Kim, Bok-Hee;Park, Eun-Yong;Lee, Yong-Tae;Lee, Jung-Hun;Lee, Sang-Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.6
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pp.1002-1009
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2007
A rapid, convenient homogeneous competitive enzyme immunoassay for estimating the amount of fenthion is described. The assay utilizes glucose-6-phosphate dehydrogenase-hapten conjugates that are inhibited in solution by antibodies obtained from bovine serum albumin-hapten conjugates. In order to investigate the effects of bridging group recognition on the sensitivity of dose response characteristics, the bridging groups of varying alkyl chain length were attached at the phosphate position of fenthion. Among the antibodies used, the one obtained from the use of hapten (fenthion analog) with the same bridging group structure that was used in preparing the enzyme-fenthion conjugates showed maximum inhibition (up to 51.8%) in the absence of fenthion. In the presence of fenthion, the activity of the enzyme-hapten conjugate is regained in an amount proportional to the fenthion concentration. Under the optimized condition, the $ED_{50}$ value for fenthion was $0.809{\mu}g/ml$. The assay developed in this study is a rapid effective screening method for fenthion prior to precise analysis.
The single-vessel multienzyme UDP-${\alpha}$-$\text\tiny{D}$-glucose recycling system was coupled with a forward glucosylation reaction to produce novel glucose moiety-conjugated derivatives of different tetracycline antibiotic analogs. Among five tetracycline analogs used for the reaction, four molecules (chlorotetracycline, doxytetracycline, meclotetracycline, and minotetracycline) were accepted by a glycosyltransferase enzyme, YjiC, from Bacillus licheniformis to produce glucoside derivatives. However, the enzyme was unable to conjugate sugar units to rolitetracycline. All glucosides of tetracycline derivatives were characterized by ultraviolet absorbance maxima, ultra-pressure liquid chromatography coupled with photodiode array, and high-resolution quadruple time-of-flight electrospray mass spectrometry analyses. These synthesized glucosides are novel tetracycline derivatives.
In order to establish a rapid, sensitive and specific diagnostic method for detection of antibody to Brucella abortus, a enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) was adapted. The diagnostic efficacy of the established ELISA was compared with that of the standard tube agglutination test for B abortus. 1. It was found that the optimal concentration of antigen for this ELISA was 5$\mu\textrm{g}$/ml, the optimal dilution of conjugate was 1 : 2000, and the optimal dilution of serum was 1 : 200, respectively. 2. Cut off value in this ELISA was 1,102 that was determined by mean absorbance(at 492nm) of tube agglutination test negative serum added with the triple value of the standared devation. 3. The relationship between the tube agglutination test and ELISA was showen high corresponding rate with sensitivity(96.3%) and specificity(98.1%). 4. The efficacy of the ELISA for detection of B abortus antibody was compared with tube agglutination test In brucellosis outbreak farm. The sensivity of ELSIA was higher than tube agglutination test.
For development of $EMIT-T_{3}$ assay, the conjugation of 3, 5, 3'-triiodothyroformic acid NHS ester to G6PDH was attempted in various reaction conditions. Up to now, the best conjugation condition was the ratio of $T_{3}$-NHS:G6PDH=100 in 25% carbitol-Tris buffer at pH 9, $0^{\circ}C$ during overnight. The obtained $T_{3}$-G6PDH conjugates usually had 20% residual enzyme activity which was inhibited by 40-70% with various $anti-T_{3}$ antibodies. Utilizing the conjugate I and an antibody (S2633G), a useful standard curve for $T_{3}$ assay was obtained in the range of 0 to 5ng/ml with 499 EMIT units of separation.
To construct a competitive ELISA standard curve for the detection of glucose-6-phosphate debydrogenase (G6PD), we used highly purified native G6PD (nG6PD) as both immobilized and soluble antigens and anti-G6PD serum raised against nG6PD as antibody. The polystyrene cuvettes coated with nG6PD were challenged with a mixture of a limiting amount of anti-G6PD serum and various doses of nG6PD as competitors followed by incubation with alkaline phosphatase-anti-IgG conjugate. The competitive ELISA did not exhibit the typical sigmoidal dose-response curve characteristic of competition immunoassays under the optimal concentrations of antigen and antibody. The soluble nG6PD used as competitor failed to effectively inhibit the binding of antibodies to the immobilized nG6PD. The addition of NADP, a cofactor of G6PD enzyme, to coating buffer used for immobilizing nG6PD to the cuvettes and PBS-Tween-BSA buffer for diluting competitors did not improve the inhibition of antibody binding to immobilized nG6PD by soluble n/G6PD. The addition of BSA to coating buffer did not increase inhibition, either. Surprisingly, when partially active G6PD (paG6PD), obtained by repeated freeze-thawing, was used as competitor, the antibody binding to either immobilized nG6PD or immobilized paG6PD was inhibited 49-58%. We conclude that an effective competitive ELISA system with nG6PD enzyme and anti-G6PD serum for the detection of G6PD may not be established due to the poor inhibition of antibody binding to immobilized nG6PD by soluble nG6PD under the present assay conditions and that the inhibition may be improved by using an inactivated enzyme as competitor regardless of the type of immobilized antigen used. These results imply that the immobilized nG6PD may undergo denaturation upon binding to the polystyrene cuvettes and that our anti-G6PD serum may recognize denatured enzyme better than active enzyme.
