The aim of this research is to establish the conditions for Agrobacterium-mediated genetic transformation using microspore. The embryo induction from the microspore was examined under several Kanamycin concentration in media, and the induction rate decreased about 4, 8, 10 times when the Kanamycin concentration increased 10, 50, 100 mg/L, respectively. This indicates that the transformation rate would be much lower if the Kanamycin was used for selection marker. In order to apply the GFP gene as a reporter gene for Agrobacterium-mediated genetic transformation, GFP expression from the microspore-mediated embryos was observed using GFP filter under microscope. The GFP expression occurred when the microspore cultured toward the embryo development for 12, 24 and 48 days. The microspore formed a cluster by microspore division from 12 days culture and continuously became a bigger mass. We obtained a total of 8 GFP-expressing embryos suggesting that the transformation of microspore occurred. However, those young embryos were not fully developed. Further study pertinent to culture conditions is required to fulfill the Agrobacterium-mediated genetic transformation using microspore.
This study was conducted to establish mass propagation system from the tissue culture using immature embroys in Eleutherococus senticosus. Immature embroys from seeds were removed under the microscope and placed on modified SH and WPM medium containing several plant growth regulators. The calli were well formed on media containing 1mg/l of 2,4-D on modified SH medium and 1mg/l of 2,4-D and 3mg/l of TDZ on WPM medium. Shoot regeneration was better on modified SH or WPM medium with combination of high concentration of TDZ and low concentration of 2,4-D. Treatment of 2,4-D alone was better than treatment of TDZ alone in callus induction on modified SH medium but plant regeneration reversed. Treatment of 2.4-D and TDZ combination was better than treatment of 2,4-D alone in callus induction on WPM medium. The results of callus formation and shoot regeneration on WPM media differed to those of SH media. The rate of callus formation was nearly 83% when 2,4-D was added to SH medium on concentration of 1mg/l. The rate of callus formation was nearly 38% when combination treatment of 2,4-D 1mg/l and TDZ 3mg/l was added to WPM medium. Also, plant regeneration differed depending on the mature degree of immature embryo.
Inoculated anthers of Capsicum annuum L. were subjected to 4 and 32$^{\circ}C$ pretreatment and their influence on the microspore viability, early cytological changes and the induction frequency of microspore embryo was investigated. Viability of freshly isolated microspores was between 62 and 64%. During temperature pretreatment, microspore viability showed a rapid decrease and this tendency enhanced with the 32$^{\circ}C$ pretreatment. Irrespective of temperature pretreatment, microspore viability declined to nearly zero after nine days. Before temperature pretreatment, most of the microspores in anthers were at late uninucleate stage. Several types of multinuclear microspores appeared from the 2 day after culture onwards, together with many degenerated and non-induced microspores. The 32$^{\circ}C$ pretreatment gave higher proportions of embryogenic microspore than other treatment. However, the temperature pretreatment had no clear effect on the frequencies of symmetrical binucleate rnicrospore. The multinucleate grains might originate either by symmetrical or asymmetrical division. After 2 days of pretreatment at 25 and 32$^{\circ}C$ , degenerated microspore increased above 50%. In contrast, during 4$^{\circ}C$ treatment, nucleus of most microspores remained intact for 14 days. The 32$^{\circ}C$ pretreatment produced more embryos than 4$^{\circ}C$ treatment. The most effective period of 32$^{\circ}C$ pretreatment was 4 days. In contrast, effective period of 4$^{\circ}C$ pretreatment was 2 days and longer time had deleterious effect on induction of microspore embryo.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2003.10b
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pp.21-21
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2003
An efficient plant regeneration system was developed for Hordeum vulgare L. cv Baegdong - an important Korean cultivar. The protocol was based on a series of experiments involving the sizes of mature embryos and the culture media. The embryo size is found to be critical for the establishment of embryogenic callus. Embryos of 1.1-1.5 mm size showed a much higher ability to produce embryogenic callus capable of regenerating green plants. The auxins picloram and dicamba proved effective in inducing callus from mature embryos. 2.5 mg $I^{-1}$ dicamba and 4.0 mg $I^{-1}$ picloram in Murashige and Skoog's (MS) medium was optimum for the induction of primary callus. The induced primary callus was loose and friable which ultimately developed into creamy white and compact callus after transferring into the fresh medium. Multiple shoots were induced in the MS medium supplemented with 6.0 g $I^{-1}$ maltose, 20 mg $I^{-1}$ sorbitol, 0.5 mg $I^{-1}$ 2,4-D and 1.0 mg $I^{-1}$ kinetin and the rate was 6.5 shoots per embryo. Regenerated plants were hardy and developed roots rapidly in the medium containing 0.2 $I^{-1}$ IBA. This efficient plant regeneration system provides a foundation for generating transgenic plants of this important barley cultivar.
