This study aimed to investigate the signal transduction of phosphorylation sites at the carboxyl (C)-terminal region of equine luteinizing hormone/chorionic gonadotropin receptor (eLH/CGR). The eLH/CGR has a large extracellular domain of glycoprotein hormone receptors within the G protein-coupled receptors. We constructed a mutant (eLH/CGR-t656) of eLH/CGR, in which the C-terminal cytoplasmic tail was truncated at the Phe656 residue, through polymerase chain reaction. The eLH/CGR-t656 removed 14 potential phosphorylation sites in the intracellular C-terminal region. The plasmids were transfected into Chinese hamster ovary (CHO)-K1 and PathHunter Parental cells expressing β-arrestin, and agonist-induced cAMP responsiveness was analyzed. In CHO-K1 cells, those expressing eLH/CGR-t656 were lower than those expressing eLH/CGR wild-type (eLH/CGR-wt). The EC50 of the eLH/CGR-t656 mutant was approximately 72.2% of the expression observed in eLH/CGR-wt. The maximal response in eLH/CGR-t656 also decreased to approximately 43% of that observed in eLH/CGR-wt. However, in PathHunter Parental cells, cAMP activity and maximal response of the eLH/CGR-t656 mutant were approximately 173.5% and 100.8%, respectively, of that of eLH/CGR-wt. These results provide evidence that the signal transduction of C-terminal phosphorylation in eLH/CGR plays a pivotal role in CHO-K1 cells. The cAMP level was recovered in PathHunter Parental cells expressing β-arrestin. We suggest that the signal transduction of the C-terminal region phosphorylation sites is remarkably different depending on the cells expressing β-arrestin in CHO-K1 cells.
The molecular machinery controlling cell cycle is centered around the regulation of the activity of maturation-promoting factor (MPF), a complex composed of a catalytic Cdc2 and the cyclinB regulatory subunit. Cdc2 kinase is inactivated by phosphorylation of inhibitory kinase, Wee1. It has been known that there are three different Wee1 kinases in the mammalian cell, Wee1A, Wee1B and Myt1. To investigate the regulatory mechanism of Wee1 kinases, the phosphorylation and degradation of Wee1A and Wee1B were checked in the Xenopus oocyte cell cycle. When Wee1 kinases were injected into frog oocyte, Wee1B was more stable than Wee1A. Wee1A and Wee1B kinase were phosphorylated by many kinases such as PKA and Akt. The roles of amino or carboxyl terminal in mouse Wee1A or Wee1B kinase were investigated using chimeric constructs. The degree of protein phosphorylation, degradation and cell cycle progression were different between chimeric constructs. The amino domain of Wee1A was implicated in the protein phosphorylation and degradation while amino domain of Wee1B and carboxyl domain of Wee1A were involved in the activity regulation. These results suggested that the domains of Wee1 kinase have different and significant roles in regulating the Wee1 kinases in the cell cycle progression.
Se Young Pyo;Young Joo Jeong;Sung Woo Park;Mi Kyoung Seo;Won Hee Lee;Sang-Hwa Urm;Sang Jin Kim;Mooseong Kim;Jung Goo Lee;Dae-Hyun Seog
Journal of Life Science
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v.33
no.1
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pp.1-7
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2023
Intracellular cargo transport is mediated by molecular motor proteins, such as kinesin and cytoplasmic dynein. Kinesins make up a large subfamily of molecular motors. Kinesin-1 is a plus-end-directed molecular motor protein that moves various cargoes, such as organelles, protein complexes, and mRNAs, along a microtubule track. It consists of the kinesin superfamily protein (KIF) 5A, 5B, and 5C (also called kinesin heavy chains) and kinesin light chains (KLCs). Kinesin-1 interacts with many different binding proteins through its carboxyl (C)-terminal region of KIF5s and KLCs, but their binding proteins have not yet been fully identified. In this study, a yeast two-hybrid assay was used to identify the proteins that interact with the KIF5A specific C-terminal region. The assay revealed an interaction between KIF5A and glutamate-rich 4 (ERICH4). ERICH4 bound to the KIF5A specific the C-terminal region but did not interact with the C-terminal region of KIF5B or KIF3A (a motor protein of kinesin-2). In addition, KIF5A did not interact with another isoform, ERICH1. Glutathione S-transferase (GST) pull-downs showed that KIF5A interacts with GST-ERICH4 and GST-ERICH4-amino (N)-terminal but not with GST-ERICH4-C or GST alone. When co-expressed in HEK-293T cells, ERICH4 co-localized with KIF5A and co-immunoprecipitated with KIF5A and KLC but not KIF3B. Together, our findings suggest that ERICH4 is capable of binding to KIF5A and that it may serve as an adaptor protein that links kinesin-1 with cargo.
