Park, Jung-Ryeol;Kim, Sung-Woo;Kim, Jae-Bum;Jung, Woo-Hyuk;Han, Myung-Wan;Jo, Young-Bae;Jung, Joon-Ki
KSBB Journal
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v.21
no.3
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pp.204-211
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2006
For the production of the recombinant human interferon-gamma(rhIFN-${\gamma}$) in Escherichia coli, human glucagon and ferritin heavy chain were used as fusion partners. Even though rhIFN-${\gamma}$ is expressed as an inclusion body form in E. coli because of strong hydrophobicity of itself, over 50% of fused rhIFN-${\gamma}$ was expressed as soluble form in E. coli $Origami^{TM}$(DE3) harboring pT7FH(HE)-IFN-${\gamma}$ which encodes ferritin heavy chain-fused rhIFN-${\gamma}$. In the case of using glucagon-ferritin heavy chain hybrid mutant as a fusion partner, 6X His-tag was additionally introduced to N-terminus of GFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ for enhancing purification yields of rhIFN-${\gamma}$. Fusion protein HGFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ with two 6X His-tag was more effectively bound to Ni-NTA agarose bead than GFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ with a 6X His-tag. rhIFN-${\gamma}$ was completely purified from enterokinase-treated HGFHM(HE)-IFN-${\gamma}$ by Ni-NTA affinity column. For high-level production of rhIFN-${\gamma}$, glucose was used as the sole carbon source with simple exponential feeding rate($2.4{\sim}7.2g/h$) in fed-batch process. The effective lactose concentration for the expression of the rhIFN-${\gamma}$ was $10{\sim}20mM$. Under the fed-batch culture conditions, rhIFN-${\gamma}$ production yield reached 11 g DCW/L for 6 hours after lactose induction.
Nerve growth factor(NGF) has a critical role in peripheral nerve regeneration. The aim of this study is to construct a well-functioning hNGF-$\beta$ recombinat adenovirus for the ultimate development of improved method to promote peripheral nerve regeneration with adenovirus mediated hNGF-$\beta$ gene transfection into Schwann cells. First PCR associated cloning of GFP-tagged hNGF-$\beta$ which was ligated into E1/E3 deleted adenoviral vector was performed and tranfected into E. coli to construct hNGF-$\beta$ recombinant adenovirus. After production of recombinat adenovirus in a large scale, its transfection efficiency, expression, and function were evaluated using cell lines or primarily cultured cells of HEK293 cells, Schwann cells, fibroblast(NIH3T3) and myocyte(CRH cells). GFP expression was observed in 90% of infected cells compared to uninfected cells. Total mRNA isolated from hNGF-$\beta$ recombinat adenoviru infected cells showed strong RT-PCR band, however, LacZ recombinant adenovirus infected or uninfected cells did not. NGF quantification by ELISA showed a maximal release of 18.865 +/- 0.31ng/mL at 4th day. PC-12 cells exposed to media with hNGF-$\beta$ recombinant adenovirus infected Schwann cell demonstrated higher levels of differentiation compared with controls. We generated hNGF-$\beta$ recombinant adenovirus and induced over expression of NGF successfully in nonneuronal and neuronal cells. Following these result, it is expected to develop an improved treatment strategy peripheral nerve regeneration using the hNGF-$\beta$ gene transfected cells.
The regulation of pyrimidine nucleotide synthesis has been proved to be controlled by a regulatory protein PyrR-mediated attenuation in the Gram-positive bacteria. After several bacterial genome sequencing projects, we have discovered the PyrR orthologues in the databases for Haemophilus influenzae and Synechocystis and sp. PCC6803 genome sequences. To investigate whether these PyrR orthologue proteins regulate pyrimidine nucleotide synthesis as well as the cases of Bacillus, the PyrR regions of each strains were amplified by PCR and cloned with pUC19 or T-vector in Escherichia coli and with a shuttle vector pHPS9 for E. coli and B. subtilis. For the regulation test of the PyrR orthologues, the aspartate-transcarbamylase (ATCase) assay was carried out. From the results of the ATCase assay, it was confirmed that Synechocystis sp. PCC6803 could not restore by pyrimidines to a B. subtilis, PyrR but H. influenzae PyrR could. For Purification of PyrR orthologue proteins, PyrR orthologue genes were cloned into the expression vector (pET14b). Over-expressed product of PyrR orthologue genes was purified and analyzed by the SDS-PACE. The purified PyrR orthologue proteins from H. influenzae and Synechocystis sp. PCC6803 turned out to be molecular mass of 18 kDa and 21 kDa, respectively. The result of uracil phosphoribosyl transferase (UPRTase) assay with purified PyrR orthologue proteins showed that H. influenzae PyrR protein only has UPRTase activity. In addition, we could predict several regulatory mechanisms that PyrR orthologue proteins regulate pyrimidine de novo synthesis in bacteria, through phylogenetic analysis for PyrR orthologue protein sequences.
