Three extracellular protease-deficient Bacillus subtilis strains were transformed with the plasmid pCK98 containing the endo-$\beta$-1,4-glucanase (Eng) gene of B. subtilis BSE616. The three transformants, B. subtilis DB104 (pCK98), WB600 (pCK98) and WB700 (pCK98), produced the same high level of enzyme activity and showed similar patterns of cell growth and enzyme production. When B. subtilis DB 104 (pCK98), a two-extracellular protease deficient strain, was cultured for 22 h, almost all the secreted enzyme was found to be in the completely cleaved form by both activity staining and Western blotting studies. B. subtilis WB600 (pCK98), a six-extracellular protease-deficient strain, produced a partially cleaved form in addition to the intact form of the enzyme, although the degree of internal cleavage of the enzyme was greatly reduced. With B. subtilis WB700 (pCK98), a seven-extracellular protease-deficient strain, almost all the enzyme was produced as the intact uncleaved form. This study illustrates that a role of the V pr protease is to degrade foreign proteins produced in B. subtilis and WB700 is a suitable expression system for producing the intact form of the Eng and other foreign proteins that may lose at least part of their efficacy due to internal proteolytic cleavage.
We investigated the optimal condition for the production of extracellular pretense(a cuticle-degrading pretense) from entomopathogenic fungus Beauveria bassiana(ATCC7159) in liquid medium by adding of gelatin, bovine serum albumin(BSA), casein and polypeptone. The optimal induction medium for production of extracellular pretenses is composed of 0.5% polypeptone, trace elements and 50 mM potassium phosphate(pH 6.0). In this condition, the production of extracellular pretenses increased rapidly after the 24hrs, peaking at the third day and there was little inductive effect in culture broth more than pH 7.0. The pretenses were inhibited by phenyl methyl sulfonyl fluoride(PMSF). High activity of pretense was showed both range of pH 8.5 and 11.5 and also detected by three different portions of slice gel derived from non-denaturing isoelectricfocusing gel. At least three different extracellular pretenses are produced in optimal production medium when polypeptone is used as the sole carbon and nitrogen source.
Entomopathogenic nematodes are used for insect control. Herein, an extracellular protease was partially purified from a culture supernatant of Xenorhabdus nematophilus, a symbiotic bacterium of an entomopathogenic nematode, Steinernema glaseri: using precipitation with $80\%$ v/v isopropyl alcohol followed by gel permeation chromatography with a packed Sephacryl S-300 HR media. The partially purified protease exhibited maximal activity at pH 7 in the presence of 1 mM $CaCl_2$. The protease was identified as a metallo-protease based on the inhibition of its activity by the metal chelating agent, EDTA.
Aspergillus flavus K-03 isolated from poultry forming soil in Korea was studied for its ability to produce extracellular proteases on basal medium containing 2%(w/v) chicken feathers. The fungus was observed to be a potent producer of such enzymes. Keratinolytic enzyme secretion was the best at 15 days of incubation period at pH 9 and temperature $40^{\circ}C$. No relationship existed between the enzyme yield and increase of biomass. Enzyme production was suppressed by exogenous sugars in descending order arabinose>maltose>mannose>fructose. But glucose did not influence the enzyme activity. The keratinolytic enzyme released by the fungus demonstrated the ability to decompose keratin substrates as chicken feather when exogenous glucose was present. The keratinolytic activity was inhibited by $HgCl_2$ and serine-protease inhibitors such as phenymethylsulfonyl fluoride(100%), chymostain(88%), crystalline soybean trypsin inhibtor(80%), antipain(45%) and aprotinin(40%), and was not by cystein-protease and aspartyl-protease inhibitors. The enzyme activity is only partially inhibited by metallo-protease inhibitor. Thus, the enzyme secreted by A. flavus K-03 belongs to the alkaline serine-type protease.
Aeromonas hydrophila isolated from the intestine of carp produced several kinds of proteases into the medium. Inhibitor assay with the culture supernatant of A. hydrophila showed that there were major metalloproteases and minor serine proteases. Gelatin SDS-PAGE showed two proteolytic bands. One broad protease band was inhibited by metalloprotease specific inhibitor, EDTA, indicating a metalloprotease. The other was inhibited by serine protease specific inhibitor, PMSF, suggesting a serine protease. The proteolytic activities of both extracellular proteases remained on Gelatin SDS-PAGE after heating at $70^{\circ}C$ for 30 min. However, the major metalloprotease was separated into two proteolytic bands on Gelatin PAGE by gel filtration chromatography on Sephadex G-75.
