Zhang, Ying Chao;Wang, Xue Kai;Li, Dong Xia;Lin, Yan Li;Yang, Fu Yu;Ni, Kui Kui
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.33
no.2
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pp.254-263
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2020
Objective: The objective of this study was to investigate the effects of wilting and additives on the fermentation quality, structural and non-structural carbohydrate composition of mulberry silages. Methods: The selected lactic acid bacteria strains Lactobacillus plantarum 'LC279063' (L1), commercial inoculant Gaofuji (GF), and Trichoderma viride cellulase (CE) were used as additives for silage preparation. Silage treatments were designed as control (CK), L1, GF, or CE under three wilting rates, that is wilting for 0, 2, or 4 hours (h). After ensiling for 30 days, the silages were analyzed for the chemical and fermentation characteristics. Results: The results showed that wilting had superior effects on increasing the non-structural carbohydrate concentration and degrading the structural carbohydrate. After ensiling for 30 days, L1 generally had a higher fermentation quality than other treatments, indicated by the lower pH value, acetic acid, propionic acid and ammonia nitrogen (NH3-N) content, and the higher lactic acid, water soluble carbohydrate, glucose, galactose, sucrose, and cellobiose concentration (p<0.05) at any wilting rate. Wilting could increase the ratio of lactic acid/acetic acid and decrease the content of NH3-N. Conclusion: The results confirmed that wilting degraded the structural carbohydrate and increased the non-structural carbohydrate; and L1 exhibited better properties in improving fermentation quality and maintaining a high non-structural carbohydrates composition compared with the other treatments.
A ${\beta}$-glucosidase with the molecular mass of 160,000 Da was purified to homogeneity from cell extract of a cellulolytic bacterium, Cellulomonas uda CS1-1. The kinetic parameters ($K_m$ and $V_{max}$) of the enzyme were determined with pNP-cellooligosccharides (DP 1-5) and cellobiose. The molecular orbital theoretical studies on the cellulolytic reactivity between the pNP-cellooligosaccharides as substrate (S) molecules and the purified ${\beta}$-glucosidase (E) were conducted by applying the frontier molecular orbital (FMO) interaction theory. The results of the FMO interaction between E and S molecules verified that the first stage of the reaction was induced by exocyclic cleavage, which occurred in an electrophilic reaction based on a strong charge-controlled reaction between the highest occupied molecular orbital (HOMO) energy of the S molecule and the lowest occupied molecular orbital (LUMO) energy of the hydronium ion ($H_3O^+$), more than endocyclic cleavage, whereas a nucleophilic substitution reaction was induced by an orbital-controlled reaction between the LUMO energy of the oxonium ion ($SH^+$) protonated to the S molecule and the HOMO energy of the $H_2O_2$ molecule. A hypothetic reaction route was proposed with the experimental results in which the enzymatic acid-catalyst hydrolysis reaction of E and S molecules would be progressed via $SN_1$ and $SN_2$ reactions. In addition, the quantitative structure-activity relationships (QSARs) between these kinetic parameters showed that $K_m$ has a significant correlation with hydrophobicity (logP), and specific activity has with dipole moment, respectively.
A ${\beta}$-glucosidase from Phoma sp. KCTC11825BP isolated from rotten mandarin peel was purified 8.5-fold with a specific activity of 84.5 U/mg protein. The purified enzyme had a molecular mass of 440 kDa with a subunit of 110 kDa. The partial amino acid sequence of the purified ${\beta}$-glucosidase evidenced high homology with the fungal ${\beta}$- glucosidases belonging to glycosyl hydrolase family 3. Its optimal activity was detected at pH 4.5 and $60^{\circ}C$, and the enzyme had a half-life of 53 h at $60^{\circ}C$. The $K_m$ values for p-nitrophenyl-${\beta}$-D-glucopyranoside and cellobiose were 0.3 mM and 3.2 mM, respectively. The enzyme was competitively inhibited by both glucose ($K_i$=1.7 mM) and glucono-${\delta}$-lactone ($K_i$=0.1 mM) when pNPG was used as the substrate. Its activity was inhibited by 41% by 10 mM $Cu^{2+}$ and stimulated by 20% by 10 mM $Mg^{2+}$.
