The multifunctional triple gene block protein 1 (TGB1) of the Potexvirus Alternanthera mosaic virus (AltMV) has been reported to have silencing suppressor, cell-to-cell movement, and helicase functions. Yeast two hybrid screening using an Arabidopsis thaliana cDNA library with TGB1 as bait, and co-purification with TGB1 inclusion bodies identified several host proteins which interact with AltMV TGB1. Host protein interactions with TGB1 were confirmed by biomolecular fluorescence complementation, which showed positive TGB1 interaction with mitochondrial ATP synthase delta' chain subunit (ATP synthase delta'), light harvesting chlorophyll-protein complex I subunit A4 (LHCA4), chlorophyll a/b binding protein 1 (LHB1B2), chloroplast-localized IscA-like protein (ATCPISCA), and chloroplast ${\beta}$-ATPase. However, chloroplast ${\beta}$-ATPase interacts only with $TGB1_{L88}$, and not with weak silencing suppressor $TGB1_{L88}$. This selective interaction indicates that chloroplast ${\beta}$-ATPase is not required for AltMV movement and replication; however, TRV silencing of chloroplast ${\beta}$-ATPase in Nicotiana benthamiana induced severe tissue necrosis when plants were infected by AltMV $TGB1_{L88}$ but not AltMV $TGB1_{L88}$, suggesting that ${\beta}$-ATPase selectively responded to $TGB1_{L88}$ to induce defense responses.
Dehydroascorbate (DHA) reductase (DHAR, EC 1.8.5.1) catalyzes the reduction of DHA to reduced ascorbate (AsA) using glutathione (GSH) as the electron donor in order to maintain an appropriate level of ascorbate in plant cells. To analyze the physiological role of DHAR in environmental stress adaptation, we developed transgenic tobacco (Nicotiana tabacum cv. Xanthi) plants that express a human DHAR gene isolated from the human fetal liver cDNA library in the chloroplasts. We also investigated the DHAR activity, levels of ascorbate, and GSH. Two transgenic plants were successfully developed by Agrobacterium-mediated transformation and were confirmed by PCR and Southern blot analysis. DHAR activity and AsA content in mature leaves of transgenic plants were approximately 1.41 and 1.95 times higher than in the non-transgenic (NT) plants, respectively In addition, the content of oxidized glutathione (GSSG) in transgenic plants was approximately 2.95 times higher than in the NT plants. The ratios of AsA to DHA and GSSG to GSH were changed by overexpression of DHAR, as expected, even though the total content of ascorbate and glutathione was not significantly changed. When tobacco leaf discs were subjected to methyl viologen at $5\;{\mu}M$, $T_0$ transgenic plants showed about a 50% reduction in membrane damage compared to the NT plants.
Kim, H.H.;Seol, M.B.;Jeon, D.H.;Sun, S.S.;Kim, K.H.;Choi, Y.J.;Baik, M.G.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.14
no.12
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pp.1670-1674
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2001
To understand molecular mechanisms that regulate deposition and release of intramuscular fat, a fasting-induced clone was identified by differential screening from cDNA library of adipose tissues of Korean cattle. The clone had a total length of 1,319 nucleotides coding for 334 amino acids. It was identified as one encoding L-lactate dehydrogenase H chain (LDH-B). Comparison of the deduced amino acid sequences of bovine LDH-B with those of pig, human, rat, and mouse showed 98%, 98%, 97%, and 96% identity, respectively. Food deprivation for 48 h increased mRNA levels of LDH-B gene in adipose tissues of Korean cattle compared to fed- and 6 h refed- tissues. The expression of obese mRNA was examined for individual adipose tissue from several fat depots. Fasting induced expression of LDH-B gene in subcutaneous adipose tissues, but it did not affect expression levels in abdominal, perirenal and intramuscular tissues. Results demonstrate that induction of LDH-B gene during fasting may represent a metabolic shift from anaerobic state to aerobic predominance in fasted adipose tissues and that its responses to fasting are different among several adipose tissues.
