There is evidence that noradrenaline enhances spontaneous contractions dose-dependently in guinea-pig antral circular muscle. To investigate the mechanism of this excitatory action, slow waves and membrane currents were recorded using conventional microelectrode techniques in muscle strips and the whole cell patch clamp technique in isolated gastric myocytes. On recording slow waves, noradrenaline $(10^{-5}\;M)$ induced the hyperpolarization of the membrane potential, although the shape of the slow waves became tall and steep. Also, spike potentiaIs occurred at the peaks of slow waves. These changes were completely reversed by administration of phentolamine $(10^{-5}\;M),\;an\;{\alpha}-adrenoceptor$ blocker. Noradrenaline-induced hyperpolarization was blocked by apamin $(10^{-7}\;M)$, a blocker of a class of $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+$ channels. To investigate the mechanisms for these effects, we performed whole cell patch clamp experiments. Norndrenaline increased voltage-dependent $Ca^{2+}$ currents in the whole range of test potentials. Noradrenaline also increased $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+$\;currents, and this effects was abolished by apamin. These results suggest that the increase in amplitude and the generation of spike potentials on slow waves was caused by the activation of voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel via adrenoceptors, and hyperpolarization of the membrane potential was mediated by activation of apamin-sensitive $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+\;channels$.
This study was carried out to elucidate the excitatory mechanisms of Substance P in the antral circular muscle, using isometric contraction recording, conventional microelectrode method and whole-cell patch clamp technique. Substance P produced tonic and phasic contractions in a dose-dependent manner and depolarized membrane potential with increased amplitude of slow waves in muscle strips. Voltage-dependent $Ca^{2+}$ currents were increased by the application of Substance P from a holding potential of -60mV to 50mV in 10mV steps and this effect was blocked by the addition of an antagonist. Also Substance P increased transient and spontaneous oscillatory $K^+$ outward currents. The enhanced outward currents were abolished by apamin in dispersed single cells. These results suggest that the depolarization of membrane potential by Substance P activates voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels, which represents an excitatory response in the antral circular muscle and led to an increase in $Ca^{2+}\;activated\;K^+\;currents$.
To investigate the possible involvement of outward potassium ($K^+$) currents in nitric oxide-induced relaxation in intestinal smooth muscle, we used whole-cell patch clamp technique in freshly dispersed guinea-pig ileum longitudinal smooth muscle cells. When cells were held at -60 mV and depolarized from -40 mV to -50 mV in 10 mV increments, sustained outward $K^+$ currents were evoked. The outward $K^+$ currents were markedly increased by the addition of 10 ${\mu}M$ sodium nitroprusside (SNP). 10 ${\mu}M$ S-nitroso-N-acetylpenicillamine (SNAP) and 1 mM 8-Bromo-cyclic GMP (8-Br-cGMP) also showed a similar effect to that of SNP. 1 mM tetraethylammonium (TEA) significantly reduced depolarization-activated outward $K^+$ currents. SNP-enhanced outward $K^+$ currents were blocked by the application of TEA. High EGTA containing pipette solution (10 mM) reduced the control currents and also inhibited the SNP-enhanced outward $K^+$ currents. 5 mM 4-aminopyridine (4-AP) significantly reduced the control currents but showed no effect on SNP-enhanced outward $K^+$ currents. 0.3 ${\mu}M$ apamin and 10 ${\mu}M$ glibenclamide showed no effect on SNP-enhanced outward $K^+$ currents. 10 ${\mu}M$ 1H-[1,2,4]oxadiazolo [4,3-a]quinoxaline-1-one (ODQ), a specific inhibitor of soluble guanylate cyclase, significantly blocked SNP-enhanced $K^+$ currents. We conclude that NO donors activate the $Ca^{2+}-activated$$K^+$ channels in guinea-pig ileal smooth muscle via activation of guanylate cyclase.