We carried out the expression and characterization of yeast thioredoxin system including thioredexin 1 (Trx1), Trx2, thioredoxin reductase (TR), and a novel thioredoxin (Trx3), which was reported in the data base of Saccharomyces genome. The Trx1, 2 and TR were expressed as soluble proteins in E. coli and the sizes of purified proteins were equal to the reported their molecular weights. The expressed Trx3 was found in both soluble fraction and precipitate. The size of Trx3 purified from soluble fraction of E. coli crude extracts was estimated as 14 kDa on SDS-PAGE instead of 18 kDa for Trx3 in precipitate. N-terminal amino acid sequence of the small size of purified Trx3 from soluble fraction was analyzed as FQSSYTS which is correspond to the sequence from 20 to 26 for Trx3. Trx3 together with thioredoxin reductase and NADPH was able to reduce the disulfide bridge of insulin and 5,5'-dithiobis(2-nitrobenzoic acid) (DTNB). Trx3 stimulated the antioxidant effect of thioredoxin peroxidase 1 (TPx1) which inhibited inactivation of glutamine synthetase (GS) in dithiothreitol (DTT) containing metal catalyzed oxidation system. The stimulation effect of Trx3 was 10% of the effect of either Trx1 or Trx2. In addition, Trx3 could reduce the disulfide of TPx to thiol, so that the TPx had thioredoxin dependant peroxidase activity. In western blotting analysis, antibodies against purified Trx3 did not cross-react with crude extracts of yeast, purified Trx1, and Trx2 proteins. But, in PCR reaction using the cDNA library of yeast as a template, gene encoding of trx3 was amplified.
Ha, Hye-Yeong;Lee, Heui-Jung;Park, Soon-Hee;Yoo, Mi-Ae;Lee, Won-Ho
Journal of Life Science
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v.7
no.1
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pp.49-58
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1997
Single P[en-lacZ] element including 5.7 kb of engrailed upstream sequences and the E. coli lacZ fusion gene, localized on 48A in rxyho25 strain was transposed to different sites in the Drosophila genome by the jumpstart technique. From 3315 individual genetic crosses, 113 new insertion lines carrying P[en-lacZ] inserted at different sites were obtained. $\beta$-Galactosidase expression in larval tissues of 113 insertion lines were detected by X-gal staining. & among 113 lines have been indentified to be for recessive lethal mutations. Among 7 lines, the #1119 line being lethal during embryogenesis was examined about the ${\beta}$$-Galactosidase expression, nuclear behavior and cellularization pattern during embryogenesis. The P[en-lacZ] insertion lines obtained in this study could be utilized for studying structure and function of the Drosophila development-related genes.
Park, Nyeong-Soo;Shin, Dong-Woo;Lee, Ke-Ho;Ji, Geun-Eog
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.10
no.3
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pp.312-320
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2000
Abstract The full sequence of the plasmid pKJ36, which was derived from Bifidobacterium longum KJ, was determined and analyzed to construct shuttle vectors between E. coli and Bifidobacterium. The plasmid pKJ36 was composed of 3,625 base pairs with a 65.1% G+C content. The structural organization of pKJ36 was highly similar to that of pKJ50, and the three major ORFs on pKJ36 showed high amino acid sequence homologies with those of pKJ50. The putative proteins coded by these three ORFs were designated as RepB (32.0 kDa, pI=9.25), MembB (29.0 kDa, pI=12.25), and MobB (39.0 kDa, pI=IO.66), respectively. The amino acid sequence of RepB showed a 57% identity and 70% similarity with that of the RepA protein of pKJ50. Upstream of the repB gene, the so-called iteron sequence was directly repeated four-and-ahalf times and a conserved dnaA box was identified. An amino acid sequence comparison between the MobB and MobA of pKJ50 revealed a 48% identity and 61 % similarity. A conserved oriT sequence with an inverted repeat identical to that of pKJ50 was also found upstream of the mobB gene. A hydropathy analysis of MembB revealed four possible transmembrane regions. The expressions of the repB and membB genes were confirmed by RT-PCR. The in vitro translation reaction of pKJ36 showed protein bands with anticipated sizes with respect to each putative gene product. S 1 endonuclease treatment and Southern hybridization suggested that pKJ36 replicates by a rolling circle mechanism via a single-stranded DNA (ssDNA) intermediate. A shuttle vector between E. coli and Bifidobacterium sp. was constructed using the pKJ36, pBR322, and staphylococcal chloramphenicol acetyl transferase (CAT) gene. The successful transformation of the Bifidobacterium strains was shown by Southern hybridization and PCR. The transformation efficiency differed from strain to strain and, depending on the electroporation conditions, with a range between $1.2{\times}10^1-2.6{\times}10^2{\;}cfu/\mu\textrm{g}$ DNA.X> DNA.
