Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2021.04a
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pp.51-51
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2021
This study was conducted to develop a somatic embryogenesis protocol for the Cnidium officinale Makino difficult to seed propagation. The immature flowers were used as explants. The concentration of a 2,4-D 1.0mg/L was found to be optimal concentration for induction of embryogenic callus and somatic embryos. Addition of 0.3mg/L, 0.5mg/L and 1.0mg/L to the embryo germination medium promoted somatic embryo germination. Among four concentrations, GA3 1.0mg/L were superior to others. Shoots were transferred to hormone-free MS medium after 2 months of culture in the dark. We obtained an optimized protocol for the regeneration of C. officinale.
In order to induce somatic embryogenesis from the stem explants and anther of Kalanchoe daigremontiana, the explants were cultured on MS medium supplemented with auxin (2,4-D, IAA, NAA) and/or cytokinin (BAP) for 8 weeks. Callus from explants was induced most efficiently on MS medium containing. 2.0mg/L NAA and 0.2mg/L BAP. Somatic embryogenesis in stem callus was formed by transfering embryogenic callus from induction media containing growth regulators to medium without growth regulators and then to the medium containing auxin and cytokinin (0.1 mg/L IAA and 1.0mg/L BAP). Callus formation occurred actively in the anthers at early uninucleate stage, and by low temperature pretreatment at $4^{\circ}C$ for 3days. Somatic embryogenesis from the anther callus was induced on MS medium containing 1.0mg/L NAA and 1.0mg/L BAP, 2.0mg/L NAA and 0.2mg/L BAP. The tetraploid of 5.4% was obtained among plants regenerated from anthers.
In order to investigate the effects of developmental stage of embryos and plant growth regulators on mass production of Zantedeschia spp. Southern Light, immature zygotic embryos of Zantedeschia spp. Southern Light were cultured on Murashige and Skoog(1962) basal media or containing 2,4-D, NAA and BA. Globular embryos did not grow on any of the 2,4-D, NAA and BA combinations. The most suitable stage of immature zygotic embryo culture on the induction callus and multiple shoot was at early cotyledonary embryo stage, and at this stage of embryos were germinated up to 87.5%. The whitish watery callus and yellowish compact nodular callus produced on all 2,4-D, NAA and BA media. The best combination for inducing embryogenic callus was 0.5 mgL NAA and 1.0 mg/L BA. Whitish watery calli have been subcultured for more than 8 months and have retained their producing ability, Plant regeneration was only obtained by direct shoot development and yellowish compact nodular calli. Abundant plantlets were regenerated from cotyledonary stage of embryo culture on MS medium supplemented with 0.5 mg/L NAA and 1.0 mg/L BA. Supplementation of the media with 10% coconut water showed as the best concentration for plant differentiation from direct developed of shoots. The number of regenerated plants from one embryo could be seperated 25-35s plantlets. All yellowish compact callus-derived plantlets were transferred to pots containing a mixture of vermiculite, perlite and sand(1:1;1 v/v) and 100% of divided plantlets were phenotypically normal.
