As an alternative method to produce low cost reagents for immunodiagnosis and protect the plants from viral disease, a gene encoding a single chain variable fragment(scFv) recombinant antibody targeted to the coat protein of cucumber mosaic virus (CMV) was expressed in Nacotiana tabacum. The source of the scFv recombinant antibody gene was from spleen tissue of an immunized mouse. The gene was initially cloned into the pCANTAB5E phagemid and expressed in E. coli. In the following study, the antibody gene was subcloned into the plant expression vector, pCAMBIA-1301 and introduced into tobacco leaf tissue via Agrobacterium tumefacients mediated transformation. After transformation, 56 out of 58 plants were shown to carry the desired anti-CMV scFv gene by PCR analysis. Overall, only 12.5% of the 56 putative transgenic plants were found to express the antibody to a detectable level.
Chung, Bong Nam;Kwon, Sun Jung;Choi, Gug Seoun;Yoon, Ju Yeon;Cho, In Sook
Research in Plant Disease
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v.26
no.2
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pp.103-108
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2020
Evaluations were made for the effects of cheese whey treatment on infection of pepper plants by cucumber mosaic virus-Vch (CMV-Vch) and pepper mottle virus-Kr (PepMoV-Kr). In a greenhouse, pepper plants sprayed with whey, prior to inoculation by CMV-Vch using aphids, showed a viral infection rate significantly lower (6.6%) than for the control (23.3%). In an open field experiment, in which CMV infection relied on natural transmission by aphids, pepper plants were sprayed with undiluted whey once a week, starting on the transplanting date (May 2) to the end of June. On June 5, these whey-sprayed plants showed a CMV infection rate reduced by 18.9% and 16.7%, compared to untreated and pesticide-treated plants, respectively. In the greenhouse, pepper plants inoculated with PepMoV-Kr mixed with whey showed a viral infection rate decreased by 60% compared to the control. The accumulated amount of PepMoV-Kr coat protein was less than that for the virus-only control at 6 days post inoculation (dpi), but increased up to a similar level as the control at 9 dpi. This study showed that cheese whey is effective in reducing infection of both CMV and PepMoV in pepper plants.
The coat protein (CP) gene was cloned from RNA genome of the Cucumber Mosaic Virus strain ABI (CMV-ABI) isolated in Korea. The comparisons of the nucleotide sequence of the cloned CP gene and its deduced amino acid sequences with other CP genes revealed that the CMV-ABI belongs to subgroup I (type I), CMV-ABI developed the typical mosaic symptom in infected plants. Tobacco plants (Samsun and NC82) were transformed by leaf-disc transformation via Agrobacterium, temefaciens LB4404 harboring pVCP, witch CMV-ABI CP gene was inserted into the pBI121, and a number of mature transgenic tobacco plants were developed. Southern and PCR analysis of genomic DNA from the transgenic plants showed that the CP gene was integrated into the genomes of the most of the transgenic plant. Result of the segregation patterns of resistance in T1 seedlings of the plants to kanamycin showed that the transgenic plants containing l,2 and 3 copies of CP gene were50%, 39% and 11% of the total transgenic plants, respectively.
Cucumber mosaic virus (CMV) is one of the most destructive viruses in chilli pepper. An isolate of CMV was obtained from the chilli pepper cv. Chungyang showing top necrosis symptom in 2013 and designated as CMV-GTN. CMV-GTN was compared with the well-characterized isolate, CMV-Ca-P1, by investigating their amino acid sequences of the coat protein (CP) and biological reactions in several host plants. The CP of CMV-Ca-P1 composed of 217 amino acids but that of CMV-GTN composed of 218 amino acids by including additional valine in the $57^{th}$ amino acid position. Amino acid sequence similarity of the CP gene among CMV-GTN and other CMV isolates recorded in the GeneBank database ranged from 96% to 99%. CMV-GTN was selected as a representative isolate to screen the resistance pepper cultivars to CMV because it was highly pathogenic to tomatoes and peppers upon biological assays. The virulence of CMV-GTN was tested on 135 pepper cultivars which has been bred in Korea and compared with that of CMV-Ca-P1. Only the cv. Premium was resistant and three cvs. Hot star, Kaiser, and Good choice were moderately resistant to CMV-GTN, whereas two cvs. Baerotta and Kaiser were resistant to CMV-Ca-P1.
For the molecular detection of Sweet potaio feathery mottle virus (SPFMV) from diseased sweet potato plants, reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) was performed with the use of a set of virus-specific primers to amplify an 816 bp product. The viral coat protein gene was selected for the design of the primers. No PCR product was amplified when Turnip mosaic virus, Potato vims Y or Cucumber mosaic virus were used as template in RT-PCR with the SPFMV-specific primers. The lowest concentration of template viral RNA required for detection was 10 fg. The vim was rapidly detected from total nucleic acids of leaves and roots from the virus-infected sweet potato plants as well as from the purified viral RNA by the RT-PCR. Twenty-four sweet potato samples were selected and analyzed by RT-PCR and restriction fragment length polymorphism (RFLP). RFLP analysis of the PCR products showed three restriction patterns, which resulted in some point mutations suggesting the existence of quasi-species for the vims in the infected sweet potato plants.
