The baculovirus/insect cell expression system is of great value in the study of structure-function relationships in mammalian glucose-transport proteins by site-directed mutagenesis and for the large-scale production of these proteins for mechanistic and biochemical studies. In order to exploit this, the effects of substitution at the highly conserved residue glutamine 282 of the human erythrocyte-type glucose transporter have been examined by in vitro site-directed mutagenesis. The modified human transport protein has been expressed in Spodoptera frugiperda 21 cells by using the recombinant baculovirus AcNPV-GTL. To assess the functional integrity of the expressed transporter, measurements of the transport inhibitor cytochalasin B binding were performed, involving the membranes prepared from 4 days post infection with no virus, with wild-type virus or AcNPV-GTL virus. Data obtained showed that there was little or no D-glucose-inhibitable binding in cells infected with the wild type or no virus. Only the recombinant virus infected cells exhibited specific binding, which is inhibitable by D- but not by L-glucose. However, there was a notable reduction in the affinity for the potent inhibitor cytochalasin B when binding measurements of AcNPV-GTL were compared with those of AcNPV-GT, which has no substitution. It is thus suggested that although the modified and unmodified human transporters differed slightly in their affinity for cytochalasin B, the glutamine substitution did not interfere the heterologous expression of the human transporter in the insect cells.
Neutral and non-essential amino acid, glutamine (Gln), plays an essential role in supplying nitrogen to all the amino acids and nucleotides in the mammalian body. Gln is also the most important carbon source that provides intermediates for gluconeogenesis and fatty acid synthesis and supplements the tricarboxylic acid cycle in fast-growing cancer cells. Among the known 14 Gln transporter genes, soluted carrier family 1 member 5 (SLC1A5) has been reported to be closely associated with cancer cell growth. Three variants (v1, v2, and v3) have been derived from SLC1A5. Here, we established a heterologous gene expression system for the active form of human SLC1A5 variant-2 (hSLC1A5v2) in Escherichia coli. v2 is the smallest variant that has not yet been studied. Four expression systems were investigated: pBAD, pCold, pET, and pQE. We also addressed the problem of codon usage bias. Although pCold and pET overexpressed hSLC1A5v2 in E. coli, they were functionally inactive. hSLC1A5v2 using the pBAD system was able to catalyze the successful transport of Gln, even if it was not highly expressed. Initial activity of hSLC1A5v2 for [14C] Gln uptake in E. coli reached up to 6.73 μmole·min-1·gDW-1 when the cell was induced with 80 mM L-arabinose. In this study, we demonstrated a heterologous expression system for the human membrane protein, SLC1A5, in E. coli. Our results can be used for the functional comparison of SLC1A5 variants (v1, v2, and v3) in future studies, to facilitae the developement of SLC1A5 inhibitors as effective anticancer drugs.
So Mi Yang;Jueun Kim;Ji-Yeon Lee;Jung-Shin Lee;Ji Min Lee
BMB Reports
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v.56
no.11
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pp.600-605
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2023
Intrahepatic cholangiocarcinoma (ICC) is a bile duct cancer and a rare malignant tumor with a poor prognosis owing to the lack of an early diagnosis and resistance to conventional chemotherapy. A combination of gemcitabine and cisplatin is the typically attempted first-line treatment approach. However, the underlying mechanism of resistance to chemotherapy is poorly understood. We addressed this by studying dynamics in the human ICC SCK cell line. Here, we report that the regulation of glucose and glutamine metabolism was a key factor in overcoming cisplatin resistance in SCK cells. RNA sequencing analysis revealed a high enrichment cell cycle-related gene set score in cisplatin-resistant SCK (SCK-R) cells compared to parental SCK (SCK WT) cells. Cell cycle progression correlates with increased nutrient requirement and cancer proliferation or metastasis. Commonly, cancer cells are dependent upon glucose and glutamine availability for survival and proliferation. Indeed, we observed the increased expression of GLUT (glucose transporter), ASCT2 (glutamine transporter), and cancer progression markers in SCK-R cells. Thus, we inhibited enhanced metabolic reprogramming in SCK-R cells through nutrient starvation. SCK-R cells were sensitized to cisplatin, especially under glucose starvation. Glutaminase-1 (GLS1), which is a mitochondrial enzyme involved in tumorigenesis and progression in cancer cells, was upregulated in SCK-R cells. Targeting GLS1 with the GLS1 inhibitor CB-839 (telaglenastat) effectively reduced the expression of cancer progression markers. Taken together, our study results suggest that a combination of GLUT inhibition, which mimics glucose starvation, and GLS1 inhibition could be a therapeutic strategy to increase the chemosensitivity of ICC.