Park, Eun-Mi;Nam, Bo-Hye;Kim, Young-Ok;Kong, Hee-Jeong;Kim, Woo-Jin;Lee, Sang-Jun;Kong, In-Soo;Choi, Tae-Jin
Fisheries and Aquatic Sciences
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v.10
no.3
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pp.119-126
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2007
The analysis of expressed sequence tags (ESTs) is an efficient approach for gene discovery, expression profiling, and the development of resources for functional genomics. To analyze the transcriptome of the abalone Haliotis discus hannai, we conducted EST analysis using seven cDNA libraries made from gill, gut, hepatopancreas, skin, muscle, testis, and ovary. Redundant ESTs were assembled into overlapping contiguous sequences using the assembly program ICAtools. We found that the total 1,393 ESTs formed 135 clusters and 951 singletons, indicating that the overall redundancy of the library was 22%. Of the 1,393 clones, BLAST identified 1,278 clones (91.7%) as known genes; 115 clones (8.3%) did not match any previously described gene. Based on the major functions of their encoded proteins, the identified clones were classified into 16 broad categories. Sequence analysis revealed the presence of micro satellite-containing genes that may be valuable for further gene mapping studies. This study contributes to the identification of numerous EST clones that can be applied to further clarifying the genetics and developmental biology of abalone.
Trichomoniasis is a sexually transmitted disease due to infection with Trichomonas vaginalis, and it can cause serious consequences for women's health. To study the virulence factors of this pathogen, T. vaginalis surface proteins were investigated using polyclonal antibodies specific to the membrane fractions of T. vaginalis. The T. vaginalis expression library was constructed by cloning the cDNA derived from mRNA of T. vaginalis into a phage ${\lambda}$ Uni-ZAP XR vector, and then used for immunoscreening with the anti-membrane proteins of T. vaginalis antibodies. The immunoreactive proteins identified included adhesion protein AP65-1, ${\alpha$-actinin, kinesin-associated protein, teneurin, and 2 independent hypothetical proteins. Immunofluorescence assays showed that AP65-1, one of the identified immunogenic clones, is prevalent in the whole body of T. vaginalis. This study led us to identify T. vaginalis proteins which may stimulate immune responses by human cells.
The nfa 1 gene was cloned from a cDNA library of pathogenic Naegleria fowleri by immunoscreening; it consisted of 360 bp and produced a 13.1 kDa recombinant protein (rNfa1) that showed the pseudopodia-specific localization by immunocytochemistry in the previous study. Based on the idea that the pseudopodia-specific Nfa1 protein mentioned above seems to be involved in the pathogenicity of N. fowleri, we observed the effect of an anti-Nfa1 antibody on the proliferation of N. fowleri trophozoites and the cytotoxicity of N. fowleri trophozoites on the target cells. The proliferation of N. fowleri trophozoites was inhibited after being treated with an anti-Nfa1 polycional antibody in a dose-dependent manner for 48 hrs. By a light microscope, CHO cells co-cultured with N. fowleri trophozoites (group I) for 48 hrs showed severe morphological destruction. On the contrary, CHO cells co-cultured with N. fowleri trophozoites and anti-Nfa1 polyclonal antibody (1:100 dilution) (group II) showed less destruction. In the LDH release assay results, group I showed 50.6% cytotoxicity, and group II showed 39.3%. Consequently, addition of an anti-Nfa1 polyclonal antibody produced a decreasing effect of in vitro cytotoxicity of N. fowleri in a dose-dependent manner.
Song, Ki-Hoon;Song, Dae-Hae;Lee, Jeong-Ran;Kim, Goon-Bo;Choi, Hong-Kyu;Penmetsa, R. Varma;Nam, Young-Woo
KOREAN JOURNAL OF CROP SCIENCE
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v.52
no.4
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pp.458-468
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2007
To tolerate environmentally adverse conditions such as cold, drought, and salinity, plants often synthesize and accumulate proline in cells as compatible osmolytes. ${\Delta}^1$-Pyrroline-5-carboxylate synthetase(P5CS) catalyzes the rate-limiting step of proline biosynthesis from glutamate. Two complete genes, MtP5CS1 and MtP5CS2, were isolated from the model legume Medicago truncatula by cDNA cloning and bacterial artificial chromosome library screening. Nucleotide sequence analysis showed that both genes consisted of 20 exons and 19 introns. Alignment of the predicted amino acid sequences revealed high similarities with P5CS proteins from other plant species. The two MtP5CS genes were expressed in response to high salt and low temperature treatments. Semi-quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction showed that MtP5CS1 was expressed earlier than MtP5CS2, indicating differential regulation of the two genes. To evaluate the reverse genetic effects of nucleotide changes on MtP5CS function, a Targeting Induced Local Lesions in Genomes approach was taken. Three mutants each were isolated for MtP5CS1 and MtP5CS2, of which a P5CS2 nonsense mutant carrying a codon change from arginine to stop was expected to bring translation to premature termination. These provide a valuable genetic resource with which to determine the function of the P5CS genes in environmental stress responses of legume crops.
