Reductases convert some achiral ketone compounds into chiral alcohols, which are important materials for the synthesis of chiral drugs. The Saccharomyces cerevisiae reductase YOR120W converts ethyl-4-chloro-3-oxobutanoate (ECOB) enantioselectively into (R)-ethyl-4-chloro-3-hydroxybutanoate ((R)-ECHB), an intermediate of a pharmaceutical. As YOR120W requires NADPH as a cofactor for the reduction reaction, a cofactor recycling system using Bacillus subtilis glucose dehydrogenase was employed. Using this coupling reaction system, 100 mM ECOB was converted to (R)-ECHB. A homology modeling and site-directed mutagenesis experiment were performed to determine the NADPH-binding site of YOR120W. Four residues (Q29, K264, N267, and R270) were suggested by homology and docking modeling to interact directly with 2'-phosphate of NADPH. Among them, two positively charged residues (K264 and R270) were experimentally demonstrated to be necessary for NADPH 2'-phosphate binding. A mutant enzyme (Q29E) showed an enhanced enantiomeric excess value compared with that of the wild-type enzyme.
New two kinds of methacrylate monomers having a benzene ring inserted between spacer and methacryloyl group and the chiral center connected to the terminal of the mesogenic structures were synthesized. In these two series the effects for the formation of the liquid crystals in regard to the length changes of the spacers and mesogenic groups were investigated. The first series did not show any liquid crystalline phases in the intermediate compounds nor in the end products. However, the methacrylates of second series showed the liquid crystalline phases in the intermediate compounds as well as in the final products regardless of the length of the spacers.
Higenamine [1-(4-hydroxy-6, 7-dihydroxy-l, 2, 3, 4-tetrahydroisoquinoline) is a cardiotonic constituent of Aconiti tuber, one of the most widely prescribed oriental medicines. S-(-)higenamine was reported to have a stronger cardiotonic activity than R-(+)-higenamine and known as a central intermediate in the biosynthesis of various benzyl isoquionoline alkaloids in plants. The separation of higenamine enantiomers has been accomplished with capillary electrophoresis using cyclodextrins (CDs) as chiral selectors. Good resolution of this enantiomers was obtained using a 50 mM sodium phosphate buffer containing hydroxypropyl $\beta$-CDs using 27 cm fused silica capillary (50${\mu}{\textrm}{m}$ i.d., 20 cm to detector) at 25 $^{\circ}C$. With the electric field of 340 V/cm, the separation time of higenamine enantiomers was less than 6 min. Under this optimum conditions, the relative standard deviations of migration time and peak area were less than 1.6% and 3.2%. A 512-channel diode array detector was confirmed for the higenamine. The detection limits (S/N = 3) of these enantiomers are $1.5mutextrm{m}$/mL. We confirmed the chiral form of higenamine in medicinal plants.
Xanthorrhizol is a bisabolane type of natural sesquiterpene, the major component of essential oils of Curcuma xanthorrhiza. 2-(3-Methoxy-4-methylphenyl)propan-1-ol and 2-(3-hydroxy-4-methyl phenyl)propan-1-ol could be essential building block for enantioselective synthesis of xanthorrhizol. Enantioselective (c = 53%, E = $80{\pm}3$) for R-(+)-2-(3-hydroxy-4-methylphenyl) propan-1-ol and (c = 58%, E = $27{\pm}1$) for R-(+)-2-(3-methoxy-4-methylphenyl) propan-1-ol resolution processes were developed via lipase-catalyzed reaction. We found lipase Aspergillus oryzae (AOL) and Porcine pancreas (PPL) are selective to transesterification and hydrolysis in organic and aqueous phase. Modified demethylated substrate is appropriate for enantioselective hydrolysis reaction without any additives. Enantiopure chiral alcohol was crystallized from ethyl acetate/n-hexane co-solvent system. Gram scale resolved chiral intermediate will facilitate the synthesis of the unnatural S-(+)-xanthorrhizol, the corresponding isomer of the natural one.
Using the low valent titanium induced carbonyl-carbonyl coupling reaction, it was attempted to synthesize sterically hindered 17-membered cyclic chiral host 2. The semifinal dialdehyde 12 was obtained through 11 step reactions beginning from p-tert-butylphenol and dibenzofuran. When dialdehyde 12 was treated with $TiCl_3-Zn/Cu,$ only intermolecularly coupled dimer 14 was obtained instead of intramolecularly coupled cyclic alkene 2. The mechanistic consideration leading to 14 was discussed and the cation binding properties of dimer 14 and dicarboxylic intermediate 13 was reported, which implies the significance of the principle of preorganization of host's binding sites prior to complexation.
