V. alginolyticus 138-2, a marine halophilic bacterium, produced an extracellular amylase with a molecular weight of ca. 56,000. The analysis of the digestion products of soluble starch by thin layer chromatography(TLC) revealed that the extracellular amylase of V. alginolyticus 138-2 is a saccharifying-type alpha-amylase. The alpha-amylase activity of the culture supernatant of soluble starch was optimal at pH 6.0 and 45$^{\circ}C$. Ca2+ slightly increased the alpha-amylase activity, whereas Hg2+, An2+, Cu2+, Ni2+, Fe2+, and Mn2+inhibited the enzymatic activity. Alkylating thiol group agent, iodoacetic acid did not affect the alpha-amylase activity, but reduced thiol reagents such as dithiothreitol, cysteine, and beta-mercaptoethanol stimulated theenzymatic activity. On the other hand, even if V. alginolyticus 138-2 is a marine halophilic bacterium, its alpha-amylase activity was significantly inhibited by NaCl.
Abstract Extracellular chitinase was purified from the culture liquid of the marine bacterium, Bacillus sp. LJ-25 , and its enzymatic properties were examined. The purified chitinase exhibited a single band on SDS-PAGE and the molecular weight was estimated to be approximately 50 kDa. The optimum pH and temperature for the enzymatic activity were 7.0 and $35^{\circ}C$, respectively. The activity of the chitinase was strongly inhibited by $Zn^{2+}$ and slightly inhibited by $Ba^{2+},{\;}Co^{2+},{\;}Mn^{2+},{\;}and{\;}Cu^{2+}$. The purified chitinase did not hydrolyze $p-nitrophenolN-acetyl-{\bata}-D-glucosaminide{\;}(GlcNAc)_2$ and Micrococcus lysodeikticus cells, which are known to be the substrates for exo-type chitinase. Among the hydrolyzates of colloidal chitin, $(GlcNAc)_2$ was in the highest concentration with small amounts of GlcNAc and $(GlcNAc)_3$..
Gonzalez, Tamara;M'Barek, Hasna Nait;Gomaa, Ahmed E.;Hajjaj, Hassan;Zhen, Chen;Dehua, Liu
한국미생물·생명공학회지
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제47권4호
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pp.546-554
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2019
This study, for the first time, reports the functional expression of lipase B derived from the yeast Candida antarctica (CALB) in Corynebacterium strain using the Escherichia coli plasmid PK18. The CALB gene fragment encoding a 317-amino-acid protein was successfully obtained from the total RNA of C. antarctica. CALB was readily produced in the Corynebacterium strain without the use of induction methods described in previous studies. This demonstrated the extracellular production of CALB in the Corynebacterium strain. CALB produced in the Corynebacterium MB001 strain transformed with pEC-CALB recombinant plasmid exhibited maximum extracellular enzymatic activity and high substrate affinity. The optimal pH and temperature for the hydrolysis of 4-nitrophenyl laurate by CALB were 9.0 and 40℃, respectively. The enzyme was stable at pH 10.7 in the glycine-KOH buffer and functioned as an alkaline lipase. The CALB activity was inhibited in the presence of high concentration of Mg2+, which indicated that CALB is not a metalloenzyme. These properties are key for the industrial application of the enzyme.
평판배지상 세균 colony의 체외 세포 효소활성을 직접 측정할 수 있는 신속하고 정확한 방법에 대하여 기술하였다. 일반적으로 세균의 효소 특성을 살피기 위해서는 단백질, 전분, chitin, tween-80 등과 같은 고분자 물질을 첨가한 선택배지를 사용하고 있으나 그 방법상 여러 가지 문제점이 있다 그러므로 본 연구에서는 형광물질의 일종인 Methvlumbell liferyl(MUF) 기질이 일반적으보 사용되고 있는 천연 고분자 물질고 유사한가를 순수분리세균 균주를 이용하여 실험으로 검증하였다. MUF 기질 분해원리에 기초를 둔 기술한 새로운 방법은 순수 분리 균주는 물론 colony 계수에 사용되는 평판배지상에서도 세균의 체외세포 효소 특성을 정량적으로 측정 가능하게 한다. 본 새로운 방법을 이용하여 담수 생태계와 해양 퇴적토내 종속영양세균의 체외 효소 활성을 측정하여 고찰하였다.
This study was carried out to investigate the characteristics of extracellular cellulase and xylanase from 4 selected different species, such as enzyme activity and stability by pH, temperature and metal ions, for application into enzymatic deinking system. The optimal temperature and pH for enzyme activity of Bacillus pumilus I, B. subtilis I, B. pumilus II and B. subtilis II were mainly $40{\sim}60^{\circ}C$ and pH $6.0{\sim}7.0$, respectively. Certain metal ions, calcium and cobalt, elevated enzyme activity, even though there were different results of enzyme activities based on various metal ions in 4 different species. With these results we suggest that enzymatic deinking system should be proceed at $50^{\circ}C$ with neutral pH condition.