Kim, Yang-Mi;Han, Jae-Hee;Kim, Jong-Su;Hong, Seong-Geun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제4권5호
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pp.403-408
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2000
The outward currents elicited in hamster eggs by depolarizing pulses were studied. The currents appeared to comprise at least two components, a transient outward component $(I_{to})$ and a steady-state outward component $(I_{\infty}).\;I_{to}$ was transiently followed by the cessation of inward $Ca^{2+}$ current $(I_{Ca}),$ and its current-voltage (I-V) relation was a mirror image of that of $(I_{Ca}).$ Either blockade of $(I_{Ca})$ by $Co^{2+}$ or replacement of $Ca^{2+}$ with $Sr^{2+}$ abolished $I_{to}$ without change in $I_{\infty}.$ Intracellular EGTA (10 mM) inhibited $I_{to}$ but not $I_{\infty}.$ suggesting strongly that generation of $I_{to}$ requires intracellular $Ca^{2+}.$ Apamin (1 nM) abolished selectively $I_{to},$ indicatingthat $I_{to}$ is $Ca^{2+}-dependent\;K^+$ current. On the other hand, $I_{\infty}$ was $Ca^{2+}-independent.$ Both $I_{to}$ and $I_{\infty}$ were completely inhibited by internal $Cs^+$ and external TEA. The estimated reversal potential of $I_{to}$ was close to the theoretical $E_K.$ Taken together, both outward currents were carried by $K^+$ channels. From these results, $I_{to}$ is likely to be a current responsible for the hyperpolarizing responses seen in hamster eggs at fertilization.
Employing electrophysiological and cell proliferation assay techniques, we studied the effects of $Ca^{2+}$ -activated $K^+$ channel modulators on the proliferation of human dermal fibroblasts, which is important in wound healing. Macroscopic voltage-dependent outward $K^+$ currents were found at about -40 mV stepped from a holding potential of -70 mV. The amplitude of $K^+$ current was increased by NS1619, a specific large-conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ (BK) channel activator, but decreased by iberiotoxin (IBTX), a specific BK channel inhibitor. To investigate the presence of an intermediate-conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ (IK) channels, we pretreated the fibroblasts with low dose of TEA to block BK currents, and added 1-EBIO (an IK activator). 1-EBIO recovered the currents inhibited by TEA. When various $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel modulators were added into culture media for 1∼3 days, NS1619 or 1-EBIO inhibited the cell proliferation. On the other hand, IBTX, clotrimazole or apamin, a small conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel (SK) inhibitor, increased it. These results suggest that BK, IK, and SK channels might be involved in the proliferation of human dermal fibroblasts, which is inversely related to the channel activation.
이온 통로 및 이온 농도의 변화는 수정 현상을 포함한 다양한 세포 기능에 중요한 역할을 한다. 그러나 이러한 이온의 변화가 포유동물 배의 발달과정에 어떻게 관여하는지에 대해서는 알려진 바가 적다. 본 연구에서는 생쥐난자가 수정 이후 배 발달 과정을 거치는 동안 나타나는 칼슘과 포타슘 이온의 변화를 전기생리학적 실험 기법과 공초점 현미경을 이용하여 조사하였다. 수정 시에 나타나는 일시적인 세포내 칼슘 농도 변화는 활성 전류(수정 전류)와 함께 동반되었다. 그러나 수정과 같은 극적인 현상이나 자극이 없는 시기에는 세포내 칼슘 농도가 배 발달 시기와 상관없이 일정한 수준으로 유지되었다. 이것은 세포내외의 칼슘 농도의 보상현상으로도 설명할 수 있을 것이다. 배 발달이 진행됨에 따라 난관액의 포타슘 농도는 계속 증가하여 8세포기 배에서는 난자보다 26% 증가하였다. 상실배, 포배기에서는 포타슘 농도가 감소하였다. 배 발달이 진행됨에 따라 주로 포타슘 이온에 의해 조절되는 막 전압은 탈분극되고, 칼슘 이온의 세포 안으로의 유입은 점점 감소하였다. 생쥐 난자에 5 mM의 칼슘을 처리하였을 때 막 전압은 일시적인 과분극 현상을 보이다가 회복되었다. 칼슘 유입에 따른 막 전압 변화에 관여하는 포타슘 통로를 확인하기 위하여 포타슘 통로 차단제를 전 처리한 후 칼슘을 처리한 결과, 칼슘만을 단독으로 처리한 결과와 유의한 차이를 보이지 않았다. 막 전압의 과분극 현상은 잘 알려진 포타슘 통로 차단제인 TEA에 억제되지 않았다. 그리고 small conductance $Ca^{2+}$-activated 포타슘 통로 차단제 인 apamin에 의해서도 억제되지 않았다. 따라서 생쥐 난자에서 과분극을 유발시키는 포타슘 통로는 TEA와 apamin에 억제되지 않는 다른 포타슘 통로로 생각된다. 이상의 결과로부터 배 발달 동안 변화되는 칼슘과 포타슘 이온은 수정 및 초기 배 발달에 중요한 인자로써 작용할 것으로 생각되며, two-pore domain 포타슘 통로가 난자의 막 전압 조절에 관여할 가능성을 제시한다.