This study was conducted to evaluate the possibility of application of a microenzyme-linked immunosorbent assay(micro-ELISA) for the serodiagnosis of specific toxoplasma antibodies in swine sera and this test was performed as a microplate system by coating the polystyrene plates with toxoplasma soluble antigen, incubated serially diluted sera, then added horse radish peroxidase labelled goat anti-swine IgG(r) conjugate followed by o-phenylenediamine as substrate. The color development by enzyme-substrate reaction was determined by the photometric reading [ELISA reader at 490nm (OD)] and visual reading. The soluble antigen was prepared from the tachyzoites in mouse peritoneal cavity. A total of 1,200 swine sera from pig slaughter-house and a total of 116 swine sera from pig breeding station (S-C farm) were tested for the detection of antibodies to Toxoplasma gondii. The results obtained were summarized as follows: 1. The optimal reactions of indirect ELISA for the test sera were determined by the dilution of antigen 1:256 and 1:3,200 of horse radish peroxidase conjugate [anti-swine IgG(r)]. 2. The specific togoplasma antibody(IgG) in pigs infected with Tp artificially were detected as the serum titers of 1:64 or 1:128 at one week postinfection. 3. Of a total of 1,200 swine sera from pig slaughter-house 505 samples of sera were detected as positive (42.1%) and of a total of 116 swine sera from S-C pig breeding station 68 samples of sera as positive (58.6%). 4. The specific antibody(IgG) detection rates against a total of 1,200 test sera from pig slaughter-house were not significant between male (43.1%) and female (40.7%). 5. The indirect ELISA was proved to be a sensitive and specific procedure for the serodiagnosis of swine toxoplasmosis and also evaluated as an effective screening test for the large scale of test samples in laboratory.
To develop an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for nivalenol (NIV), we produced polyclonal antibodies against tetraacetyl nivalenol (Ac4-NIV) and established ELISA conditions. Ac4-NIV-hemisuccinate conjugated to bovine serum albumin (Ac4-NIV-HS-BSA) was immunized with Freund's adjuvants into rabbits subcutaneously several times. By use of the antiserum showing the highest titer and Ac4-NIV-HS-HRP conjugate, we established competitive direct ELISA (cdELISA). Standard curve of cdELISA showed that the detection range of Ac4-NIV was about 10~5,000 ng/ml (ppb). The cross-reactivities of the polyclonal antibody towards Ac4-NIV and acetyl T-2 were 100 and 70% respectively, and those towards NIV, deoxynivalenol, 3-acetyl deoxynivalenol, 15-acetyl deoxynivalenol, triacetyl deoxynivalenol, fusarenonX, and T-2 were less than 0.1%. When cdELISA was applied to NIV-spiked corns followed by extraction with 70% acetonitrile and acetylation with acetic anhydride in pyridine, the recovery rates of the Ac4-NIV were 108, 143, and 70% (average, 107%) in the levels of 100, 300, and 1,000 ng/g (ppb), respectively.
Soybeans contain the phytoestrogens genistein and daidzein, their glucosides genistin and daidzin and coumesterol. These isoflavonoid compounds are capable of producing an estrogenic response in a number of diverse species. This study determined optimum conditions for the extraction of the main isoflavones(daidzin, genistin, daidzein, genistein) in defatted soybean meal using high-performance liquid chromatography. The best optimum extraction was achieved at 75% ethanol, $80^{circ}C$, pH4 and a three hour contact time. In addition, isoflavones with high purity were separated by adding up to 4%(w/v) of calcium chloride dihydrate. Most soybean extracts were composed of $beta$-glucosidic conjugate(daidzin, genistin) which is difficult to adsorb in body. Therefore, $beta$-glucosidase was used to convert as conjugate to aglycone form (daidzein, genistein) which is easy to adsorb. The optimal conditions of enzyme reaction involved to be 8.4 units of enzyme concentration, pH5.0, $40^{circ}C$ and 40 minutes.
This study introduced the development of a strip type disposable enzyme-linked immunosensor platform for the detection of IgG. Strips of the strip sensor were fabricated by using commercial nitrocellulose filter membranes and a housing holder for the strips was manufactured by using a standard injection molding process for a plastic material. An IgG-urease conjugate was prepared and used for the competitive immune-binding with sample IgG. From the enzymatic reaction between the conjugated urease and urea added, ammonia was generated and caused a localized alkaline pH change on the immobilized antibody band which was coated onto the sensor strips. This pH increase subsequently caused a color change of the antibody band in the presence of a pH indicator, phenol red. Used in conjunction with a competitive immunoassay format, the intensity of the color produced is directly linked with the concentration of target analyte, IgG, and specific measurement of IgG in a lateral flow immunoassay format was achieved over the range 100 ppb to 2000 ppb IgG.
To develop an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for detecting mold, we produced anti-mold polyclonal antibodies by immunizing extracellular polysaccharide (EPS) of Aspergillus flavus or Penicillium citrinum in rabbits subcutaneously. Using the purified antibody (Ab) and Ab-HRP conjugate, a sandwich ELISA for EPS was established. The standard curve of the ELISA showed the detection limit for P citrinum EPS to be $0.003{\;}\mu\textrm{g}/ml$. The cross-reactivities of the anti-P citrinum EPS Ab toward components of P citrinum such as EPS, liquid, and solid culture mycelium were 100, 10.5, and 0.58%, respectively, and those toward components of A. flavus such as EPS, liquid and solid culture mycelium, and spore were 300, 0.67, 0.29, and 0%, respectively. When the reactivities toward culture broths of 59 mold strains were tested by the sandwich ELISA, most of the Aspergillus (16 of 18) and Penicillium (14 of 16) strains along with one of the two Cladosporium strains gave positive signals in the culture broths even when diluted 1,000 fold, while the rest of species such as Fusarium, Absidia, Alternaria, and Candida gave negative signals. When the water extracts of 30 corn samples were analyzed by the sandwich ELISA, the EPS in the com could be detected in the concentration range of $0.1-1.6{\;}\mu\textrm{g}/g$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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