Kinesin-I exists as a tetramer of two heavy chains (KHCs, also called KIF5s), which contain the amino (N)-terminal motor domain and carboxyl (C)-terminal domain, as well as two light chains (KLCs), which bind to the KIF5s (KIF5A, KIF5B and KIF5C) stalk region. To identify the interaction proteins for KIF5A, yeast two-hybrid screening was performed and a specific interaction with the ${\beta}$ subunit of heterotrimeric G proteins ($G{\beta}$) was found. $G{\beta}$ bound to the amino acid residues between 808 and 935 of KIF5A and to other KIF5 members in the yeast two-hybrid assay. The WD40 repeat motif of $G{\beta}$ was essential for interaction with KIF5A. In addition, these proteins showed specific interactions in the glutathione S-transferase (GST) pull-down assay. An antibody to KIF5s specifically co-immunoprecipitated KIF5s associated with heterotrimeric G proteins from mouse brain extracts. These results suggest that kinesin-I motor protein transports heteroterimeric G protein attachment vesicles along microtubules in the cell.
Oqani, Reza K.;Zhang, Jin Yu;Lee, Min-Gu;Diao, Yun Fei;Jin, Dong-Il
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.25
no.6
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pp.789-793
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2012
Fertilization of the oocyte commences embryogenesis during which maternally inherited mRNAs are degraded and the embryonic genome is activated. Transcription of embryonic mRNA is initiated by embryonic genome activation (EGA). RNA polymerase II (RNA Pol II) is responsible for the synthesis of mRNAs and most small nuclear RNAs, and consists of 12 subunits, the largest of which characteristically harbors a unique C-terminal domain (CTD). Transcriptional activity of RNA Pol II is highly regulated, in particular, by phosphorylation of serine residues in the CTD. Here, we have shown the presence of RNA Pol II CTD phosphoisoforms in porcine oocytes and preimplantation embryos. The distribution pattern as well as phosphorylation dynamics in germinal vesicles and during embryogenesis differed in developmental stages with these isoforms, indicating a role of RNA Pol II CTD phosphorylation at the serine residue in transcriptional activation during both oocyte growth and embryonic genome activation. We additionally examined the effects of the RNA Pol II inhibitor, ${\alpha}$-amanitin, on embryo development. Our results show that inhibition of polymerase, even at very early stages and for a short period of time, dramatically impaired blastocyst formation. These findings collectively suggest that the functionality of maternal RNA Pol II, and consequently, expression of early genes regulated by this enzyme are essential for proper embryo development.
Kinesin-1 consists of two heavy chains (KHCs), also called KIF5s, and two light chains (KLCs) that form a heterotetrameric complex. Here, we demonstrate the binding of a neuronal KHC, KIF5A, to the carboxyl (C)-terminal tail region of Fig4 (also known as Sac3), a phosphatase that removes the 5-phosphate from phosphatidylinositol-3,5-bisphosphate ($PtdIns(3,5)P_2$). Fig4 bound to the C-terminal region of KIF5A but not to other KHCs (KIF5B and KIF5C) and KLC1 in yeast two-hybrid assays. The interaction was further confirmed in a glutathione S-transferase pull-down assay and by co-immunoprecipitation. Anti-KIF5A antibody co-immunoprecipitated Fig4 with KIF5A from mouse brain extracts. These results suggest that kinesin-1 could transport the Fig4-associated protein complex or cargo in cells.
Although the possible cellular roles of several ubiquitin-specific proteases (UBPs) were identified in Arabidopsis, almost nothing is known about UBP homologs in rice, a monocot model plant. In this report, we searched the rice genome database (http://signal.salk.edu/cgi-bin/RiceGE) and identified 21 putative UBP family members (OsUBPs) in the rice genome. These OsUBP genes each contain a ubiquitin carboxyl-terminal hydrolase (UCH) domain with highly conserved Cys and His boxes and were subdivided into 9 groups based on their sequence identities and domain structures. RT-PCR analysis indicated that rice OsUBP genes are expressed at varying degrees in different rice tissues. We isolated a full-length cDNA clone for OsUBP6, which possesses not only a UCH domain, but also an N-terminal ubiquitin motif. Bacterially expressed OsUBP6 was capable of dismantling K48-linked tetra-ubiquitin chains in vitro. Quantitative real-time RT-PCR indicated that OsUBP6 is constitutively expressed in different tissues of rice plants. An in vivo targeting experiment showed that OsUBP6 is predominantly localized to the nucleus in onion epidermal cells. We also examined how knock-out of OsUBP6 affects developmental growth of rice plants. Although homozygous T3 osubp6 T-DNA insertion mutant seedlings displayed slower growth relative to wild type seedlings, mature mutant plants appeared to be normal. These results raise the possibility that loss of OsUBP6 is functionally compensated for by an as-yet unknown OsUBP homolog during later stages of development in rice plants.