Park, Ah Reum;Park, Jeong-Hoon;Ahn, Hye-Jin;Jang, Ji Yeon;Yu, Byung Jo;Um, Byung-Hwan;Yoon, Jeong-Jun
Mycobiology
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v.43
no.1
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pp.57-62
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2015
${\beta}$-Glucosidase, which hydrolyzes cellobiose into two glucoses, plays an important role in the process of saccharification of the lignocellulosic biomass. In this study, we optimized the activity of ${\beta}$-glucosidase of brown-rot fungus Fomitopsis pinicola KCTC 6208 using the response surface methodology (RSM) with various concentrations of glucose, yeast extract and ascorbic acid, which are the most significant nutrients for activity of ${\beta}$-glucosidase. The highest activity of ${\beta}$-glucosidase was achieved 3.02% of glucose, 4.35% of yeast extract, and 7.41% ascorbic acid where ascorbic acid was most effective. The maximum activity of ${\beta}$-glucosidase predicted by the RSM was 15.34 U/mg, which was similar to the experimental value 14.90 U/mg at the 16th day of incubation. This optimized activity of ${\beta}$-glucosidase was 23.6 times higher than the preliminary activity value, 0.63 U/mg, and was also much higher than previous values reported in other fungi strains. Therefore, a simplified medium supplemented with a cheap vitamin source, such as ascorbic acid, could be a cost effective mean of increasing ${\beta}$-glucosidase activity.
In order to obtain the fundamental informations on cellulase of Trichoderma viride QM 9414 for its production and utilization, some physico-chemical properties of the enzyme were reviewed. When T. viride QM 9414 was cultured on wheat bran medium, filter paper-disintegrating and carboxymethyl cellulose-saccharifying activity were increased with the cell growth, and thereafter CMC-saccharifying activity was kept on almost the same leved while filter-paper disintegrating activity was decreased sharply. And B-glucosidase was formed maximally on the late stationary phase of growth. The crude cellulase of cell-free extracts was purified by (NH4)2SO4 fractionation, Sephadex-G 200 column chromatography and DEAE Sephadex A-50 column chromatography. Filter paper-disintegrating, CMC-saccharifying and B-glucosidase activity were purified 10-fold, 47-fold and 38-fold, respectively. The crude enzyme was proved to be a complex of three different enzyme proteins which were showing filter paper-disintegrating, CMC-saccharifying and B-glucosidase activity. The optimal pH of the three enzyme components was alike pH 4.0, and the optimal temperature for CMC-saccharifying, filter paper-disintegrating and B-glucosidase activity were 4$0^{\circ}C$, 45$^{\circ}C$ and 5$0^{\circ}C$ respectively. The Km and Vmax values of CMC saccharifying activity for CMC were 0.485% and 3.10, and the Km and Vmax vallues of B-glucosidase for PNPG were 0.944$\times$10-3M and 0.097, respectively. The Km and Vmax values of filter paper-disintegrating activity for Avicel were determined to be 0.09% and 0.178, respectively. B-Glucosidase activity was competitively inhibited by glucose, and the Ki value for this enzyme was 3.54$\times$10-3M, CMC saccharifying activity was found to be greatly inhibited by cellobiose.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2002.11b
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pp.59-59
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2002
This study was excuted to decide the physiological characteristics of Lentinus lepides. L. lepides was tested to select pertinent substract, temperature and pH range for the growth. Mycelial growth of Lentinus lepides was mostly supported on MYPA among other tested synthetic or semi-synthetic media. The temperature range for pertinent mycelial growth was about 22~32$^{\circ}C$ and mostly stimulated at $25^{\circ}C$. And the pertinent pH range of MYPA was 3.0~4.0. The required carbon and nitrogen source for mycelial growth of Lentinus lepides was tested. The mycelial growth was mostly stimulated by soluble starch at content. The carbon sources for pertinent mycelial growth was maltose. And the nitrogen source for pertinent mycelial growth was peptone.
Kim, Se-Hwa;Min, Jin-Woo;Quan, Lin-Hu;Lee, Sung-Young;Yang, Dong-Uk;Yang, Deok-Chun
Journal of Ginseng Research
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v.36
no.3
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pp.291-297
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2012
Ginsenoside (ginseng saponin), the principal component of ginseng, is responsible for the pharmacological and biological activities of ginseng. We isolated lactic acid bacteria from Kimchi using esculin agar, to produce ${\beta}$-glucosidase. We focused on the bio-transformation of ginsenoside. Phylogenetic analysis was performed by comparing the 16S rRNA sequences. We identified the strain as Lactobacillus (strain 6105). In order to determine the optimal conditions for enzyme activity, the crude enzyme was incubated with 1 mM ginsenoside Rb1 to catalyse the reaction. A carbon substrate, such as cellobiose, lactose, and sucrose, resulted in the highest yields of ${\beta}$-glucosidase activity. Biotransformations of ginsenoside Rb1 were analyzed using TLC and HPLC. Our results confirmed that the microbial enzyme of strain 6105 significantly transformed ginsenoside as follows: Rb1${\rightarrow}$gypenoside XVII, Rd${\rightarrow}$F2 into compound K. Our results indicate that this is the best possible way to obtain specific ginsenosides using microbial enzymes from 6105 culture.