Kim, Chul-Soo;Jun, Jae-Yeoul;Kim, Sung-Joon;So, In-Suk;Kim, Ki-Whan
The Korean Journal of Physiology
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제29권2호
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pp.233-241
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1995
The nonapeptide bradykinin has been shown to exhibit an array of biological activities including relaxation/contraction of various smooth muscles. In order to investigate the effects of bradykinin on the contractility and the electrical activity of antral circular muscle of guinea-pig stomach, the isometric contraction and membrane potential were recorded. Also, using standard patch clamp technique, the $Ca^{2+}-activated$ K currents were recorded to observe the change in cytosolic $Ca^{2+}$ concentration. $0.4 {\mu}M$ bradykinin induced a triphasic contractile response (transient contraction-transient relaxation-sustained contraction) and this response was unaffected by pretreatment with neural blockers (tetrodotoxin, atropine and guanethidine) or with apamin. Bradykinin induced hyperpolarization of resting membrane potential and enhanced the amplitude of slow waves and spike potentials. The enhancement of spike potentials was blocked by neural blockers. Both the bradykinin-induced contractions and changes in membrane potential were reversed by the selective $B_2$-receptor antagonist $(N{\alpha}-adamantaneacetyl-_{D}-Arg-[Hyp, Thy,_{D}-Phe]-bradykinin)$. In whole-cell patch clamp experiment, we held the membrane potential at -20 mV and spontaneous and transient changes of Ca-activated K currents were recorded. Bradykinin induced a large transient outward current, consistent with a calcium-releasing action of bradykinin front the intracellular calcium pool, because such change was blocked by pretreatment with caffeine. Bradykinin-induced contraction was also blocked by pretreatment with caffeine. From these results, it is suggested that bradykinin induces a calciumrelease and contraction through the $B_{2}$ receptor of guinea-pig gastric smooth muscle. Enhancement of slow wave activity is an indirect action of bradykinin through enteric nerve cells embedded in muscle strip.
In this study, we studied whether hydrogen sulfide ($H_2S$) has an effect on the pacemaker activity of interstitial cells of Cajal (ICC), in the small intestine of mice. The actions of $H_2S$ on pacemaker activity were investigated using whole-cell patch-clamp technique, intracellular $Ca^{2+}$ analysis at $30^{\circ}C$ and RT-PCR in cultured mouse intestinal ICC. Exogenously applied sodium hydrogen sulfide (NaHS), a donor of hydrogen sulfide, caused a slight tonic inward current on pacemaker activity in ICC at low concentrations (50 and $100{\mu}m$), but at high concentration ($500{\mu}m$ and 1 mM) it seemed to cause light tonic inward currents and then inhibited pacemaker amplitude and pacemaker frequency, and also an increase in the resting currents in the outward direction. Glibenclamide or other potassium channel blockers (TEA, $BaCl_2$, apamin or 4-aminopydirine) did not have an effect on NaHS-induced action in ICC. The exogenous application of carbonilcyanide p-triflouromethoxyphenylhydrazone (FCCP) and thapsigargin also inhibited the pacemaker activity of ICC as NaHS. Also, we found NaHS inhibited the spontaneous intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) oscillations in cultured ICC. In doing an RT-PCR experiment, we found that ICC enriched population lacked mRNA for both CSE and CBS, but was prominently detected in unsorted muscle. In conclusion, $H_2S$ inhibited the pacemaker activity of ICC by modulating intracellular $Ca^{2+}$. These results can serve as evidence of the physiological action of $H_2S$ as acting on the ICC in gastrointestinal (GI) motility.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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