In order to develop enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for fumonisins, production of specific antibodies, establishment of ELISA conditions, and quantitation of the toxin from spiked corns by ELISA were performed. Fumonisin $B_1(FB_1)$ conjugated to cholera toxin (CT) with or without Freund's adjuvant was subcutaneously injected into 2 groups of rabbits. When the titer of the antisera produced by each rabbit was tested, higher titer was observed in case of the immunization with the adjuvant. By use of the antiserum showing the highest titer (1:16,000) and its purified antibodies, competitive indirect and direct ELISA's (ciELISA and cdELISA) were established, respectively. When the cross-reactivity of the antibody against fumonisin analogs was investigated by the ciELISA, it was very low against $B_3$ (2%) but high against fumonisin $B_2$ (179%). The sensitivity of the ELISAs was also very high, because the detection limit for $FB_1$ was 0.03 ppb in ciELISA and 0.3 ppb in cdELISA. When the ELISA's were applied to the spiked corns after extraction with 75% methanol, the assay recovery of $FB_1$ was too unstable to assay. However, when cleanup by strong anion exchange (SAX) cartridge was introduced to remove interfering materials, the mean ELISA recovery of $FB_1$ from corns spiked to 3~10 ppm was found to be 34.0% and stable (mean of CV, 8.2%).
An enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) was developed for the detection of milk proteins in processed foods. The ${\alpha}_{s1}-casein({\alpha}_{s1}-CN)$, a heat stable major milk protein, was immunized into rabbits to produce specific antibodies. When competitive indirect ELISA(ciELISA) using $anti-{\alpha}_{s1}-CN$ antibodies was established, its detection limit was $0.1\;{\mu}g/mL$. The reactivities of the specific antibodies toward ${\alpha}_{s1}-CN$, skim milk, ${\beta}-CN$ and whey protein isolate(WPI) were 100, 37, 0.14 and 0.04%, respectively, as determined by ciELISA. However $anti-{\alpha}_{s1}-CN$ antibodies did not have any reactivity to other milk proteins such as ${\beta}-lactoglobulin,\;{\alpha}-lactalbumin$, bovine serum albumin, and isolated soy protein. When sandwich ELISA was established, its detection limit was $0.01\;{\mu}g/mL$ which was 10 times more sensitive than that of ciELISA. In the spike test which was performed by adding 1-10% of whole CN to market milk, mean assay recovery as determined by sandwich ELISA was 94.8%(CV, 8.2%). Food stuffs and dairy products were assayed by sandwich ELISA to show 29, 0.13, 0.25, and 6.9% of whole CN in skim milk powder, WPI, semi-solid yoghurt, and processed cheese, respectively.
A simple and rapid detection system for $aflatoxin\;M_1\;(AFM_1)$ in cow's milk by an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) was developed. Specific antibodies against $AFM_1$, conjugated to bovine serum albumin $(AFM_1-BSA)$ were raised in rabbits and purified. The cross-reactivities of the antibodies against aflatoxin analogs were less than 29.9%. When a competitive direct ELISA (cdELISA) for $AFM_1$, established by use of the antibodies was applied to the spike test of $AFM_1$ onto uncontaminated cow's milk, the assay recovery was unstable unless cow's milk was diluted to 40% (2:3) with phosphate buffered saline (PBS). In that condition of sample dilution, the mean ELISA recovery of $AFM_1$, from the cow's milk was 113% (coefficient of variation (CV) of each recovery percentage, 8.2%) in the range of $0.3{\sim}3.0\;ppb$. These results showed that the ELISA system could be a convenient tool to monitor the contamination of AFM1 more than 0.5 ppb in cow's milk (FDA allowance limit) easily.
