Acetyl xylan esterase gene (AXE) from Aspergillus ficuum was cloned and its Pichia expression plasmid, pPICZ$\alpha$C-AXE (4.6 kb), was constructed, in which the AXE gene was under the control of the AOXI promoter and connected downstream of mating factor u-1 signal sequence. The plasmid linearized by Sacl was integrated into the 5'AOXI region of the chromosomal DNA of P. pastoris. In the flask batch culture of P. pastoris transformant on methanol medium, the cell concentration and total AXEase activity reached at 6.0 g-dry cell weight/1 and 77 unit/ml after 36 h cultivation, respectively. In the fed-batch culture employing the optimized methanol and histidine feeding strategy, the cell concentration and total AXEase activity were significantly increased to about 97 g-dry cell weight/1 and 930 unit/ml. Most of AXEase activity (>90%) was found in the extracellular medium and the majority of extracellular protein (>80%) was AXEase enzyme (33.5 kDa). This result means that about 9.8 g/1 of AXEase protein was produced in the extracellular medium.
Culture conditions of yellow pigment in Monascus sp. were studied. According to the studies of culture conditions optimum condition was found to be pH 4.5, 3 days of incubation with 3% of sucrose as carbon source, 0.2 % of yeast extract as nitrogen source and 75m1 of medium in the 500m1 erlenmyer flask by rotary shaking (rpm 180) at 180 r.p.m. Effective levels of inorganic compounds were found to be 0.25 % of potassium phosphate monobasic and 0.1 % of Magnesium sulfate.
An efficient somatic embryogenesis and plant regeneration protocol was developed for Schisandra chinensis Baill, using embryogenic cell suspensions and optimized media conditions. Friable embryogenic callus was induced from cotyledonary leaf and hypocotyl explants of 7 days old seedlings on MS agar medium supplemented with 1.0 to $4.0\;mg\;l^{-1}$ of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D). Fast growing and well dispersed embryogenic cell suspensions were developed within two months when embryogenic calli were transferred to MS liquid medium containing $1.0\;mg\;l^{-1}\;2,4-D$. One third strength of MS medium was the best for both overall growth and development of somatic embryos in liquid culture. Over 3400 viable somatic embryos were produced from each 150 ml flask with an initial cell density of 30 mg in 30 ml medium. Germinated somatic embryos developed in liquid medium converted into plantlets after transferred to half-strength MS semi-solid medium. Approximately 90% of the converted plantlets were successfully transplanted to soil and grew into fertile plants.
Plant cell immobilization can protect plant cells from shear forces and increase the stability of gene. An additional advantage of immobilization is the easiness for performing continuous culture with cell recycling. Therefore plant cell immobilization can overcome the limitations of plant cell applications. In addition, target protein should be selected from pharmaceutical proteins to get rid of low expression level problem. The enhanced production of human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (hGM-CSF) was investigated in immobilized Nicotiana tabacum suspension cell cultures. When the cells were immobilized in polyurethane foam, specific production of hGM-CSF was higher than that in alginate bead immobilization. Optimum continuous culture condition was the addition of 60 g/L sucrose in growth media with exchanging media every 6 day. Under the same condition, specific hGM-CSF production was 7 times higher in a 500-mL spinner flask than that in 100-mL Erlenmeyer flasks. Therefore, development of an effective immobilization process would be possible when the advantage of easy cell recycling was used. Consequently, enhanced production of target proteins could be possible in immobilized continuous cultures when the advantages of immobilization were applied.
Using recombinant Vaccinia virus(vSC8) that express ${\beta}$-galactosidase, a model heterologous protein, conditions for virus and protein production were investigated in tissue culture flask. As host animal cells HeLa and HeLa S3 were used. It was demonstrated that cells infected during the exponential growth phase gave higher protein yield than those infected during the stationary growth phase and calf serum concentration after virus infection did not significantly alter protein yield. Pretreatment of cell layer with hypotonic solution enhanced the virus infectivity. Optimum cell growth and recombinant protein production was achieved at $37^{\circ}C$. But, during 2 hours of virus infection period incubation temperature must be lowered to 20∼$30^{\circ}C$ for maximum recombinant protein yield. To enhance virus replication, the effects of adrenal glucocorticoid hormone (Dexamethasone) and silkworm hemolymph were evaluated. Only dexamethasone increased about 20% of ${\beta}$-galactosidase yield in HeLa S3 cells when added with 10-7∼10-5M concentration 24 hours before infection.