Objective : The aim of this study was to evaluate the outcome the GnRH antagonist (Cetrotide) short protocol in controlled ovarian hyperstimulation comparing with GnRH agonist long protocol. Materials and Method: From July 2000 to November 2001, 26 patients, 28 cycles were performed in controlled ovarian hyperstimulation by GnRH antagonist and GnRH agonist. GnRH antagonist (Cetrotide) was administered in 12 patients (14 cycles, Group 1) and GnRH agonist (Lucrin, Sub Q, Group 2) in 14 patients (14 cycles). Ovulation induction was performed by hMG (Pergonal) in group 1, and by Combo (Metrodine HP + Pergonal) in group 2. We compared the fertilization rate, good quality embryo, and clinical pregnancy rate between the two groups. Student-t test and Chi-square were used to determine statistical significance. Statistical significance was defined as p<0.05. Results: Ovarian hyperstimulation syndrome did not occurred in which estradiol (E2) level was $3874{\pm}809\;pg/ml$ and the number of retrieved oocytes was $18.4{\pm}2.4$. The number of used gonadotropin ampules was significantly decreased in Group 1 (26.0 vs. 33.1, p<0.04). There were no significant difference in the number of preovulatory oocyte ($10.6{\pm}6.9$ vs. $10.0{\pm}6.1$), fertilization rate ($74.8{\pm}23.4$ vs. $72.2{\pm}21.8$), good quality embryo ($58.7{\pm}23.6$ vs. $38.7{\pm}36.6$), and embryo transfer ($4.3{\pm}1.6$ vs. $4.4{\pm}1.6$). Although the age of the group 1 was older than the group 2 (34.4 vs. 30.8), there was no significant difference in clinical pregnancy rate (50.0% vs. 57.1%). Conclusions: We suggest that GnRH antagonist was a safe, effective, and alternative method in the controlled ovarian hyperstimulation, especially in PCOD patients who will be develop the ovarian hyperstimulation syndrome.
In order to investigate the effect of low temperature pretreatment on pollen dimorphism and embryo formation in anther culture of Platycodon grandiflorum, the anthers with microspore at the uninucleate stage were cultured on Murashige and Skoog medium supplemented with 0.5mg/L NAA and 1.0 mg/L BA. The low temperature pretreatment have clear effect on the frequencies of S pollen grains, symmetrical binucleate microspores (B type of S pollen), multinucleate and multicelled pollen grains. Especially, after low temperature pretreatment at 8$^{\circ}C$ for 5 days increased the frequency of S pollen grain (20.6%) in vivo. In addition, the highest frequency of callus induction (54.9%) and embryo formation (9.9%) were obtained from the anther pretreatment at 8$^{\circ}C$ or 5 days. Three distinct pathways could be recognized in the androgenesis, one involving mainly the vegetative cell, the second starting with the vegetative and the generative cell, respectively, and the third accompaning with two equal vegetative type cells in the pollen grains.
Developmental anomalies in the plumule meristem of peanut (Arachis hypogaea L.) somatic embryos resulted in poor shoot differentiation and reduced plant recovery. Existing meristems with caulogenic potential have never been tested for embryogenesis in peanut. The present experiment was designed to test the mature zygotic embryo axis derived plumule with three meristems for somatic embryogenesis. Embryogenic masses and embryos developed from the caulogenic meristems in the axils. Exposure of 2 weeks in primary medium with $90.5{\mu}M$ 2,4-D suppressed the shoot tip differentiation temporarily which then regained the ability to form the shoot on withdrawal of 2,4-D. Exposure of 4 weeks in primary medium with $90.5{\mu}M$ 2,4-D suppressed the shoot tip differentiation irreversibly. No shoot formation was noted from the tips in any of the cultures which were in secondary medium with $13.6{\mu}M$ 2,4-D. Development of somatic embryos directly from axillary meristems was confirmed histologically. Conversion frequency of these embryos was 11%. Thus, in this report, we describe a method to obtain somatic embryos from the determined organogenic buds of the axillary meristem, by culturing the nodal explant vertically on embryo induction medium. It also displays the possibility of obtaining both embryogenic and organogenic potential in two parts of the same explant simultaneously. The possibility of extending this approach for genetic transformation in in vivo system through direct DNA delivery or Agrobacterium injection in meristems can also be explored. Using Agrobacterium rhizogenes, we have demonstrated the possibility of gene transfer in the axillary meristems of seed-derived plumule explant.