In the present study, an in vitro ELISA system to assess the interaction between Src homology (SH)2 domains and phosphotyrosine that contain peptides was established using purified GST-conjugated SH2 proteins and synthetic biotinylated phosphotyrosine that contain oligopeptides. The SH2 domains bound the relevant phosphopeptides that were immobilized in the streptavidin-coated microtiter plate in a highly specific and dose-dependent manner. The epidermal growth factor receptor (EGFR)-, T antigen (T Ag)-, and platelet-derived growth factor receptor (PDGFR)-derived phosphopeptides interacted with the growth factor receptor binding protein (Grb)2/SH2, Lck/SH2, and phosphatidyl inositol 3-kinase (PI3K) p85/SH2, respectively. No cross-reactions were observed. Competitive inhibition experiments showed that a short phosphopeptide of only four amino acids was long enough to determine the binding specificity. Optimal concentrations of the GST-SH2 fusion protein and phosphopeptide in this new ELISA system for screening the binding blockers were chosen at 2nM and 500nM, respectively. When two candidate compounds were tested in our ELISA system, they specifically inhibited the Lck/SH2 and/or p85/SH2 binding to the relevant phosphopeptides. Our results indicate that this ELISA system could be used as an easy screening method for the discovery of specific binding blockers of protein-protein interactions via SH2 domains.
A monoclonal antibody (mab) against the antimicrobial sulfamethazine was prepared and characterized by an indirect competitive enzyme-linked immunosorbent assay (IC-ELISA). Sulfamethazine in the range of 0.2 and 45ng/ml could be determined with the mab by IC-ELISA. cDNAs encoding a variable heavy chain and variable light chain of the mab were cloned to produce recombinant antibodies using phage display technology. Following phage rescue and three rounds of panning, a single-chain variable fragment (scFv) antibody with high sulfamethazine-binding affinity was obtained. ELISA analysis revealed that scFv antibody and parent mab showed similar, but not identical, characteristics. The $IC_{50}$ value by IC-ELISA with scFv antibody was 4.8ng/ml, compared with 1.6ng/ml with the parent mab. Performances of the assays in the presence of milk matrix were compared; the mab-based assay was less affected than the scFv-based assay. Sixty milk samples were analyzed by mab-based IC-ELISA, and four samples were sulfamethazine positive; these results were favorably correlated with those obtained by HPLC.
Specific antibodies were produced to develope the enzyme-linked immunosorbent assay for analysis of soy proteins and the properties of the antibodies were compared. Isolate soy protein(ISP), and ISP heated with SDS and urea (ISP(SU)), acidic subunits(AS) of 11S globulin were immunized to produce polyclonal antibodies. By using competitive indirect ELISA(ciELISA), the reactivities of the antibodies toward soy proteins treated with different methods were investigated and shown as $IC_{50}$. $IC_{50}'s$ of anti-ISP antibodies to ISP, ISP(SU), ISP treated with 2-ME(ISP(ME)), and crude 11S were 20, 30, 36, and $1000\;{\mu}g/mL$, respectively. And the values of anti-ISP(SU) antibodies to the same antigens were 100, 5, 4, and $220\;{\mu}g/mL$ and those of anti-AS antibodies were 20, 2, 2.5, and $200\;{\mu}g/mL$, respectively. Therefore, anti-AS antibodies showed the highest reactivities toward soy proteins among the produced antibodies as determined by ciELISA.
This study was attempted to generate a monoclonal antibody against human $\alpha$-fetoprotein (AFP) and to produce an immunoassay, recognizing AFP in plasma and amniotic fluid. AFP was purified from human amniotic fluid and used to immunize mice. Spleens were taken from the mice and the cells were fused with mouse myeloma cells (Sp2/0-Ag-14) for the production of monoclonal antibodies by employing the hybridoma technology. As a result, a hybridoma cell line producing anti-AFP monoclonal antibody was cloned out and designated as MabF22. From isotyping analysis, it was found that monoclonal antibody MabF22 was IgG type with IgG1 heavy chain and k light chain. The binding specificity of MabF22 was analyzed by immunoblotting as well as by ELISA. MabF22 was highly specific, reacting with only AFP-containing samples. The binding affinity was determined by ELISA (free-capture mode) and Scatchard analysis. As a result, the value of Kd was 0.8$\times$10$^{-10}$M. The validity of the MabF22 for AFP assay was examined by two kinds of ELISAs, i.e., non-competitive and competitive ELISA. Both assays revealed that MabF22 reacted well with AFP in sample in a concentration-dependent manner. Standard curve and antibody titration curve were obtained by using purified AFP and MabF22. These results indicate that the monoclonal antibody produced in this study would be useful not only for research purposes but also for further development of immune-diagnostic kit for the measurement of AEP concentration.