Kim, Ok-Tae;Kim, Min-Young;Kim, Kwang-Soo;Ahn, Jun-Cheul;Hwang, Baik
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.11
no.5
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pp.336-339
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2003
Hydrocotyle maritima Honda used as medicinal plants for a hemostatic agent was investigated for in vitro regeneration. The petiole explants of H. maritima were cultured on callus induction medium containing growth regulators ($0{\sim}5\;mg/l$, NAA and $0{\sim}5\;mg/l$ 2,4-D) either in single or in combination with $0.1{\sim}2\;mg/l$ BA for 6 weeks. Although single treatments of 2,4-D or NAA resulted in callus formation, the best results were combination of $0.5\;mg/l$, 2,4-D and $0.5\;mg/l$, BA. $5\;mg/l$, NAA and $0.5\;mg/l$, BA, respectively. The highest number of shoot (12 shoots per callus) was achieved with $3\;mg/l$, Kinetin. Also, when pieces of embryogenic callus induced on the medium supplemented with $0.5\;mg/l$, 2,4-D and $0.5\;mg/l$, BA were subcultured on hormone-free medium, somatic embryos were differentiated and developed further into welldeveloped plants.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.35
no.4
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pp.316-320
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2015
In order to improve the transformation efficiency of zoysiagrass by increasing the frequency of callus formation from mature seeds and plant regeneration, the effect of pre-treatment with sea sand was examined. Mature zoysiagrass seeds were given 10 min of swelling time before sea sand treatment using a sea sand and seed ratio of 1 : 1 and a vortex shaking speed of 6 (1,000 rpm) for 10 min. The seeds showed increased callus formation that was more than 2 times the rate in the control. In addition, plant regeneration efficiency was also increased when embryogenic callus induced from sea sand-treated mature seeds was cultured in regeneration medium. These results will be very helpful for improving the genetic transformation frequency of zoysiagrass, a recalcitrant monocot grass.
This study was conducted to investigate somatic embryogenesis capacity using callus derived from bud meristems in sweetpotato. Shoot apical meristem explants $(height:150{\mu}m;base:\;350{\mu}m)$were cultured on MS medium supplemented with 1 mg/L 2/4-D. Embryogenic callus were observed in five cultivars when their shoot apices were cultured on MS medium supplements with 1 mg/L 2,4-D. After 6 weeks of culture, greater than 80% of the survived explants produced embryogenic calli and the calli gave rise to somatic embryos at frequencies of 72% (Yulmi), 60% (Shinhwangmi), 78% (Geonmi), 70% (KoKei 14), 40% (Sinjami). The regenerated plants developed into whole plantlets after they were transferred onto the fresh hormon-free MS medium of 74% (Yulmi), 82% (Shinhwangmi), 86% (Geonmi), 74% (Kokei 14), 41% (Sinjami) respectively.
This study was carried out to develop reliable systems for somatic embryogenesis in oil palm tree (Elaeis guineensis Jacq.), and to verify the somaclonal variants by RAPD analysis. Embryogenic callus was induced successfully on modified half-strength MS medium containing $NaH_2PO_4{\cdot}2H_2O$ and casein. Embryogenic callus was further developed to somatic embryo mass (SEM), which is very hard and bonded tightly each other. Plantlets were proliferated when SEM was cultured on modified MS medium containing half strength $NH_4NO_3$, casein and L-ascorbic acid. Plantlets were transplanted into pots containing artificial soils. When RAPD analysis was conducted using randomly selected 95 in vitro plantlets and 19 random primers, somaclonal variation was detected using BNR35 primer. There was missing band around 1 kb in #22, #28, #35, and #77 plantlets. In addition, bands obtained from #28, #35, and #77 was much stronger than other normal bands. The blast results at NCBI revealed that somaclonal variation observed in this study was related to chloroplast genome of oil palm. The results also revealed that oil palm reproduction system through somatic embryogenesis is quite reliable and early detection of somaclonal variants seem to be possible at in vitro stage by RAPD analysis.