This study was carried out to investigate the characteristics of extracellular cellulase and xylanase from Fusarium pallidoroseum and Aspergillus niger, such as enzyme activity and stability by various pH, temperature and metal ions, for application into enzymatic deinking system. The optimal temperature and pH for enzyme activity and stability of Fusarium pallidoroseum and Aspergillus niger were $50^{\circ}C$, pH 5.0 and $60^{\circ}C$, pH 9.0, respectively. Certain metal ions, calcium and cobalt, brought to elevate cellulase and xylanase activity from F. pallidoroseum and A. niger. With these results we suggest that enzymatic deinking system should be proceed at $50\~60^{\circ}C$ under their optimal pH condition.
Matrix metalloproteinases (MMPs) are zinc-dependent endopeptidases that degrade the extracellular matrix (ECM) and regulate the extracellular microenvironment. Despite the significant role that MMP activity plays in cell-cell and cell-ECM interactions, migration, and differentiation, analyses of MMPs in vitro and in vivo have relied upon their abundance using conventional immunoassays, rather than their enzymatic activities. To resolve this issue, diverse nanoprobes have emerged and proven useful as effective activity-based detection tools. Here, we review the recent advances in luminescent nanoprobes and their applications in in vitro diagnosis and in vivo imaging of MMP activity. Nanoprobes with the purpose of sensing MMP activity consist of recognition and detection units, which include MMP-specific substrates and luminescent (fluorescent or bioluminescent) nanoparticles, respectively. With further research into improvement of the optical performance, it is anticipated that luminescent nanoprobes will have great potential for the study of the functional roles of proteases in cancer biology and nanomedicine. [BMB Reports 2015; 48(6): 313-318]
Based on the zymography analysis, Bacillus sp. DJ-4 (screened from Doen-Jang, a Korean traditional fermented food) secretes seven extracellular fibrinolytic enzymes (EFEs; 68, 64, 55, 45, 33, 27, and 13 kDa) in culture broth. These seven EFEs were analyzed by newly applied SDS-fibrin zymography combined with gradient polyacrylamide (SDS-FZGP). This improved gel system was used with a 5-20% acrylamide gradient in a fibrin zymogram gel for the separation of proteins with molecular masses from below 10kDa to over 100kDa on one gel plate. Using this system, high molecular weight bands (HMWBs) were clearly and sharply resolved. We also examined the relationship between an acrylamide concentration and the enzymatic activity of EFE using densitometric analysis.
Bacillus polymyxa YL38-3이 생성하는 세포의 cytosine deaminase의 효소학적 ,성질을 검토하였다. 본 세포외 효소는 열 안정성이 높으며, 인산완충액(pH6.0)과 $30^{\circ}C$에서 효소활성이 최대를 나타냈다. 본 효소는 cytosine 뿐 아니라 5- fluorocytosine-을 기질로 하나, 5-methylcytosine은 촉매하지 않았다. 더우기 본 효소는 $Cd^{2-}$, $Hg^{2+}$의 중금속이온과 ImM p-chloromercuribenzoate에 의하여 완전히 실활되며, o-phenanthroline과 monoiodoacetate에 의하여 75% 저해되었다. 그러나 1mM 2-mercaptoethanol에 의하여 본 효소의 활성을 약 200% 이상 활성화시켰다.
Phospholipase A2 (PLA2) from Streptomyces violaceoruber is a lipolytic enzyme used in a wide range of industrial applications including production of lysolecithins and enzymatic degumming of edible oils. We have therefore investigated expression and secretion of PLA2 in two workhorse microbes, Pichia pastoris and Escherichia coli. The PLA2 was produced to an activity of 0.517 ± 0.012 U/ml in the culture broth of the recombinant P. pastoris. On the other hand, recombinant E. coli BL21 star (DE3), overexpressing the authentic PLA2 (P-PLA2), showed activity of 17.0 ± 1.3 U/ml in the intracellular fraction and 21.7 ± 0.7 U/ml in the culture broth. The extracellular PLA2 activity obtained with the recombinant E. coli system was 3.2-fold higher than the corresponding value reached in a previous study, which employed recombinant E. coli BL21 (DE3) overexpressing codon-optimized PLA2. Finally, we observed that the extracellular PLA2 from the recombinant E. coli P-PLA2 culture was able to hydrolyze 31.1 g/l of crude soybean lecithin, an industrial substrate, to a conversion yield of approximately 95%. The newly developed E. coli-based PLA2 expression system led to extracellular production of PLA2 to a productivity of 678 U/l·h, corresponding to 157-fold higher than that obtained with the P. pastoris-based system. This study will contribute to the extracellular production of a catalytically active PLA2.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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