Objective: This study was conducted to evaluate the effects of vitamin K (VK) supplementation on reproductive performance and bone metabolism-related biochemical markers in sows. Methods: Twenty-four Large White×Landrace sows (mean parity 4.04) were randomly assigned to two dietary treatments (NC diet, a basal diet with 0.5 mg/kg of VK3; VK diet, a basal diet with 5 mg/kg of VK3) with twelve replicates per treatment and one sow per replicate according to parity. The experiment started on day 107 of gestation and lasted until day 21 of lactation (weaning). Results: We observed that there were no differences (p>0.05) in average daily feed intake, backfat loss of sows, live piglet number at birth and weaning, average birth weight, average weaning weight, and average daily gain of piglets between two treatments. The apparent total tract digestibility of phosphorus was increased (p<0.05) in VK sows compared with NC sows. The serum bone alkaline phosphatase, osteocalcin, type I procollagen amino-terminal peptide, and type I procollagen carboxyl-terminal peptide on day of farrowing were higher (p<0.05) in VK sows than in NC sows. The serum phosphorus, parathyroid hormone, tartrate-resistant acid phosphatase, and tumor necrosis factor-alpha on day of weaning were lower (p<0.05) in VK sows compared with NC sows. Conclusion: Therefore, the overall results suggested that increasing dietary VK3 (0.5 to 5 mg/kg) during lactation improved the apparent total tract digestibility of phosphorus and serum bone metabolism biochemical markers in sows.
Bacteriophage T7 gene 2.5 protein, a single-stranded DNA binding protein, has been implicated in T7 DNA replication, recombination, and repair. Purified gene 2.5 protein has been shown to interact with the phage encoded gene 5 protein (DNA polymerase) and gene 4 proteins (helicase and primase) and stimulates their activities. Genetic analysis of T7 phage defective in gene 2.5 shows that the gene 2.5 protein is essential for T7 DNA replication and growth. T7 phage that contain null mutants of gene 2.5 were constructed by homologous recombination. These mutant phage $(T7\Delta2.5)$ cannot grow in Escherichia coli. After infection of E. coli with $T7\Delta2.5$, host DNA synthesis is shut off, and $T7\Delta2.5$ DNA synthesis is reduced to less than $1\%$ of wild-type phage DNA synthesis (Kim and Richardson, 1993, Proc. Natl. Aca. Sci. USA, 90, 10173-10177). A truncated gene 2.5 protein $(GP2.5-\Delta21C)$ deleted the 21 carboxyl terminal amino acids was constructed by in vitro mutagenesis. $GP2.5-\Delta21C$ cannot substitute for wild-type gene 2.5 protein in vivo; the phage are not viable and exhibit less than $1\%$ of the DNA synthesis observed in wild-type phage-infected cells. $GP2.5-\Delta21C$ has been purified to apparent homogeneity from cells overexpressing its cloned gene. Purified $GP2.5-\Delta21C$ does not physically into「act with T1 gene 4 protein as measured by affinity chromatography and immunoblot analysis. The mutant protein cannot stimulate T7 gene 4 protein activity on RNA-primed DNA synthesis and primer synthesis. These results suggest that C-terminal domain of gene 2.5 protein is essential for protein-protein interactions.
Park, Sae-Young;Nelson, Thomas J.;Alkon, Daniel L.;Kim, Jeong-Ho
BMB Reports
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v.33
no.5
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pp.391-395
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2000
Calexcitin, a calcium-binding protein, was previously cloned and functionally characterized in the squid Loligo pealei. We now report the cloning of a second form of Calexcitin, Calexcitin-2, found in the squid Todarodes pacificus optic lobe. Calexcitin-2 has a significantly different carboxyl terminal region than Calexcitin-1. It lacks the CAAX motif, which is a farnesylation site. The amino acid sequence of Calexcitin-2 shows an 84% identity with Calexcitin-1 and also displays a strong cross immunoreactivity. Western blotting shows that Calexcitin-2 was expressed exclusively in the optic lobe region of squid, but not in other body organs. Regardless of its lack of conserved regions for GTP-binding, Calexcitin-2 shows moderately low affinity GTP-binding and also shows dramatic conformational change induced by GTP-binding. Three possible GTP-binding region mutations, K142A, D144A, and K157A, did not change the G TP binding affinity. This raises the possibility that Calexcitin-2 may have a novel GTP-binding motif.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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