Characteristics and roles of protease released during the germination of Dictyostelium discoideum spores were investigated. When geat activated, the spores germinated, progressively releasing the protease into the extracellular medium. The protease activity exhibited high at pH 2.5. When cyclogeximide was added to culture, complete germination (emergence) and protease release were stopped. Addition of purified nonspecific protease to culture speeded up germination. These results suggest that excreted protease may play a role in removal of the spore wall.
Proteases are important molecules that are involved in many key physiological processes. Protease signaling pathways are strictly controlled, and disorders in protease activity can result in pathological changes such as cardiovascular and inflammatory diseases, cancer and neurological disorders. Many proteases have been associated with increasing tumor metastasis in various human cancers, suggesting important functional roles in the metastatic process because of their ability to degrade the extracellular matrix barrier. Proteases are also capable of cleaving non-extracellular matrix molecules. Inhibitors of proteases to some extent can reduce invasion and metastasis of cancer cells, and slow down cancer progression. In this review, we focus on the role of a few proteases and their inhibitors in tumors as a basis for cancer prognostication and therapy.
Aspergillus niger has been used as a host to express many heterologous proteins. It has been known that the presence of an- abundant protease is a limiting factor to express a heterologous protein. The protease deficient mutant of A. niger was obtained using UV-irradiation. A total of $1{\times}10^5$ spores were irradiated with $10{\sim}20%$ survival dose of UV, 600 $J/m^2$ at 280 nm, and the resulting spores were screened on the casein-gelatin plates. Ten putative protease deficient mutants showing the reduced halo area around colonies were further analyzed to differentiate the protease deficient mutant from other mutant types. Among ten putative mutants, seven mutants showed significant growth defect on nutrient rich medium and two mutants appeared to be the secretory mutants, which resulted in the impaired secretion of extracellular proteins including proteases. A mutant $pro^--20$ showed reduced halo zone without any notable changes in growth rate. In addition, the starchdegrading and glucose oxidase activities in the culture filtrate of $pro^--20$ mutant showed the similar range as that of the parental strain, which suggested that the $pro^--20$ mutant ought to be the protease deficient mutant rather than a secretory mutant. The reduced proteolytic activity of the $pro^--20$ was demonstrated using SDS-fibrin zymography gel. The reduced extracellular proteolysis was quantified by casein degradation assay and, comparing with the parental strain, less than 30% residual extracellular protease activity was detected in the culture filtrate of the $pro^--20$ mutant. The bio-activity of an exogenously supplemented hGM-CSF(human Granulocyte-Macrophage Colony Stimulating Factor) in the culture filtrate of $pro^--20$ mutant was detected until eight times more diluted preparations than that of the parental strain.
Several extracellular protease-producing bacteria were isolated from Chungkookjang, a traditional Korean food of fermented soybeans, on skim milk agar plates. Among these bacteria, strain D14 exhibited the highest production (15.2 U/mL) and specific activity (40.0 U/mg protein) of extracellular protease activity as assessed on growth in a protease induction medium composed of 1% (w/v) soluble starch, 1.5% (w/v) skim milk, 0.5% (w/v) yeast extract, and 2% (w/v) NaCl. The bacterium was identified as Bacillus subtilis based on morphological and physiological characteristics and 16S rDNA sequence. A BLAST search of 16S rDNA sequences revealed that the isolate was most closely related to Bacillus subtilis subsp. subtilis strain NCIB 3610. The 16S rDNA sequence homology was 99.9%. Our isolate produced the highest level of protease when grown in a protease induction medium containing 1% (w/v) sorbitol and 0.5% (w/v) yeast extract. Fructose and glucose reduced enzyme production to 12.7% and 35.9%, respectively, of the level seen when the strain was grown in medium containing soluble starch. Soytone also reduced enzyme production to 61.4% of the level noted when the strain was grown in medium containing yeast extract.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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