B-type natriuretic peptide is a neurohormone secreted in the cardiac ventricles. BNP levels are elevated in patients with ventricular dysfunction. Therefore, the concentration of BNP is important factor to reflect diagnosis and prognosis for cardiovascular disease. In this respect, anti-BNP scFv is an urgent requirement for early diagnosis in the field of biosensor. Herein, the genetic codes of anti-BNP scFv were chemically synthesized and cloned into both pET22b (+) and pColdⅣ vector, respectively. The recombinant scFv was successfully expressed as a functional form in cytoplasm of E. coli and detected through Western blot and ELISA. The highest level of functional expression of anti-BNP scFv was achieved using pET22b (+) vector at $15^{\circ}C$ by addition of 0.1 mM IPTG. Additionally, being exposed to both BNP and ANP, anti-BNP scFv specifically captured only BNP. Therefore, anti-BNP scFv expressed in this study will be applied to measure the concentration of BNP as a diagnostic recognition molecule.
Camptothecin is an anti-cancer monoterpene indole alkaloid. The gene encoding 1-hydroxy-2-methyl-2-(E)-butenyl 4-diphosphate reductase (designated as CaHDR), the last catalytic enzyme of the MEP pathway for terpenoid biosynthesis, was isolated from camptothecin-producing Camptotheca acuminata. The full-length cDNA of CaHDR was 1686 bp encoding 459 amino acids. Comparison of the cDNA and genomic DNA of CaHDR revealed that there was no intron in genomic CaHDR. Southern blot analysis indicated that CaHDR belonged to a low-copy gene family. RT-PCR analysis revealed that CaHDR expressed constitutively in all tested plant organs with the highest expression level in flowers, and the expression of CaHDR could be induced by 100 ${\mu}M$ methyl-jasmonate (MeJA), but not by 100 mg/L salicylic acid (SA) in the callus of C. acuminata. The complementation of CaHDR in Escherichia coli ispH mutant MG1655 demonstrated its function.
Photosynthesis uses light energy to drive the oxidation of water at an oxygen-evolving catalytic site within photosystem II (PSII). Chlorophyll binding by the photosystem II subunit S protein, PsbS, was found to be necessary for energy-dependent quenching (qE), the major energy-dependent component of non-photochemical quenching (NPQ) in Arabidopsis thaliana. It is proposed that PsbS acts as a trigger of the conformational change that leads to the establishment of nonphotochemical quenching. However, the exact structure and function of PsbS in PSII are still unknown. Here, we clone and express the recombinant PsbS gene from Arabidopsis thaliana in E. coli and purify the resulting homogeneous protein. We used various biochemical and biophysical techniques to elucidate PsbS structure and function, including circular dichroism (CD), fluorescence, and DSC. The protein shows optimal stability at $4^{\circ}C$ and pH 7.5. The CD spectra of PsbS show that the conformational changes of the protein were strongly dependent on pH conditions. The CD curve for PsbS at pH 10.5 curve had the deepest negative peak and the peak of PsbS at pH 4.5 was the least negative. The fluorescence emission spectrum of the purified PsbS protein was also measured, and the ${\lambda}_{max}$ was found to be at 328 nm. PsbS revealed some structural changes under varying temperature and oxygen gas condition.
Macrophage scavenger receptors (MSRs) induce microglial interaction with ${\beta}$-amyloid fibrils (fA${\beta}$) that are associated with Alzheimer's disease (AD). Although microglia are know n to have a dual effect on formation of plaque and clearance of fA${\beta}$ in the AD brain, receptor-mediated phagocytosis is a very important tool for preventing amyloid plaque via activated microglia in the early stage of AD. In the study, we examined whether ginsonoside Rg3 enhances the microglial Phagocytosis of A${\beta}$1-42 through Phagocytosis assay, gene expression (RT-PCR) and protein assay (western blots) for the cell responsiveness presented between Rg3-treated and non-treated groups. Fluro-labeled Ac-LDL and E.coli particles were used as control proteins for phagocytosis. In previous studies, this was a particularly interesting property of Rg3 in the stimulation and phagocytosis of macrophages in the periphery. We report here that ginsenoside Rg3 increased the expression of type-A MSR (MSR-A) in microglia and thus accelerated the phagocytosis with an effective degradation of engulfed fA${\beta}$. This result suggests that Rg3 may play an important role in removing fA${\beta}$ by enhancing the receptor-mediated phagocytosis. In addition, Rg3 could be a potential candidate for balancing the rate of production of fA${\beta}$ in AD brain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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