Cisplatin is one of the most effective chemotherapeutic drugs used in the treatment of HCC, but many patients will ultimately relapse with cisplatin-resistant disease. Used in combination with cisplatin, resveratrol has synergistic effect of increasing chemosensitivity of cisplatin in various cancer cells. However, the mechanisms of resveratrol enhancing cisplatin-induced toxicity have not been well characterized. Our study showed that resveratrol enhances cisplatin toxicity in human hepatoma cells via an apoptosis-dependent mechanism. Further studies reveal that resveratrol decreases the absorption of glutamine and glutathione content by reducing the expression of glutamine transporter ASCT2. Flow cytometric analyses demonstrate that resveratrol and cisplatin combined treatment leads to a significant increase in ROS production compared to resveratrol or cisplatin treated hepatoma cells alone. Phosphorylated H2AX (${\gamma}H2AX$) foci assay demonstrate that both resveratrol and cisplatin treatment result in a significant increase of ${\gamma}H2AX$ foci in hepatoma cells, and the resveratrol and cisplatin combined treatment results in much more ${\gamma}H2AX$ foci formation than either resveratrol or cisplatin treatment alone. Furthermore, our studies show that over-expression of ASCT2 can attenuate cisplatin-induced ROS production, ${\gamma}H2AX$ foci formation and apoptosis in human hepatoma cells. Collectively, our studies suggest resveratrol may sensitize human hepatoma cells to cisplatin chemotherapy via gluta${\gamma}H2AX$mine metabolism inhibition.
The present study investigated the role of spinal glutamate recycling in the development of orofacial inflammatory pain or trigeminal neuropathic pain. Experiments were carried out on male Sprague-Dawley rats weighing between 230 and 280 g. Under anesthesia, a polyethylene tube was implanted in the atlanto-occipital membrane for intracisternal administration. IL-$1{\beta}$-induced inflammation was employed as an orofacial acute inflammatory pain model. IL-$1{\beta}$ (10 ng) was injected subcutaneously into one vibrissal pad. We used the trigeminal neuropathic pain animal model produced by chronic constriction injury of the infraorbital nerve. DL-threo-${\beta}$-benzyloxyaspartate (TBOA) or methionine sulfoximine (MSO) was administered intracisternally to block the spinal glutamate transporter and the glutamine synthetase activity in astroglia. Intracisternal administration of TBOA produced mechanical allodynia in naïve rats, but it significantly attenuated mechanical allodynia in rats with interleukin (IL)-$1{\beta}$-induced inflammatory pain or trigeminal neuropathic pain. In contrast, intracisternal injection of MSO produced anti-allodynic effects in rats treated with IL-$1{\beta}$ or with infraorbital nerve injury. Intracisternal administration of MSO did not produce mechanical allodynia in naive rats. These results suggest that blockade of glutamate recycling induced pro-nociception in na?ve rats, but it paradoxically resulted in anti-nociception in rats experiencing inflammatory or neuropathic pain. Moreover, blockade of glutamate reuptake could represent a new therapeutic target for the treatment of chronic pain conditions.
Clubroot disease is one of the most wide-spread and devastating diseases in the cultivation of Chinese cabbage. To develop a protein marker for resistance to clubroot disease in Chinese cabbage, a comparative proteome analysis was performed between a sensitive line, 94SK, and a resistant line, CR Shinki DH. Three proteins of two fold or higher accumulation that are specific to each line were found 3 days after innoculation of the Plasmodiphora brassicae. They are glutamine synthetase, malate dehydrogenase/oxidoreductase and fructose-bisphosphate aldolase in the 94SK and actin, phosphoglycerate kinase, and Cu/Zn superoxide dismutase in the CR Shinki line. From the comparison of the synthesized proteins in the 94SK and the CR Shinki, CR Shinki was found to produce more ATP-binding protein for the ABC transporter while 94SK showed a higher level of pathogenesis-related protein 1 production. All of these proteomic variations may lead to the development of molecular markers to accelerate the breeding process.
Mitigating secondary delayed neuronal injury has been a therapeutic strategy for minimizing neurological symptoms after several types of brain injury. Interestingly, secondary neuronal loss appeared to be closely related to functional loss and/or death of astrocytes. In the brain damage induced by agonists of two glutamate receptors, N-ethyl-D-aspartic acid (NMDA) and kainic acid (KA), NMDA induced neuronal death within 3 h, but did not increase further thereafter. However, in the KA-injected brain, neuronal death was not obviously detectable even at injection sites at 3 h, but extensively increased to encompass the entire hemisphere at 7 days. Brain inflammation, a possible cause of secondary neuronal damage, showed little differences between the two models. Importantly, however, astrocyte behavior was completely different. In the NMDA-injected cortex, the loss of glial fibrillary acidic protein-expressing ($GFAP^+$) astrocytes was confined to the injection site until 7 days after the injection, and astrocytes around the damage sites showed extensive gliosis and appeared to isolate the damage sites. In contrast, in the KA-injected brain, $GFAP^+$ astrocytes, like neurons, slowly, but progressively, disappeared across the entire hemisphere. Other markers of astrocytes, including $S100{\beta}$, glutamate transporter EAAT2, the potassium channel Kir4.1 and glutamine synthase, showed patterns similar to that of GFAP in both NMDA- and KA-injected cortexes. More importantly, astrocyte disappearance and/or functional loss preceded neuronal death in the KA-injected brain. Taken together, these results suggest that loss of astrocyte support to neurons may be a critical cause of delayed neuronal death in the injured brain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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