Although stool examination is the standard diagnostic method of clonorchiasis, serodiagnosis by ELISA using crude antigen is now widely used because of its convenience. However, ELISA diagnosis still suffers from cross-reactions, and therefore there is a need to improve the present conventional ELISA. The present study was undertaken to evaluate the diagnostic value of ELISA using excretory-secretory antigen (ESA) instead of crude antigen (CA) of Clonorchis sinensis. The diagnostic sensitivity of ELISA using excretory-secretory antigen was 92.5%, which was higher than that of ELISA using crude Clonorchis sinensis antigen (88.2%). In addition, the specificity of excretory-secretory antigen was found 93.1% while that of crude antigen was 87.8%. In summary, Clonorchis sinensis ESA was found to be a better serodiagnostic antigen than CA for ELISA.
Excretory-secretory products of Toxocara canis larvae have been considered as a major functional antigen in immune responses against toxocariasis. We studied ultrastructural localization of T. canis second-stage larval antigen using a seropositive human serum under immunogold electron microscopy. High-density gold particles were observed in the secretory cells, excretory duct, intestinal epithelium, and cuticle of the larval worm sections. The distribution of the positive reactions in the larval worms suggests that the nature of the antigen is excretory-secretory antigen including waste metabolites and secretory enzymes.
Swine whipworm(Trichuris suis) is cosmopolitan nematode which can cause serious pathology in immature stage(larva2~larva5) of infected pigs, such as anorexia, diarrhea, anemia, and death in heavy infections. In this larval stages, it is very difficult to diagnose the infection of whipworm and to differentiate from other common swine gastrointestinal disorders such as 21 day scours which are associated with TGE virus, rota virus, coccidium, and the stress of weaning. In this experiment, the isolated antigens of Trichuris spp. were carried out to examine the structure and specificity of antigens and to select the reasonable antigens which would be used in serological diagnosis by electrophoresis, Western blotting, ELISA. The results of this experiment were as follows; 1. The common fractions of each Trichuris suis antigen were identified 28,32,45, 80kDa by SDS-PAGE with silver stain and four major fractions could be detected in positive swine sera by Western blot analysis. 2. The OD(optical density) values of somatic and excretory-secretory antigens which were reacted against positive(negative) sera from pigs infected with Trichuris suis by ELISA reader were; 1) OD values($mean{\pm}SD$) of adult somatic antigen against positive(negative) sera were $0.30{\pm}0.12(0.09{\pm}0.006)$ and third-stage larva of somatic antigen were $0.28{\pm}0.038(0.10{\pm}0.005)$. And OD values of excretory-secretory antigens of adult and third-stage larva were $0.24{\pm}0.031(0.11{\pm}0.005)$ and $0.08{\pm}0.013(0.10{\pm}0.003)$, respectively. 2) OD values of adult somatic, larval somatic antigen and adult excretory-secretory antigen response to positive sera were significantly (p<0.01) associated with negative swine sera. And the Cut-off OD values(minimum positive value) were determined to be mean negative value plus 3 SD that would minimized the risk of false positives. 3. The OD values of somatic antigens of T suis and T vulpis against swine positive(negative) sera were $0.30{\pm}0.120(0.09{\pm}0.006)$ and $0.25{\pm}0.141(0.09{\pm}0.003)$. These data mean that the somatic antigens of T suis and T vulpis were able to diagnose T vulpis infection in dogs as well as T suis infection in pigs. These results suggest that somatic antigen of third-stage larva and excretory-secretory antigen of adult T suis could be used the diagnostic antigen by serological test(ELISA) in immature Trichuris spp. infection.