An isolate of Cucumber mosaic cucumovirus(CMV) was isolated from Hydrangea macrophylla for. otaksa(Sieb. et Zucc. ) Wils. showing mosaic symptoms, and designated as Hm-CMV. Hm-CMV was characterized by the tests of host range, physical properties, serological properties, RNA and coat protein compositions, and reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis. Twelve species in 4 families were used in the host range test of Hm-CMV and could be differentiated from Y-CMV used as a control CMV by the ringspot and line pattern on inoculated leaves of several tobacco plants. Thevirus produced local lesions on inoculated leaves of Chenopodium amarticolor, C. quinoa and Vigna unguiculata. The physical properties of the virus were as follows; thermal inactivation point(TIP) was 60$\^{C}$, dilution end point (DEP) was 10$\^$-3/, and longevity in vitro (LIP) was 3∼4 days. Hm-CMV was serologically identical to Y-CMV. SDS-polyaciylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE) showed one major protein band of about 28 kDa. In RNA or dsRNA analysis, Hm-CMV consisted of four RNA or dsRNA species, but satellite RNA was not detected. In RT-PCR using CMV-common primer and CMV subgroup I-specific primer, bothe amplified expected size of about 490 bp and 200 bp DNA fragments from Hm-CMV, respectively. Restriction enzyme analysis of the 490 bp RT-PCR products using EcoR I and Msp I showed that Hm-CMV belonged to CMV subgroup I. However, Hm-CMV could be differentiated from other CMV subgroup I isolates by RNA fingerprinting by arbitrarily primed polymerase chain reaction (RAP-PCR).
Kim, Jae-Hyun;Kim, Jeong-Soo;Park, Gug-Seoun;Soo- Young Chae;Lee, Sin-Ho;Park, Jang-Kyung
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.140.1-140
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2003
An Isometric virus was isolated from Paprika (Capsicum annuum var. glossum) showing necrosis spot and malformation on the fruit and the leaves, respectively, at yecheon in Korea. The virus could infect locally on Chenopodium amaranticolr, C. quinoa, Petunia x hybrida and Nicotiana glutinosa, but could not infect on Gomphrena globosa and Physalis floridana. The virus could infect systemically on red pepper and Lycopersicon esculentum. Datura stramonium, N. cleuarandii, N. rustim and N. tabacum cvs. were produced necrosis or necrotic ring spot lesions on the inoculated leaves and mosaic, vein necrosis or lethal death on the upper leaves. The virus was not related serologically to cucumber mosaic virus (CMV). In RT-PCR assay, it could not detected with specific primers of CMV and BBWV-II. The virions contain one molecule of genomic RNA, Which was approximately 3.8Kb and the coat protein (CP) of the purified virion migrated as a single band with molecular wight of about 29KDa in SDS-PAGE.
Park, Chung Youl;Park, Jungan;Lee, Boo-Ja;Bak, Sangmin;Lee, Hong-Kyu;Kim, Jeong-Sun;Yoon, Youngnam;Suh, Sang Jae;Lee, Su-Heon
Research in Plant Disease
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v.22
no.1
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pp.59-63
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2016
A new poty-like virus was isolated from plants of winter daphne (Daphne odora) that showed virus-like symptoms on leaves, from four regions of Korea during 2014. Filamentous-shaped particles were observed by transmission electron microscopy of preparations extracted from symptomatic leaves and examined by the direct negative stain method. RT-PCR assay showed that three samples were positive for both Cucumber mosaic virus and potyvirus, and only one sample was positive for potyvirus only. A BLAST comparison to partial sequences from helper-component proteinase, cylindrical inclusion and coat protein genes detected the highest nucleotide identity of 76%, 72%, and 72% with Daphne mosaic virus, respectively, levels below the potyvirus species discrimination threshold. The new potyvirus was isolated using indicator plants (Chenopodium amaranticolor), in which local lesions were produced. In this study, we identified a novel potyvirus from winter daphne, which we have named Daphne mottle virus (DapMoV).
A simple and reliable method to diagnose cucumber green mottle mosaic virus of watermelon in Korea (CGMMV-WK) was determined by RT-PCR, and coat protein gene for CGMMV-WK was cloned. Comparing to a method reported by Lee et al. (1996), the method developed here showed a better RT-PCR reaction. RT-PCR was possible by one step in the PCR reaction mixture that contains 20 pmol of primer, reverse transcriptase (30 unit), RNasin (5 unit) using the crude RNA solution. RT-PCR condition for specifically diagnosing CGMMV-WK was that cDNA was synthesized at 42$^{\circ}C$ for 45 min followed by pre-denaturation at 95$^{\circ}C$ for 2 min, and then PCR reaction was carried out with a programmed condition that consisted of 36 sequential cycles at 96$^{\circ}C$ for 30 sec, 6$0^{\circ}C$ for 30 sec, and 72$^{\circ}C$ for 1 min. A gene encoding the coat protein of CGMMV-WK was cloned and characterized. Nucleotide sequence of coat protein gene of CGMMV-WK shared 98.77% and 99.38% of sequence identity with those of CGMMV-W and CGMMV-SH, respecitvely, however, all of amino acid sequences were same.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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