Alstroemeria plants were transformed by using an improved particle-gun-mediated transformation system. Friable embryogenic callus (FEC) induced from the leaves with axil tissues of Alstroemeria plant was used as the target tissue. Also, FEC was transformed with the bar gene was used as a selectable marker. In the case of plasmid pAHC25, 7.5% of the twice-bombarded FEC clumps showed blue foci, whereas the clumps with single bombardment showed only 2.3%. Additionally, a 90° rotation with double bombardment led to a higher frequency (6 times) of luciferase gene expression in PBL9780 than the control treatment. After 8 weeks of bombardment, more than 60 independent transgenic lines were obtained for pAHC25 and nearly 150 independent transgenic lines were obtained for PBL9780, all of which were resistant to PPT and demonstrated either GUS or luciferase activity. Regarding effect of osmotic treatment (0.2 M mannitol) with 7 different periods, the highest transient gene expression was obtained in 8 h before and 16 h after transformation in both pAHC25 and PBL9780. Compared with the control, at least three times more GUS foci and photons were observed in this treatment. With respect to different combinations of mannitol and sorbitol with 8 h before and 16 h after transformation, high numbers of transient and stable transgene expressions were observed in both 0.2 M mannitol and 0.2 M sorbitol used in the osmotic pre-culture. This combination showed the highest transformation efficiency in both pAHC25 (8.5%) and PBL9780 (14.5%). In the control treatment, only 10% of the FEC clumps produced somatic embryos. However, by using 0.2 M mannitol and 0.2 M sorbitol, the frequency of somatic embryos increased to 36.5% (pAHC25) and 22.9% (PBL9780). Of the somatic embryos produced, at least 60% germinated. Approximately 100 somatic embryos from these 210 independent transgenic lines from 2 plasmids developed into shoots, which were then transferred to the greenhouse. PCR analysis confirmed the presence of the bar gene. This is the report on the production of transgenic Alstroemeria plants by using particle bombardment with a high efficiency, thereby providing a new alternative for the transferring of gene of interests in Alstroemeria in the breeding program in the future.
Picea koraiensis, called Korean spruce, is an evergreen tree and found mostly in northeast Asia. In this study, plant regeneration via somatic embryogenesis from open-pollinated immature zygotic embryos of nine geno-types of elite trees was established. Immature zygotic embryos were cultured onto RJW medium modified from 505 medium with $21.48{\mu}M$ NAA, $2.22{\mu}M$ BA, and $2.32{\mu}M$ KT. The average frequency for all nine genotypes was 74.2%. Embryogenic calluses of the nine genotypes of elite trees were subcultured on RJW basal medium containing $8.06{\mu}M$ NAA, $1.11{\mu}M$ BA, and $1.16{\mu}M$ kinetin. The calluses of three lines, $3^{\sharp}$, $9^{\sharp}$, and $2^{\sharp}$, were actively proliferated but others were not. Somatic embryogenesis was induced from the embryogenic callus in genotypes of $3^{\sharp}$, $9^{\sharp}$, and $2^{\sharp}$ on RJW medium with ABA and $60g\;l^{-1}$ sucrose. Cotyledonary somatic embryos were subjected to a drying process. The drying of embryos by uncapping the culture bottle for 5 days on a clean bench resulted in a high frequency of germination of somatic embryos (87% in RJW medium). However, plantlet conversion from germinated embryos was greatly reduced and the optimal medium for plant conversion was 1/2 WPM or 1/2 BMI medium. In conclusion, we have, for the first time, established a plant regeneration system via somatic embryogenesis in the Korean spruce, which can be applied for rapid micropropagation of elite trees.
Embryogenic callus was obtained from cotyledonary explants of Codonopsis lanceloata on Murashige & Skoog's medium supplemented with 1 mg/L 2,4-D. Suspension cultures of the embryogenic calli were grown on a shaker at 100 strokes/min, and then the calli were subcultured for 2 weeks in 2,4-D-free medium to produce somatic embryo. In somatic embryos at the globular stage, cotyledon initials began to differentiate themselves in the near distal end of the procambial strand. Dicotyledons, tricotyledon, tetracotyledon and fused cotyledon were differentiated from the distal ends of two, three, four and circular procambial strands, respectively. Nearly circular procambial strand in lower hypocotyls were independently differentiated into two, three, four procambial tissues at cotyledonary node and cotyledons to form somatic embryos with dicotyledon, tricotyledon, tetracotyledon. If the distal subepidermal cells of globular embryo exclusively became cotyledon initials, the torpedo or cotyledonary embryo was characterized by somatic embryos with fused cotyledon.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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