Kim, Jai-Hyun;Hwang, Eun-Ha;Park, Hye-Jung;Paik, Young-Ki;Shim, Yhong-Hee
Molecules and Cells
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v.19
no.2
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pp.279-282
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2005
In mammals, 7-dehydrocholesterol reductase (Dhcr7) is the terminal enzyme in cholesterol biosynthesis. We previously reported that the Dhcr7 proximal promoter (-179 to +1), which contains CpG islands, is responsible for sterol-mediated expression of the rat gene. In the present study, we examined whether methylation of this region affects the transcriptional activity of the Dhcr7 gene. In vitro DNA methylation of the Dhcr7 promoter and luciferase-reporter assays showed that DNA methylation of the CpG islands suppressed transcription. Furthermore, treatment of the methylated Dhcr7 promoter with the demethylating agent, 5-aza-2'-deoxycytidine (5-Aza-CdR), reversed the suppression of promoter activity. These results indicate that methylation of the CpG islands is an important transcriptional regulatory mechanism in the Dhcr7 promoter.
The ten-eleven-translocation-2 (TET2) gene is a novel tumor suppressor gene involved in several hematological malignancies of myeloid and lymphoid origin. Besides loss-of-function mutations and deletions, hypermethylation of the CpG island at the TET2 promoter has been found in human cancers. The TET2 encoded protein regulates DNA methylation. The present study aimed to examine DNA promoter methylation of TET2 in 100 childhood acute lymphoblastic leukemia (ALL) cases and 120 healthy children in southeast Iran. In addition, mRNA expression levels were assessed in 30 new cases of ALL and 32 controls. Our ndings indicated that promoter methylation of TET2 signi cantly increases the risk of ALL (OR=2.60, 95% CI=1.31-5.12, p=0.0060) in comparison with absent methylation. Furthermore, the TET2 gene was signi cantly downregulated in childhood ALL compared to healthy children (p=0.0235). The results revealed that hypermethylation and downregulation of TET2 gene may play a role in predisposition to childhood ALL. Further studies with larger sample sizes and different ethnicities are needed to con rm our ndings.
DNA methylation is an important epigenetic mechanism affecting genome structure, gene regulation, and the silencing of transposable elements. Cell- and tissue-specific methylation patterns are critical for differentiation and development in eukaryotes. Dynamic spatiotemporal methylation data in these cells or tissues is, therefore, of great interest. However, the construction of bisulfite sequencing libraries can be challenging if the starting material is limited or the genome size is small, such as in Arabidopsis. Here, we describe detailed methods for the purification of Arabidopsis embryos at all stages, and the construction of comprehensive bisulfite libraries from small quantities of input. We constructed bisulfite libraries by releasing embryos from intact seeds, using a different approach for each developmental stage, and manually picking single-embryo with microcapillaries. From these libraries, reliable Arabidopsis methylome data were collected allowing, on average, 11-fold coverage of the genome using as few as five globular, heart, and torpedo embryos as raw input material without the need for DNA purification step. On the other hand, purified DNA from as few as eight bending torpedo embryos or a single mature embryo is sufficient for library construction when RNase A is treated before DNA extraction. This method can be broadly applied to cells from different tissues or cells from other model organisms. Methylome construction can be achieved using a minimal amount of input material using our method; thereby, it has the potential to increase our understanding of dynamic spatiotemporal methylation patterns in model organisms.