S-Hydroxypropyl(PH) ${\beta}$-cyclodextrin(hydrophilic), dialkyl(DA)-cyclodextrin(hydrophobic), trifluoroacetyl(TA) ${\gamma}$-cyclodextrin(intermediate) stationary phases were used for gas chromatographic separation of racemic alcohols and their derivatives. All the alcohols used for this experiment were derivatived by using trifluoro acetic anhydride, acetic anhydride, or trichloro acetic anhydride. It is apparent that the enantioselectivity of the enantiomeric pairs was very dependent on the type of acylation reagent. The best experimental condition of optical resolution of the alcohols and their derivatives was different on the polarity of the solute molecules. The chiral separation was also studied depending on temperature, polarity of the column, and hydrogen bonding ability and steric effect between the alchols and CD stationary phase. The chiral recognition mechanism is dependent not upon the kinds of the chiral stationay phases but upon the derivatization of the racemic alchols.
Efficient synthetic routes were developed to prepare a sizable amount (4-15 grams) of the chiral epoxides 4-6 as versatile intermediates for the synthesis of aspartyl protease inhibitors of therapeutic interest such as HIV protease and ${\beta}$-secretase. Oxidative cleavage of the C(2)-C(3) double bond of L-ascorbic acid followed by functional group manipulation led to the preparation of the epoxide 10, which was opened with an azide to yield a common aziridine intermediate 12. Through opening of the aziridine ring of 12 with either a carbon or a sulfur nucleophile, chiral epoxide precursors 4-6 could be prepared for various HIV protease inhibitors. Except for the final low melting epoxides 5 and 6, all intermediates were obtained as crystalline solids, thus the synthetic pathway can be easily applied to a large-scale synthesis of the chiral epoxides.
A synthetic route to (+)-isocarbacyclin starting from (-)-tricyclo[3.3.0.0$^{2.8}$]octan-3-one 6 is described. The key intermediate 4 has been synthesized from 6 by a sequential introduction of methoxycarbonyl group at C-12 and the oxygen functionality at C-9${\alpha}$(PG numbering) for the construction of ${\alpha}-and\;{\omega}$-side chain, and then converted to isocarbacyclin methyl ester 2.
For the synthesis of various pharmaceuticals, chiral alcohols are useful intermediates. Among them, (R)-ethyl-4-chloro-3-hydroxybutanoate ((R)-ECHB) is an important building block for the synthesis of L-carnitine. (R)-ECHB is produced from ethyl-4-chloro-3-oxobutanoate (ECOB) by a reductase-mediated, enantioselective reduction reaction. The Saccharomyces cerevisiae YOL151W reductase that is expressed in Escherichia coli cells exhibited an enantioselective reduction reaction toward ECOB. By virtue of the C-terminal His-tag, the YOL151W reductase was purified from the cell-free extract using Ni2+-NTA column chromatography and immobilized onto Ni2+-magnetic microparticles. The physical properties of the immobilized reductase (Imm-Red) were measured using electron microscopy, a magnetic property measurement system, and a zeta potential system; the average size of the particles was approximately 1 μm and the saturated magnetic value was 31.76 emu/g. A neodymium magnet was used to recover the immobilized enzyme within 2 min. The Imm-Red showed an optimum temperature at 45℃ and an optimum pH at 6.0. In addition, Bacillus megaterium glucose dehydrogenase (GDH) was produced in the E. coli cells and was used in the coupling reaction to regenerate the NADPH cofactor. The reduction/oxidation coupling reaction composed of the Imm-Red and GDH converted 20 mM ECOB exclusively into (R)-ECHB with an e.e.p value of 98%.
Park, Hyun-Joo;Jung, Ji-Hye;Choi, Hye-Jeong;Uhm, Ki-Nam;Kim, Hyung-Kwoun
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.20
no.9
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pp.1300-1306
/
2010
Ethyl (R, S)-4-chloro-3-hydroxybutanoate (ECHB) is a useful chiral building block for the synthesis of L-carnitine and hypercholesterolemia drugs. The yeast reductase, YOL151W (GenBank locus tag), exhibits an enantioselective reduction activity, converting ethyl-4-chlorooxobutanoate (ECOB) exclusively into (R)-ECHB. YOL151W was generated in Escherichia coli cells and purified via Ni-NTA and desalting column chromatography. It evidenced an optimum temperature of $45^{\circ}C$ and an optimum pH of 6.5-7.5. Bacillus subtilis glucose dehydrogenase (GDH) was also expressed in Escherichia coli, and was used for the recycling of NADPH, required for the reduction reaction. Thereafter, Escherichia coli cells co-expressing YOL151W and GDH were constructed. After permeablization treatment, the Escherichia coli whole cells were utilized for ECHB synthesis. Through the use of this system, the 30 mM ECOB substrate could be converted to (R)-ECHB.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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