Trichoderma asperellum SKT-1 is a microbial pesticide that is very effective against various diseases. Our study was undertaken to evaluate T. asperellum SKT-1 for induction of resistance against yellow strain of Cucumber mosaic virus (CMV-Y) in Arabidopsis plants. Disease severity was rated at 2 weeks post inoculation (WPI). CMV titre in Arabidopsis leaves was determined by indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) at 2 WPI. Our results demonstrated that among all Arabidopsis plants treated with barley grain inoculum (BGI) of SKT-1 NahG and npr1 plants showed no significant reduction in disease severity and CMV titre as compared with control plants. In contrast, disease severity and CMV titre were significantly reduced in all Arabidopsis plants treated with culture filtrate (CF) of SKT-1 as compared with control plants. RT-PCR results showed increased expression levels of SA-inducible genes, but not JA/ET-inducible genes, in leaves of BGI treated plants. Moreover, expression levels of SA- and JA/ET-inducible genes were increased in leaves of CF treated plants. In conclusion, BGI treatment induced systemic resistance against CMV through SA signaling cascade in Arabidopsis plants. While, treatment with CF of SKT-1 mediated the expression of a majority of the various pathogen related genes, which led to the increased defense mechanism against CMV infection.
During a field survey in 2014, a Rorippa palustris plant showing virus-like symptom was collected from a pepper field in Dangjin in Korea. The collected sample was subjected to examine infection with pepper-infecting viruses. Molecular diagnosis assay showed that the collected R. palustris sample was co-infected with Pepper mild mottle virus (PMMoV) and Cucumber mosaic virus (CMV). This is the first identification of PMMoV from R. palustris and the first report of CMV infection of R. palustris in Korea. To examine phylogenetic positions of the identified PMMoV and CMV isolates, their complete genome sequences of were determined and compared with those of previously reported isolates of the cognate viruses. Phylogenetic analyses revealed the isolates of PMMoV and CMV obtained from R. palustris are closely related to the pepper isolates of the cognate viruses. Our results suggest that R. palustris could act a weed reservoir of PMMoV and CMV.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.150.1-150
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2003
A single-step multiplex reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) assay was developed for the simultaneous detection of five cucurbit-infecting viruses: cucumber mosaic virus (CMV), watermelon mosaic virus 2 (WMV2), zucchini yellow mosaic virus (ZYMV), cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV), and kyuri green mottle mosaic virus (KGMMV). The multiplex RT-PCR provides a simple and rapid method for detecting various viruses in cucurbit plants, which will help diagnose many cucurbit plants at a time.
Capsicum annuum (CA) is grown outdoors across fields in Jeollabuk-do, South Korea. The weeds surrounding these fields were investigated regarding the infection of 11 viruses infecting CA during the year 2014-2018. In the reverse transcription polymerase chain reaction diagnosis, 546 out of 821 CA samples (66.5%) were infected by nine viruses, and 190 out of 918 weed samples (20.7%) were infected by eight viruses. Correlation analysis of the mutual influence of the viruses infecting CA and weeds during these 5 years showed that five viruses had significant positive correlations with the infection in both CA and weeds. Over the study period, the weeds infected by cucumber mosaic virus (CMV) in the previous year were positively correlated with the incidence of CMV infection in CA in the current year, although the correlation was lower for tomato spotted wilt virus (TSWV) compared to CMV. The CMV infection percent was 14.0% in summer annuals, 11.4% in perennials, and 7.8% in winter annuals. However, considering the overwintering period without CA, the infection percent was 5.2% higher in winter annuals and perennials than that in summer annuals, indicating that winter annual and perennial weeds served as the main habitats for insect vectors. The TSWV infection percent in weeds was 10.4% in summer annuals, 6.4% in winter annuals, and 6.2% in perennials. The weeds surrounding CA fields, acting as the intermediate hosts, were found to be the potent sources of infection, influencing the spread and diversity of CA-infecting viruses. The results of this study can contribute to prevent viral infection in agricultural fields.
As an alternative method to produce low cost reagents for immunodiagnosis and protect the plants from viral disease, a gene encoding a single chain variable fragment(scFv) recombinant antibody targeted to the coat protein of cucumber mosaic virus (CMV) was expressed in Nacotiana tabacum. The source of the scFv recombinant antibody gene was from spleen tissue of an immunized mouse. The gene was initially cloned into the pCANTAB5E phagemid and expressed in E. coli. In the following study, the antibody gene was subcloned into the plant expression vector, pCAMBIA-1301 and introduced into tobacco leaf tissue via Agrobacterium tumefacients mediated transformation. After transformation, 56 out of 58 plants were shown to carry the desired anti-CMV scFv gene by PCR analysis. Overall, only 12.5% of the 56 putative transgenic plants were found to express the antibody to a detectable level.
The cDNA of CMV-As satellite RNA was introduced into tobacco plants (Nicotiana tabacum cv. Samsun NN) using a binary Ti plasmid vector system of Agrobacterium tumefaciens. The cDNA of satellite RNA introduced into tobacco plants was detected by polymerase chain reaction (PCR) and molecular hybridization analyses. Symptom development was distinctly suppressed in the transgenic tobacco plants when inoculated with CMV-Co. CMV concentration in the transgenic tobacco plants was decreased to 1/40 of non-transgenic tobacco plants. The kanamycin resistance gene of the transgenic tobacco plants was also detected in the progeny.
