• 생명과학회지
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• 제8권5호
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• pp.576-581
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• 1998

본실험은 성선자극 호르몬 투여가 토끼의 배란시간, 수정 능력보유시간, 수정란의 난할속도 등에 미치는 영향을 조사하기 위하여 성숙 앙고라 토끼에 PMSG 100IU를 투여하여 다수의 난포성숙을 유도하고 80시간 후 HCG 100IU를 주사하여 배란을 유기하였다. 배란은 HCG투여후 10시간에 시작하여 16시간에 거의 종료하였으며, 과배란처리에 의하여 배란된 난자의 수정능력을 보유하고 있는 시간은 배란후 8시간이였다. 수정란 분할은 HCG투여후 24, 48, 72, 96, 120시간에 회수한 회수한 수정란은 각각 2세포기 수정란, 16세포기 수정란, 상실배, 배반포, 배반포가 가장 많았다.

• Current Research on Agriculture and Life Sciences
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• 제5권
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• pp.127-133
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• 1987

콩과목초(科牧草) 균핵병균(菌核病菌) S. trifoliorum의 완전세대 형성과정중 수정(受精)의mechanism과 그 시기를 밝히고 균핵(菌核)내부의 해부학적(解剖學的) 구조변화의 양상(樣相)을 실험한 결과는 다음과 같이 요약된다. 본 실험에 공시(供試)한 S계통(系統)의 균주(菌株)에 있어서 수정가능상태(受精可能狀態)에의 도달은 균핵(菌核)을 포화습도(飽和濕度) 15C에 치상(置床)한 후 18일 경인 것으로 밝혀졌으며 수정가능상태(受精可能狀態)는 일부의 균핵(菌核)에서 치상(置床) 후(後) 45일 경까지 지속되는 것으로 나타났다. 본(本) 균(菌)의 균핵(菌核)이 수정가능상태에 달하게 되면 균핵(菌核)의 교배형(交配型)과 관계없이 그 내부에 염색성(染色性)이 강한 균계집단(菌系集團)이 출현하였는데 이들의 진전과정을 homothallic 계통(系統)과 heterothallic 계통(系統)에서 비교 검토한 결과, ascogonium으로 판단할 수 있었다. 이들 ascogonium은 치상 후 약 45일 경까지 지속적으로 관찰되었으나 치상 39일 경부터 퇴화되어 가는 것이 관찰되었다. 균핵내부에서의 ascogonium의 출현 지속기간과 균핵의 수정가능기간이 서로 잘 부합되었다.

• 한국가축번식학회지
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• 제12권3호
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• pp.167-173
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• 1988

The present experiment was carried out to investigate super-ovulating response, ovulation time and fertilizability in the angora rabbit that gonadotropin was treated. The results obtained were summarized as follows ; 1. Number of ovulating point and ovarian weight in PMSG 100I.U.(25${\pm}$2.45;1104.2${\pm}$110.6mg) and PMSG 200I.U.(30.6${\pm}$1.76, 1330.0${\pm}$153.9mg) treated group were significantly higher than natural mating(6.6${\pm}$1.49, 560.2${\pm}$60.6mg) and HCG treated group(9.8${\pm}$0.8;651.6${\pm}$55.1mg)(P<0.01). 2. Survival rate and recovery rate in natural mating, HCG and PMSG 100I.U. treated group were significantly higher than PMSG 200I.U. treated group.(P<0.01)(P<0.05). 3. Ovulation started at 10hrs and mostly finished at 16hrs after HCG injection. 4. The fertilizable life of egg ovulated was during 8hrs after ovulation.

• Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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• 제27권5호
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• pp.635-647
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• 2014

Unfertilized oocytes age inevitably after ovulation, which limits their fertilizable life span and embryonic development. Rapamycin affects mammalian target of rapamycin (mTOR) expression and cytoskeleton reorganization during oocyte meiotic maturation. The goal of this study was to examine the effects of rapamycin treatment on aged porcine oocytes and their in vitro development. Rapamycin treatment of aged oocytes for 24 h (68 h in vitro maturation [IVM]; $44h+10{\mu}M$ rapamycin/24 h, $47.52{\pm}5.68$) or control oocytes (44 h IVM; $42.14{\pm}4.40$) significantly increased the development rate and total cell number compared with untreated aged oocytes (68 h IVM, $22.04{\pm}5.68$) (p<0.05). Rapamycin treatment of aged IVM oocytes for 24 h also rescued aberrant spindle organization and chromosomal misalignment, blocked the decrease in the level of phosphorylated-p44/42 mitogen-activated protein kinase (MAPK), and increased the mRNA expression of cytoplasmic maturation factor genes (MOS, BMP15, GDF9, and CCNB1) compared with untreated, 24 h-aged IVM oocytes (p<0.05). Furthermore, rapamycin treatment of aged oocytes decreased reactive oxygen species (ROS) activity and DNA fragmentation (p<0.05), and downregulated the mRNA expression of mTOR compared with control or untreated aged oocytes. By contrast, rapamycin treatment of aged oocytes increased mitochondrial localization (p<0.05) and upregulated the mRNA expression of autophagy (BECN1, ATG7, MAP1LC3B, ATG12, GABARAP, and GABARAPL1), anti-apoptosis (BCL2L1 and BIRC5; p<0.05), and development (NANOG and SOX2; p<0.05) genes, but it did not affect the mRNA expression of pro-apoptosis genes (FAS and CASP3) compared with the control. This study demonstrates that rapamycin treatment can rescue the poor developmental capacity of aged porcine oocytes.