Pleurotus eryngii has recently become a major cultivated mushroom; it uses tetrapolar heterothallism as a part of its reproductive process. Sexual development progresses only when the A and B mating types are compatible. Such mating incompatibility occasionally limits the efficiency of breeding programs in which crossing within loci-shared strains or backcrossing strategies are employed. Therefore, understanding the mating system in edible mushroom fungi will help provide a short cut in the development of new strains. We isolated and identified pheromone and receptor genes in the B3 locus of P. eryngii and performed a functional analysis of the genes in the mating process by transformation. A genomic DNA library was constructed to map the entire mating-type locus. The B3 locus was found to contain four pheromone precursor genes and four receptor genes. Remarkably, receptor PESTE3.3.1 has just 34 amino acid residues in its C-terminal cytoplasmic region; therefore, it seems likely to be a receptor-like gene. Real-time quantitative RT-PCR (real-time qRT-PCR) revealed that most pheromone and receptor genes showed significantly higher expression in monokaryotic cells than dikaryotic cells. The pheromone genes PEphb3.1 and PEphb3.3 and the receptor gene PESTE3.3.1 were transformed into P5 (A3B4). The transformants were mated with a tester strain (A4B4), and the progeny showed clamp connections and a normal fruiting body, which indicates the proposed role of these genes in mating and fruiting processes. This result also confirms that PESTE3.3.1 is a receptor gene. In this study, we identified pheromone and receptor genes in the B3 locus of P. eryngii and found that some of those genes appear to play a role in the mating and fruiting processes. These results might help elucidate the mechanism of fruiting differentiation and improve breeding efficiency.
The yeast gene THR1 encodes the homoserine kinase (EC 2.7.1.39: HKase) which catalyses the first step of the threonine specific arm at the end of the common pathway for methionine and threonine biosynthesis. A recombinant plasmid pMC3 (12.6 kilobase pairs, vector YCp50) has been cloned into E. coli HB101 from a yeast genomic library through its complementing activity of a thr1 mutation in a yeast recipient strain M39-1D. When subcloned into pMC32 (8.6kbp, vector YRp7) and pMC35 (8.3 kbp, vector YIp5), the HindIII fragment (2.7 kbp) of pMC3 insery was positive in the thrI complementing activity in both yeast and E. coli auxotrophic strains. The linearized pMC35 was introduced into the original recipient yeast strain and the mitotically stable chromosomal integrant was identified among the transformants. Through the tetrad analysis, the integration site of the pMC35 was localized to the region of THR1 structural gene at an expected genetic distance of approximately 11.1 cM from the ARG4 locus on the right arm of the yeast chromosome VIII. When episomically introduced into the auxotrophic cells and cultured in Thr omission liquid medium, the cloned gene overexpressed the HKase in the order of thirteen to fifteenfold, as compared with a wildtype. HKase levels are repressed by addition of threonine at the amount of 300 mg/l and 1, 190 mg/l for pMC32 and pMC3, respectively. Data from genetic analysis and HKase response thus support that the cloned HindIII yeast DNA fragment contains the yeast thr1 structural gene, along with necessary regulatory components for control of its proper expression.
Rodent malaria parasites, such as Plasmodium berghei, are practical and useful model organisms for human malaria research because of their analogies to the human malaria in terms of structure, physiology, and life cycle. Exploiting the available genetic sequence information, we constructed a cDNA library from the erythrocytic stages of P. berghei and analyzed the expressed sequence tag (EST). A total of 10,040 ESTs were generated and assembled into 2,462 clusters. These EST clusters were compared against public protein databases and 48 putative new transcripts, most of which were hypothetical proteins with unknown function, were identified. Genes encoding ribosomal or membrane proteins and purine nucleotide phosphorylases were highly abundant clusters in P. berghei. Protein domain analyses and the Gene Ontology functional categorization revealed translation/protein folding, metabolism, protein degradation, and multiple family of variant antigens to be mainly prevalent. The presently-collected ESTs and its bioinformatic analysis will be useful resources to identify for drug target and vaccine candidates and validate gene predictions of P. berghei.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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