Ralstonia eutropha NCIMB 11599 and ATCC 17699 were grown, and their productions of poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate) [P(3HB-co-4HB)] compared. In flask cultures of R. eutropha NCIMB 11599, cell concentration, P(3HB-co-4HB) concentration and polymer content decreased considerably with increases in the ${\gamma}-butyrolactone$ concentration, and the 4HB fraction was also very low (maximum 1.74 mol%). In fed-batch cultures of R. eutropha NCIMB 11599, glucose and ${\gamma}-butyrolactone$ were fed as the carbon sources, under a phosphate limitation strategy. When glucose was fed as the sole carbon source, with its concentration controlled using an on-line glucose analyzer, 86% of the P(3HB) homopolymer was obtained from 201g/L of cells. In a two-stage fed-batch culture, where the cell concentration was increased to 104g/L, with glucose fed in the first step and constant feeding of ${\gamma}-butyrolactone$, at 6g/h, in the second, final cell concentration at 67h was 106g/L, with a polymer content of 82%, while the 4HB fraction was only 0.7mol%. When the same feeding strategy was applied to the fedbatch culture of R. eutropha ATCC 17699, where the cell concentration was increased to 42 g/L, by feeding fructose in the first step and ${\gamma}-butyrolactone$ (1.5g/h) in the second, the final cell concentration, polymer content and 4HB fraction at 74h were 51g/L, 35% and 32 mol%, respectively. In summary, R. eutropha ATCC 17699 was better than R. eutropha NCIMB 11599 in terms of P(3HB-co-4HB) production with various 4HB fractions.
The gellan was produced by Pseudomonas elodea under aerobic condition. In this study, the effects of inoculum size, carbon sources and concentration, nitrogen source, and C/N ratio on the cell growth and the production of gellan were evaluated. The maximum growth of P. elodea and gellan production was obtained at 5% (v/v) of inoculum size and glucose showed best results among 9 carbon sources tested. The maximum specific yield of 2.22 and productivity of $0.03 g/\ell$h were obtained at 1.0% (w/v) of glucose. The maximum gellan production was obtained at medium without ammonium nitrate. This indicates that nitrogen limitation is essential for the production of gellan. The highest cell and gellan production were obtained at 20 of C/N ratio.
The kinetics of Ti-transformed Salvia miltiorrhiza cell cultures was studied in 250-$m\ell$ shake flasks by using B5 medium with addition of 30 gfL of sucrose. In the cell cultures, the maximum cell mass obtained was 11.5 g DW/L on day 15. The highest amount of phenolic compounds - rosmarinic acid (RA) and lithospermic acid B (LAB) reached 871.3 mg/L (day 15) and 121.3 mg/L (day 13), respectively. The total tanshinone production, i.e., intracellular plus extracellular cryptotanshinone, tanshinone 1, and tanshinone IIA, was 5.3 mg/L on day 13. For the cultivations in 2.4-L stirred bioreactors, the residual sugar level and medium conductivity were a little higher in a small turbine impeller reactor ($T_s$) than those in a large turbine impeller reactor ($T_L$), while a higher cell density was obtained in the $T_L$. For the production of tanshinones and phenolics, better results were obtained in the $T_L$ than in the $T_s$. In the $T_L$, similar or even a little higher production titers of tanshinones and phenolic compounds were achieved compared to those in the flasks. The results suggest that the shake flask results could be successfully scaled up to the $T_L$ reactor. Such a large impeller reactor like $T_L$ may be better than a small impeller one for the large-scale production of the valuable metabolites by the suspension cultures of Ti transformed S.miltiorrhiza cells. This is considered due to the beneficial culture environment in the $T_L$, such as low shear rates as estimated theoretically.
Mass production of biocontrol agent is an essential step for its commercial use. Media composition and culture conditions for production of Bacillus amyloliquefaciens SKU-78, a potential biocontrol agent against bacterial wilts, were optimized by a flask culture. Low cost media combining nitrogen and carbon sources were tested. Maximum cell growth (> $2{\times}10^9$ CFU/ml) was obtained in a medium of 5% soy flour combined with 3% corn starch after 24 h cultivation. The optimum initial pH, temperature and shaking speed was 5.5, $30^{\circ}C$ and 150-250 rpm, respectively. Fermentation of SKU-78 was scaled up in 30 L fermenter and the profiles of cell density, pH, dissolved oxygen and spore formation were recorded. After 8 h lag phase, exponential growth occurred and reached at maximum viable cell number ($1.2{\times}10^{11}$ CFU/ml) after 20 h. The SKU-78 strain grown in a low cost medium exhibited the high suppression of bacterial wilts. The results indicate that SKU-78 strain can be produced in a low cost medium and provide a basis for scaling up to industrial level.
Two recombinant Escherichia coli strains, GCSC6576 harboring a plasmid pSYL107 containing the Ralstonia eutropha polyhydroxyalkanoate (PHA) biosynthesis genes and a fadR atoC mutant LS5218 harboring a plasmid pJC4 containing the Alcaligenes latus PHA biosynthesis genes were compared for their ability to synthesize poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) [P(3HB-co-3HV) from whey. The 3HV fraction could be increased by acetic acid induction and oleic acid supplementation in flask cultures of recombinant E. coli GCSC6576. With the pH-stat fed-batch culture of recombinant E. coli LS5218, we obtained a cell concentration, a P(3HB-co-3HV) concentration, a P(3HB-co-3HV) content, and a 3HV fraction of 31.8 g/L, 10.6 g/L, 33.4%, and 6.26 mol%, respectively in 39 h.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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