Cucumber mosaic virus(CMV) was occurred on red pepper showing vein chlorosis or vein necrosis with the incidence rate of 52% from 62 specimens collected in natural fields. Among 32 samples infected with CMV, the specimens of 22 red pepper leaves showing vein chlorosis were infected singly with CMV-VCH. CMV-VCH induced vein chlorosis on the inoculated leaves, and vein banding and vein necrosis on the upper leaves of Nicotiana glutinosa, and then killed after showing bud necrosis. The typical symptoms of vein banding, malformation and blister were produced on the upper leaves of Nicotiana benthamiana and N. tabacum 'Ky-57' without symptoms on the inoculated leaves. The commercial cultivars of 'Bugang', 'Manitta' and 'Gwariput' were shown the typical symptom of vein chlorosis by the mechanical inoculation of CMV-VCH. CMV-VCH was detected specifically by RT-PCR. Virus particles of CMV-VCH were isometric shape having 30 nm diameter. Ultraviolet absorption of purified CMV-VCH was maximum at 260 nm and minimum at 242 nm. The ratio of A260/A280 was 1.71. CMV-VCH had the single nucleo-protein having the molecular weight of 24.5 kDa.
Recently, we reported a satellite RNA (Paf-satRNA) which is encapsidated in a pepper isolate of Cucumber mosaic virus (CMV-Paf) regulated symptom attenuation of the helper virus. To characterize mild symptom domain of Paf-satRNA, a series of chimeric cDNAs of satRNAs were created by using full-length cDNA clones of Paf-satRNA and a Pep-satRNA, chlorosis-inducing satRNA in pepper plants, and analyzed for determinants of symptom attenuation. When compared the nucleotide sequences, the 3' and 5' terminal sequences of the two wild-type (wt) satRNAs contained relatively conserved sequences which are the typical to CMV satRNA. Ten bases insertions were found in PepY-satRNA, and two variable regions, 81st to 113th and 183rd to 265th from the 5'-end, were located in the middle parts of the satRNAs. To delineate the attenuated symptom-related domain for the Paf-satRNA, in vitro transcripts RNAs transcribed from the wt cDNAs and constructed chimeric cDNAs were combined with genomic RNAs, RNA1, RNA2 and RNA3, of CMV-Fny and inoculated onto Nicotiana benthamiana plants. These transcripts were fully infectious onto the N. benthamiana and infectivity was confirmed by the RT-PCR. Chimeric Paf(H/N)-satRNA and PepY(N/A)-satRNA as well as Paf-satRNA induced very mild mosaic or symptomless infection on N. benthamiana. By contrast, typical mosaic symptom and stunting of infected plants were induced when PepY-satRNA, PepY(H/N)-satRNA and Paf(N/A)-satRNA were infected to N. benthamiana. Paf-satRNA coinfected with CMV-Fny RNAs induced very mild to sympomless on pepper plants whereas PepY-satRNA-infected pepper expressed typical chlorosis mosaic symptom. Two kinds of chimeric mutants, Paf(H/N)-satRNA and PepY(N/A)-satRNA, induced mild mosaic or symptomless infection onto pepper plants, while PepY(H/N)-satRNA and Paf(N/A)-satRNA showed typical chlorosis and mosaic symptom with stunting. This results suggest that mild symptom-related domain for the Paf-satRNA was located on HpaI-NarI region.
An antiviral producing bacterial strain was isolated from a ginseng rhizosphere in Kangwon province of Republic of Korea. In order to identify the bacterial strain, microbiological, physiological and biochemical tests were performed, along with RAPD, 16S rRNA, 16S-23S rRNA ITS (intergenic spacer region) and DNA-DNA hybridization analyses. The bacterium was found to be a strain of Pseudomonas fluorescens, which was designated as Gpf01. The strain was grown in Muller-Hinton (MH) broth, and the culture supernatant obtained was filtered through a $0.45{\mu}l$ filter. It was further boiled at $100^{\circ}C$ and tested in two experiments for its ability to control a yellow strain of Cucumber mosaic virus (CMV-Y). In the first experiment, boiled culture filtrate (RCF) was treated on one half of the leaves of Chenopodium amaranticolor followed by CMV- Y inoculation on both halves. In the second experiment, BCF was treated on the lower leaves of Nicotiana tobacum var. Xanthi-nc, with the CMV-Y mechanically inoculated onto the upper untreated leaves. In the first experiment, BCF treatment was able to considerably reduce the number of viral lesion, and in the second experiment, plants treated with BCF showed no visible viral symptoms compared to the Muller-Hinton (MH) media treated controls 15 days post inoculation (dpi), and remained symptomless throughout the study period. Thus, Gpf01, identified as P. fluorescence, was able to produce an antiviral component in the culture filtrate, which was found to be heat stable, non-phytotoxic and effective in local as well as systemic hosts of CMV.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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