Ha, Woel-Kyu;Juhn, Suk-Lak;Kim, Jung-Wan;Lee, Soo-Won;Lee, Jae-Young;Shon, Dong-Hwa
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.26
no.4
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pp.436-441
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1994
To investigate the lowering effects of in vitro enzymatic hydrolysis by the treatment of chymotrypsin, trypsin, pancreatin, or protease from Aspergillus oryzae on the antigenicity of whey protein isolate (WPI) against rabbit anti ${\alpha}-LA$ antiserum, competitive inhibition ELISA (cELISA) and passive cutaneous anaphylaxis (PCA) test using guinea pig were performed. The results of cELISA showed that the monovalent antigenicity of the whey protein hydrolysates (WPH) to the antiserum was decreased to $10^{-2.5}-10^{-5.5}$ and less by the hydrolysis. The monovalent antigenicity of the WPH hydrolyzed by trypsin, or protease from Asp. nryzae was much lowered by the pretreatment of heat denaturation. The antigenicity of the WPH hydrolyzed by chymotrypsin, trypsin, or pancreatin was much lowered by the pretreatment of pepsin. Especially, the antigenicity of TDP (trypic hydrolysate with pretreatment of heat and pepsin) was found almost to be removed. However, there was not consistency between degree of hydrolysis(DH) and the monovalent antigenicity of the WPH. By the heterologous PCA it was found that all of the PGPH lost the polyvalent antigenicity regardless of the pretreatments although WPI and ${\alpha}-LA$ had the positive high antigenicity. The results suggested that the peptides derived from ${\alpha}-LA$ in WPH could bind specific antibodies but they could not induce allergy. Therefore, it was elucidated that the allergenicity of ${\alpha}-LA$ in whey protein could be destroyed easily by the enzymatic hydrolysis.
A non-instrumental immunochromatographic (ICG) strip-test and direct competitive enzyme-linked immunosorbent assay (DC-ELISA) for aflatoxin B1 (AFB1) determination were developed and optimized. The detection limits of ICG strip-test and DC-ELISA were 0.5 and 0.004 ng/mL, respectively, and these methods possessed a cross-reaction to aflatoxins. The results of spiked samples by both methods were coincided with the amount spiked AFB1 and the comparative analyses of 172 real samples by 2 immunoassays and high performance liquid chromatography (HPLC) showed a good agreement. Especially, the ICG strip-test is easier to perform and quicker, but less sensitivity than DC-ELISA. Both methods could analyze a high sample throughput with short time, but the sample throughput of ICG strip-test was better. Therefore, the ICG strip-test can be used as a simple, easy, non-instrumental, and fast screening technique for AFB1 determination.
Studies were undertaken to develop a competitive radioimmunoassay (RIA) and indirect antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for the determination of 5'-deoxy-5'-methylthioadenosine (MTA), which is formed from decarboxylated S-adenosylmethionine by spermidine and spermine synthase. Specific antiserum against MTA was raised in rabbits by immunization with MTA-BSA which was prepared by coupling BSA to oxidized MTA with periodate. Since MTA is oxidized easily to the sulfoxide, the sulfhydryl reagent, DTT. was added to the immunogen. For RIA, immunocomplexes were separated from free MTA by using ammonium sulfate precipitation. The antiserum showed almost no cross-reactivity with a variety of other nucleotides and riboses. But, the level of cross-reactivity of 5'-isobutylthioadenosine (SIBA) was high. These results showed the importance of hydrophobicity adjacent to the 5'-OH for determining antigenicity. The lower limit of detection by this assay was 100 fmol of MTA per tube. Using this assay. MTA levels were more easily and precisely determined in biological samples when compared with HPLC analysis. The RIA procedure is less time consuming. More than 24 analyses can be carried out in 2 h and required only a very small amount of sample ($20{\mu}l$ serum). In ELISA, biotin conjugated MTA-BSA was used as the labelled MTA. The sensitivity limit of this assay was lower than 100 pmol.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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