Oh, Jung-Min;Kim, Young-Eun;Hong, Beom-Ju;Bok, Seoyeon;Jeon, Seong-Uk;Lee, Chan-Ju;Park, Dong-Young;Kim, Il Han;Kim, Hak Jae;Ahn, G-One
Journal of Radiation Protection and Research
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v.43
no.2
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pp.66-74
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2018
Background: Tumor response to anticancer therapies can much be influenced by microenvironmental factors. In this study, we determined the effect of these microenvironmental factors on DNA methylation using A549 human lung adenocarcinoma cell line. Materials and Methods: We subjected A549 cells to various conditions mimicking tumor microenvironment including hypoxia, acidosis (sodium lactate), oxidative stress ($H_2O_2$), bystander effect (supernatant from doxorubicin (Dox)-treated or irradiated cells), and immune cell infiltration (supernatant from THP-1 or Jurkat T cells). Genomic DNA was isolated from these cells and analyzed for DNA methylation. Clonogenic cell survival, gene expression, and metabolism were analyzed in cells treated with some of these conditions. Results and Discussion: We found that DNA methylation level was significantly decreased in A549 cells treated with conditioned media from Dox-treated cells or Jurkat T cells, or sodium lactate, indicating an active transcription. To determine whether the decreased DNA methylation affects radiation sensitivity, we exposed cells to these conditions followed by 6 Gy irradiation and found that cell survival was significantly increased by sodium lactate while it was decreased by conditioned media from Dox-treated cells. We further observed that cells treated with conditioned media from Dox-treated cells exhibited significant changes in expression of genes including BAX and FAS (involved in apoptosis), NADPH dehydrogenase (mitochondria), EGFR (cellular survival) and RAD51 (DNA damage repair) while sodium lactate increased cellular metabolism rather than changing the gene expression. Conclusion: Our results suggest that various tumor microenvironmental factors can differentially influence DNA methylation and hence radiosensitivity and gene expression in A549 cancer cells.
In order to evaluate the suppressive effects of galangin on the DNA damage induced by N-methyl-N-nitrosourea(MNU), in vitro sister chromatid exchange(SCE) test using Chinese Hamster ovary(CHO) cells was performed. Also the determinations of [$^{3}$H] MNU-induced total DNA binding and methylated DNA were performed to find out the mechanism of action by galangin. MNU-induced SCEs were significantly decreased by simultaneous and pretreatment of galangin when S-9 mix was added only. In post-treatment, however, the MNU-induced SCEs were not decreased when S-9 mix was added or not. [$^{3}$H] MNU-induced total DNA binding was significantly inhibited by the treatment of galangin in calf thymus DNA and CHO cells. HPLC analysis of DNA hydrolysates shows that galangin caused a dose-dependant decrease in calf thymus DNA, but not significant decrease in CHO cells. These results suggest that the inhibition of galangin on the MNU-induced SCEs is due to the decrease of DNA binding and methylation with MNU. Therefore, galangin may be useful as a chemopreventive agent of alkylating agents.
Aberrant DNA methylation, as an epigenetic marker of cancer, influences tumor development and progression. We downloaded publicly available DNA methylation and gene expression datasets of matched cancer and normal pairs from the Cancer Genome Atlas Data Portal and performed a systematic computational analysis. This study has three aims to screen genes that show hypermethylation and downregulated patterns in colorectal cancers, to identify differentially methylated regions in one of these genes, SFRP1, and to test whether the SFRP genes affect survival or not. Our results show that 31 hypermethylated genes had a negative correlation with gene expression. Among them, SFRP1 had a differentially methylated pattern at each methylation site. We also show that SFRP1 may be a potential biomarker for colorectal cancer survival.
DNA methylation is involved in tissue-specific gene control and essential for normal embryo development Octamer-binding transcription factor 4 (Oct-4) is one of the most important transcription factors for early differentiation. This study was performed whether the bovine Oct-4 is tissue specific or developmental dependent epigenetic mark, we investigated transcripts and the methylation status of CpGs of 5'-promoter region of Oct-4 in bovine preimplantation embryos. Oct-4 transcripts were highly detected in morula and blastocyst, while they were present low levels in sperm and 2- to 8-cell stage embryos. These results suggest that de novo expression of Oct-4 initiates at morula stage of embryogenesis. Here we determined that there is a tissue-dependent differentially methylated region (T-DMR) in the 5'-promoter region of Oct-4. The methylation status of the Oct-4 T-DMR was distinctively different in the oocyte from that in the sperm and adult somatic tissues and changed from zygote to blastocyst stage, suggesting that active methylation and demethylation occur during preimplantation development. Based on these results, the 5'-promoter region of Oct-4 gene is target for DNA methylation and the methylation status changes variously during embryonic development in bovine.