This study describes the isolation of a Toxocara canis species-specific excretory-secretory(ES) antigen and the development of an enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) based on this antigen. Analysis of the ES antigens of T. canis, Toxocara vitulorum, Ascaris lumbricoides and Necator americanus larval antigen was performed by SDS-PAGE followed by western blotting. A 57 kDa T. canis-specific antibody fraction(TcES-57) was identified by western blotting and labelling with anti-Toxocara antibodies(from experimental rabbits and human patients) and tracing with anti-human or anti-rabbit peroxidase conjugate. No protein fraction of 57 kDa was detected in ES or larval antigens collected from T. canis, T. vitulorum, A. lumbricoides and N. americanus. Using TcES-57, a specific anti-serum was produced in rabbits and a double sandwich ELISA was developed. This test was validated using known seropositive sera from toxocariasis patients, sera from A. lumbricoides or N. americanus patients, and 50 serum samples from cats. These tests revealed that TcES-57 antigen is specific to T. canis infection and does not cross react with sera of other related infections. Thus, ELISA based on TcES-57 antigen was proven to be an effective tool in the diagnosis of toxocariasis and studies on the role of T. canis in the epidemiology of human toxocariasis.
가토에게 간흡충을 감염시키고 3개월 후 거살한 다음 간흡충의 충체, 간흡충의 분비배설액 그리고 간토의 담즙을 조항원으로 제조한 후 이에 대한 항원단백질의 구성물질을 분석하였다. 그리고 cysteine계 면역억제제인 E-64와 serine계 면역억제제인 PMSF를 첨가하였을 때 단백질 구성물질의 발현 양상을 관찰하였다. 실험적으로 가토에서 얻은 간흡충 성충의 조항원은 200-9 kDa의 범위에서 26개의 분획 을 관찰하였으며, 간흡충 성충 조항원에 cysteine계 단백질분해효소 억제제인 E-64를 첨거하였을 때 잘 보존하여 200-9 kDa의 범위에서 29개의 분획을 관찰하였다. 간흡충 성충의 분비배설액 조항원은 200-9 kDa범위에서 27개의 분획이 관찰되었으며, cysteine계 단백질분해효소 억제제인 E-64를 첨거하였을 때 잘 보존하여 200-9 kDa의 범위에서 29개의 분획이 관찰되었다. 그리고 간흡충을 감염시킨 가토의 담즙 조항원은 200-9 kDa의 범위에서 19개의 분획이 관찰되었으며, serine 계 단백질분해효소인 PMSF를 첨거하였을 때 200-10 kDa의 범위에서 22개의 분획이 관찰되었으나, cysteine계 단백질분해효소인 E-64에서도 비슷한 양상을 보였다. 대조군인 건강 가토의 담즙 조항원은 200-10 kDa의 범위에서 22개의 분획이 관찰되었으며, serine계 단백질분해효소 억제제인 PMSF를 첨가하였을 때 잘 보존하여 200-12 kDa의 범위에서 23개의 분획이 관찰되었다. 앞으로 각 항원에 대한 면역학적 특징 및 단세포군 항체에 대한 구체적인 규명이 계속되어야겠다.
In order to diagnose canine heartworm infection by antigen capture ELISA, the crude somatic(S), partial somatic(below 45kDa) and excretory/secretory(E/S) antigen of adult heartworm were identified and the antigenicity was examined by silver stain, immunoblot and ELISA. Then, production of monoclonal antibody to specific antigen carried out in this experiment. The bands to S antigen and E/S antigen were recognized between 10 and 200kDa and common bands were recognized strongly 14, 18, 28, 43kDa by silver stain. By western blot analysis, fractions to S antigen were recognized 14, 16, 18, 20, 24, 28, 32, 43, 50, 55kDa, etc. and only a 14kDa to E/S antigen in positive sera which were positive in modified Knott's test and necropsy. In ELISA, the positive sera reacted to antigens(SA, $SA_{45}$, E/S) were significantly different from negative sera by Student's t-test(p<0.05). Four hybridoma cell lines(14, 16, 17, 32kDa) than produce specific monoclonal antibodies for these antigens were obtained by immunizing BALB/c mice with a partially purified somatic antigen (below 45kDa) preparation, by fusing spleen cells with SP2/O cell myeloma cells, and by screening cell culture supernatants for antibody. In these results, it was confirmed that partial somatic antigen(below 45kDa) or E/S antigen can be used for serologic diagnosis of heartworm infection and monoclonal antibody reacting with specific antigen(14kDa) can be used for antigen capture ELISA in prepatent period of canine heartworm infection.