The genetic status of somatic embryo-derived plantlets of Cymbopogon flexuosus was examined by randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis. Auxins such as 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid (2, 4-D) (1-4 mg/l) were used in Murashige and Skoog (MS) medium for induction of calli from rhizomatous explants of Cymbopogon flexuosus. Optimum calli were induced on MS medium supplemented with 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid (2, 4-D) (3.5 mg/l) alone or in combination with $N^6-benzyladenine$ (2 mg/l). Somatic embryogenesis was achieved from long term calli when cultured on MS medium containing 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid (2, 4-D) (2 mg/l) along with $N^6-benzyladenine$ (BA) (1-2 mg/l). Regeneration was achieved when freshly induced embryogenic calli were sub-cultured on MS medium supplemented with $N^6-benzyladenine$ (3 mg/l) alone. Long-term cultured embryos showed profuse minute rooting on regeneration medium supplemented with N6 -benzyladenine (3 mg/l). Microshoots were rooted in the presence of indole-butyric acid (IBA) (2 mg/l). DNA samples from the mother plant and 18 randomly selected regenerated plants from a single callus were subjected to RAPD analysis with 6 arbitrary decamer primers for the selection of putative somaclones. A total of 64 band positions were scored, out of which 19 RAPD bands were polymorphic. From genetic similarity coefficient based on RAPD band data sharing, it was found that the majority of the clones were almost identical or more than 92% similar to the mother plant, except CL2 and CL9 (66%) which showed highest degree of genetic change with CL2 and CL9 showing presence of two non-parental bands each.
In the present study, a simple one medium formulation protocol for callus culture, somatic embryogenesis and in vitro production of ${\beta}-carboline$ alkaloids and diosgenin in Tribulus terrestris L. was developed. Extensive callus induction and proliferation was obtained in leaf explant on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with $5.0{\mu}M$ 6 benzyl adenine (BA) and $2.5{\mu}M$${\alpha}-naphthaleneacetic$ acid (NAA). The embryogenic callus was maintained on subculture to fresh parental medium at 4-week intervals over a period of 28 months. The frequency of embryo formation was at a maximum ($18.1{\pm}0.9$ per g of callus) on MS medium containing $5.0{\mu}M$ BA and $2.5{\mu}M$ NAA together with $75mg\;1^{-1}$ casein hydrolysate. Globular embryo developed into torpedo stage embryo under the influence of starvation. The accumulation of ${\beta}-carboline$ alkaloids (harmaline and harmine) and steroidal saponin (diosgenin) in non-embryogenic and embryogenic callus culture derived from leaf explant was compared with root, leaf, stem, and fruit of the mother plant. The embryogenic callus accumulated equivalent amounts of harmaline ($66.4{\pm}0.5{\mu}g/g$ dry weight), harmine ($82.7{\pm}0.6{\mu}g/g$ dry weight), and diosgenin ($170.7{\pm}1.0{\mu}g/g$ dry weight) to that of the fruit of T. terrestris. The embryogenic callus culture of this species might offer a potential source for production of important pharmaceuticals.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2003.10a
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pp.59-67
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2003
An efficient plant regeneration system was developed for Hordeum vulgare L. cv Baegdong - an important Korean cultivar. The protocol was based on a series of experiments involving the sizes of mature embryos and the culture media. The embryo size is found to be critical for the establishment of embryogenic callus. Embryos of 1.1-1.5 mm size showed a much higher ability to produce embryogenic callus capable of regenerating green plants. The auxins picloram and dicamba proved effective in inducing callus from mature embryos. $2.5\;m;I^{-1}$ dicamba and $4.0\;mg\;I^{-1}$ picloram in Murashige and Skoog's (MS) medium was optimum for the induction of primary callus. The induced primary callus was loose and friable which ultimately developed into creamy white and compact callus after transferring into the fresh medium. Multiple shoots were induced in the MS medium supplemented with $6.0\;g\;I^{-1}$ maltose, $20\;mg\;I^{-1}$ sorbitol, $0.5\;mg\;I^{-1}$ 2, 4-D and $1.0\;mg\;I^{-1}$ kinetin and the rate was 6.5 shoots per embryo. Regenerated plants were hardy and developed roots rapidly in the medium containing $0.2\;I^{-1}$ IBA. This efficient plant regeneration system provides a foundation for generating transgenic plants of this important barley cultivar.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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