DNA methyltransferase 1 (Dnmt1) gene contains three different isoform transcripts, Dnmt1s, Dnmt1o, and Dnmt1p, are produced by alternative usage of multiple first exons. Dnmt1o is specific to oocytes and preimplantation embryos, whereas Dnmt1s is expressed in somatic cells. Here we determined that porcine Dnmt1o gene had differentially methylated regions (DMRs) in 5'-flanking region, while those were not found in the Dnmt1s promoter region. The methylation patterns of the porcine Dnmt1o/Dnmt1s DMRs were investigated using bisulfite sequencing and pyrosequencing analysis through all preimplantation stages from one cell to blastocyst stage in in vivo or somatic cell nuclear transfer (SCNT). The Dnmt1o DMRs contained 8 CpG sites, which located in -640 bp to -30 bp upstream region from transcription start site of the Dnmt1o gene. The methylation status of 5 CpGs within the Dnmt1o DMRs were distinctively different at each stage from one-cell to blastocyst stage in the $in$$vivo$ or SCNT, respectively. 55.62% methylation degree of the Dnmt1o DMRs in the $in$$vivo$ was increased up to 84.38% in the SCNT embryo, moreover, $de$$novo$ methylation and demethylation occurred during development of porcine embryos from the one-cell stage to the blastocyst stage. However, the DNA methylation states at CpG sites in the Dnmt1s promoter regions were hypomethylated, and dramatically not changed through one-cell to blastocyst stage in the $in$$vivo$ or SCNT embryos. In the present study, we demonstrated that the DMRs in the promoter region of the porcine Dnmt1o was well conserved, contributing to establishment and maintenance of genome-wide patterns of DNA methylation in early embryonic development.
Background: Secreted frizzled-related protein (SFRP) genes, new tumor suppressor genes, are negative regulators of the Wnt pathway whose alteration is associated with various tumors. In ovarian cancer, SFRPs genes promoter methylation can lead to gene inactivation. This study investigated mechanisms of SFRP and adenomatous polyposis coli (APC) genes silencing in ovarian cancer infected with high risk human papillomavirus. Materials and Methods: DNA was extracted from 200 formalin-fixed paraffin-embedded ovarian cancer and their normal adjacent tissues (NAT) and DNA methylation was detected by methylation specific PCR (MSP). High risk human papillomavirus (HPV) was detected by nested PCR with consensus primers to amplify a broad spectrum of HPV genotypes. Results: The percentages of SFRP and APC genes with methylation were significantly higher in ovarian cancer tissues infected with high risk HPV compared to NAT. The methylated studied genes were associated with suppression in their gene expression. Conclusion: This finding highlights the possible role of the high risk HPV virus in ovarian carcinogenesis or in facilitating cancer progression by suppression of SFRP and APC genes via DNA methylation.
Epigenetic processes in the development of skeletal muscle have been appreciated for over a decade. DNA methylation is a major epigenetic modification important for regulating gene expression and suppressing spurious transcription. Up to now, the importance of epigenetic marks in the regulation of Pax7 and myogenic regulatory factors (MRFs) expression is far less explored. In the present study, semi-quantitative the real-time polymerase chain reaction (RT-PCR) analyses showed MyoD and Myf5 were expressed in activated and quiescent C2C12 cells. MyoG was expressed in a later stage of myogenesis. Pax7 was weakly expressed in differentiated C2C12 cells. To further understand the regulation of expression of these genes, the DNA methylation status of Pax7, MyoD, and Myf5 was determined by bisulfite sequencing PCR. During the C2C12 myoblasts fusion process, the changes of promoter and exon 1 methylation of Pax7, MyoD, and Myf5 genes were observed. In addition, an inverse relationship of low methylation and high expression was found. These results suggest that DNA methylation may be an important mechanism regulating Pax7 and MRFs transcription in cell myogenic differentiation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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