Antibody changes in experimental anisakiasis were observed by ELlSA and SDS-PAGE/EITB using various antigens : whole worm extract antigen(WWE), somatic antigen(SOM), excretory-secretory antign(ES), and hemoglobin antigen(HB) of Anisakis Type 1. The results obtained were as follows. l) Serum levels of IgG antibody by ELISA increased from 1st week of infection and reached their maximum titer at 5th week after infection, and decreased gradually thereafter. 2) The best result expressed as positive/negative ratio could be obtained when ES antigen was used. 3) Silver stained SDS-PAGE of each antigen showed at least 20 protein bands : In WWE, 286, 278, 262, 38, 18 Kd bands ; In SOM, 38 Kd band : In ES, 286, 65, 13 Kd bands ; In Hb, 61, 55, 38, 28, 26, 22, 20, 16, 15 Kd bands iepntibied as were major bands. 4) By EITB using WWE, Serum antibody recognized major protein with molecular weight of 86 Kd and 16 Kd. Using ES, 69, 59, 16 Kd bands were observed and using Hb, 28 Kd band was observed as specific band. In conclusion, excretory-secretory antigen(ES) of Anisakis larvae was most usable for ELISA.
Trichnuris suis does not excrete eggs during larval stage as well as in particular adult stage, It is impossible to diagnose by use of fecal examination method in those periods. Therefore, serological diagnostic method can be very useful for those stages. In order to produce monoclonal antibody, specific somatic and secretory-excretory (SE) antigens of T. suis were identified and analyzed by SDS-PAGE and Western blot. Monoclonal antibody-producing hybridoma cells were cloned, which were made of popliteal lymph node of BALB/c mice immunized with a 45 kDa somatic antigen of T. suis. Five clones (1B9, 2C4, n2C5, 2D7 and 2D8) showing strong responses to T. suis antigens were selected and the isotype identified. All monoclonal antibodies were IgG1 isotype and the light chains were k chain. Established monoclonal antibodies reacted specifically to somatic and SE antigens of T. suis and did not cross-reacted to antigens of ascaris suum, trichuris vulpis, or Trichinella spiralis. The sensitivity of somatic and SE antigens against these monoclonal antibodies were significant (p<0.01) associated with those of positive and negative sera.
톡소포자충(Tomplasmngondii)은 세포내에 기생하는 구포자충(Cuidia)의 일종으로 항원은 여러 가지 단백질로 구성되어 있으며 이들 항원의 분석은 면역학적 생화학적인 면에서 시도 해 볼 필요가 있다. 톡소포자충(RH주) tachyzoite의 용해물 및 분비항원을 SDS-PAGE(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis)로 단백질 분획을 관찰하고 면역 전기영동이적법 (EITB, enzyme-linked immunelectrohansfer blot)을 시행하여 반응대를 관찰하였다. 토끼 (New Zealand산) 또는 BALB/c마우스를 톡소포자충으로 면역 또는 감염시키고 3주 또는 7주 후에 채혈 하였다. 면역 후 토끼나 마우스 혈청은 간접형광항체법(IFA)으로 항체가 1:1024 또는 1 : 128임을 확인하였다. 톡소포자충 용해물 및 분비항원으로 SDS-PAGE를 시행하였을 때 10 kDa에서 220 kDa까지 광범위한 단백질 분포대를 보였다. 톡소포자충 용해물 항원을 IgG 항혈청과 반응시켰을 때 주요 항원의 분자량은 23에서 35 kDa까지 5개의 반응대를 관찰하였으며 IgG와 IgM의 공동반응 대는 24. 27, 30. 35 kDa에서 관찰되었다. 분비항원을 IgG 항혈청과 반응시켰을 때 감염 마우스 의 복강액을 항원으로 한 경우 33(P30), 45 kDa의 반응대가 주요 항원임을 알 수 있었고 톡소포자 충을 CHL 세포로 in vitro에서 배양시킨 후 배양액의 상청액을 항원으로 EITB를 시행하였을 때 20 kDa. 30 kDa 이하의 분획에서 반응대가 관찰되었다. 이상으로 30 kDa 항원이 톡소포자충 tachyzoite의 용해물 뿐만 아니라 분비물에서도 관찰되는 중요한 항원임을 알 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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