilized oocytes and embryos is important because the fallopian tubes are exposed to FF after follicular rupture and the processes of fertilization and embryo cleavage occur inside the fallopian tubes. Previously, it was suggested that human FF might adversely affect on the development of early mouse embryos. In order to investigate the effect of hFF on the development of embryos, early mouse embryos were cultured in media containing various protein sources as bovine serum albumin(BSA), fetal cord serum(FCS) and FF. And we evaluated the development of early mouse embryos in terms of the morphology, cleavage rate, and cell count of blastcysts. There were no significant differences in the morula and blstocyst formation rates of 2-cell mouse embryos cultured in the media containg three different protein sources and three different concentrations of FF. The blastocyst formation rate of 1-cell mouse embryo cultured in FF group was significantly higher than that cultured in BSA group(P<0.05). The morula and blastocyst formation rates of 2-cell mouse embryos of the group cultured in the media containing FF were comparable with those of other two groups, in addition, the cell count of blastocysts of FF group in the 2-cell embryo culture was higher than those of BSA group and HCS group(P<0.01), and this finding was also noted in 1-cell embryo culture. There was no difference in the morula and blastocyst formation rates of the 2-cell mouse embryos cultured in the media containing different concentrations of FF. These results suggest that mature human follicular fluid has no inhibitory activity on the development of early mouse embryos even in high concentration and may be a good protein source which is positively associated with the development of mouse embryos in vitro especially in 1 cell embryo culture.
The aims of this study were, firstly, to analyze the biochemical compositions of serum and follicular fluid (FF) from prepubertal gilts after PMSG (1,000 IU) treatment. The concentrations of total proteins, lipids, cholesterol, glucose and sex hormones (progesterone, $P_4$; estradiol-$17{\beta}$, $E_2$; testosterone, T) were measured. Secondary, the effects of porcine FF (pFF) addition (40% and 100%) in IVM media and different culture conditions [Exp. 1: mBMOC-2+20% porcine serum (PS), fresh IVM medium, filtered IVMconditioned medium, or rabbit oviducts; Exp. 2: mBMOC-2+20%PS or stepwise medium replacement procedures (SMRP) cocultured with or without cumulus cells] on the in vitro development (IVD) of porcine oocytes were also examined. Results showed that no significant differences were found in total protein levels between serum and pFF from different sizes (large, >7 mm; medium, ~5-7 mm; small, <3-5 mm) of follicles (75-85 and 49-90 mg/dl; p>0.05). Total lipid concentrations remained constant in serum (395-472 mg/dl), and reduced significantly in the pFF from large follicles (287 mg/dl) at 132 h after PMSG treatment when compared to those at other time points (441-480 mg/dl). Basal cholesterol levels in serum and pFF at 12 h were similar (153-161 mg/dl), but increased at 36 h (186-197 mg/dl). Basal P4 and E2 levels in serum (0.1 ng/ml and 5.5 pg/ml) were low, but increased from 0.34 ng/ml and 12.13 pg/ml at 24 h to 0.81 ng/ml and 61.70 pg/ml at 98 h, respectively, after PMSG treatment (p<0.05). P4 levels increased linearly in pFF from large follicles during 12 through 132 h (138-1,288 ng/ml). A similar increase was also observed in $E_2$ levels (22-730 pg/ml) before 60 h post PMSG treatment, and then dropped afterwards (730-121 pg/ml). The development of the oocytes fertilized in 40% pFF-medium was greater than that in 100% pFF-medium group without gonaodtropin addition (31% vs 10%, p<0.05). However, both were lower than those in mBMOC-2+20%PS and in rabbit oviducts (p<0.05). When cocultured with cumulus cell monolayers, a greater cleavage rate was observed in the group cultured in filtered IVM-conditioned medium than the SMRP group (36% vs 18%, p<0.05). A similar phenomenon was also observed in the culture without cumulus cell monolayers (33% vs 19%, p<0.05). It is concluded that neither the fresh IVM nor filtered IVM-conditioned medium has positive effect on the IVD of oocytes. Coculture with cumulus cell monolayers and the SMRP were not beneficial to the development of IVF pig oocytes.
본 연구에서는 $glutathione({\gamma}$-L-glutamyl-cysteinyl-glycine)을 다량으로 함유하는 효모 균주를 전통 발효주로부터 분리하여 glutathione 생산 조건을 검토하였다. 분리된 균주는 형태학적, 생리학적 및 생화학적 특성을 검토한 결과 Saccharomyces cerevisiae로 동정되어 FF-8로 명명하였다. Saccharomyces cerevisiae FF-8의 glutathione 생산 조건은 YM(glucose 1.0%, acid peptone 0.5%, yeast extract 0.3%, malt extract 0.3%) 배지를 기본으로 하여 최적 온도, 교반속도 및 초기 pH의 조건을 검토하였다. Glutathione 생산은 온도 $30^{\circ}C$, 교반속도 100 rpm 및 pH 6.0에서 72시간 동안 진탕 배양하였을 때 가장 높았으며, 이때 glutathione 생산량은 72.0 mg/l이였으며, 건조 균체량은 5.2 g/l이였다.
Follicular fluid(FF) prostaglandin $E_2$(PG$E_2$) and $PGF_{2{\alpha}}$ levels were compared in 3 groups of spontaneously ovulatory women undergoing ovulation induction with clomiphene citrate (CC) alone or with human menopausal gonadotropin(hMG) (14 patients), hMG(9 patients), or pure FSH/hMG(11 patients) for the purpose of in vitro fertilization. FF volume aspirated did not differ significantly according to the maturity of the oocyte. According to hyperstimulation regimens, the volume of FF from which preovulatory occytes were obtained was significantly less in the hMG-treated group than in the other groups. In follicles of preovulatory oocytes, FF PG$E_2$ values were significantly lower in the FSH treated group than in the Cc.treated or hMG-treated group, and FF $PGF_{2{\alpha}}$ values were significantly higher in the hMG-treated group than in the CC-treated or FSH-treated group. In follicles of immature or atretic oocytes, there was no significant difference in FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ concentrations of the similar morphology of the oocyte according to hyperstimulation regimens. In all cycles, FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ values of preovulatory oocytes were not significantly different from those of immature oocytes, but those of atretic oocytes were relatively lower than those of fertilizable oocytes and it was statistically signifincant in PG$E_2$ values of CC-treated group. In all treatment groups, FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ levels did not show and close relationship with the success of fertilization in vitro and of pregnancy after embryo transfer. Above results suggested that FF PG$E_2$ and PG$F_{2{\alpha}}$ be involved in oocyte maturation and ovulation, but their relationship with the success of in vitro fertilization was not found.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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