Mallerman, Julieta;Papinutti, Leandro;Levin, Laura
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.1
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pp.57-65
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2015
β-Glucosidase production by the white rot fungus Flammulina velutipes CFK 3111 was evaluated using different carbon and nitrogen sources under submerged fermentation. Maximal extracellular enzyme production was 1.6 U/ml, corresponding to a culture grown in sucrose 40 g/land asparagine 10 g/l. High production yield was also obtained with glucose 10 g/land asparagine 4 g/l medium (0.5 U/ml). Parameters affecting the enzyme activity were studied using p-nitrophenyl-β-D-glucopyranoside as the substrate. Optimal activity was found at 50℃ and pHs 5.0 to 6.0. Under these conditions, β-glucosidase retained 25% of its initial activity after 12 h of incubation and exhibited a half-life of 5 h. The addition of MgCl2, urea, and ethanol enhanced the β-glucosidase activity up to 47%, whereas FeCl2, CuSO4, Cd(NO3)2, and cetyltrimethylammonium bromide inflicted a strong inhibitory effect. Glucose and cellobiose also showed an inhibitory effect on the β-glucosidase activity in a concentration-dependent manner. The enzyme had an estimated molecular mass of 75 kDa. To the best of our knowledge, F. velutipes CFK 3111 β-glucosidase production is amongst the highest reported to date, in a basidiomycetous fungus.
Brettanomyces custersii CBS 5512 which has reported as a thermotolerant glucose-cellobiose co-fermentable yeast strain was mutated with UV and NTG to improve ethanol yield at higher than 4$0^{\circ}C$ B. custersii H1-23, H1-39, H1-55 and H1062 were finally selected for hyper-fermentable strains at higher than 4$0^{\circ}C$ from thermotolerant 7510 colonies through 5th selection. Among the selected strains, H1-39 mutant had better fermentability at 4$0^{\circ}C$ and 43$^{\circ}C$ from different concentrations of glucose. H1-39 and H1-23 mutants yielded more than 70% of the theoretical ethanol yield in 4 and 8% mixed sugars at above 4$0^{\circ}C$, which was 5-11% higher than those by original strain. Especially, H1-39 mutant had better fermentability in 4% mixed sugar. It showed 78.5% of the theoretical yield at 4$0^{\circ}C$ and 72.2% of the theoretical yield at 43$^{\circ}C$. On the other hand, theoretical yield of ethanol by H1-39 mutant in 8% mixed sugar at 4$0^{\circ}C$ and 43$^{\circ}C$ were 75.2% and 70.2%, respectively. Theses values increased up to 7-11% as compared to those by orginal strain. By the simultaneous saccharification and fermentation, ethanol production by H1-39 mutant increased up to more than 23% as compared to that by original strain.
A high ${\beta}$-glucosidase (BGL)-producing strain, Stereum hirsutum, was identified and isolated and showed a maximum BGL activity (10.4 U/ml) when cultured with Avicel and tryptone as the carbon and nitrogen sources, respectively. In comparison with other BGLs, BGL obtained from S. hirsutum showed a higher level of activity to cellobiose ($V_{max}$ = 172 U/mg, and $k_{cat}$ = 281/s). Under the optimum conditions (600 rpm, $30^{\circ}C$, and pH 6.0), the maximum BGL activity of 10.4 U/ml with the overall productivity of 74.5 U/l/h was observed. BGL production was scaled up from a laboratory scale (7-L fermenter) to a pilot scale (70-L fermenter). When S. hirsutum was cultured in fed-batch culture with rice straw as the carbon source in a 70-L fermenter, a comparable productivity of 78.6 U/l/h was obtained. Furthermore, S. hirsutum showed high levels of activity of other lignocellulases (cellobiohydrolase, endoglucanase, xylanase, and laccase) that are involved in the saccharification of biomasses. Application of S. hirsutum lignocellulases in the hydrolysis of Pinus densiflora and Catalpa ovata showed saccharification yields of 49.7% and 43.0%, respectively, which were higher than the yield obtained using commercial enzymes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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