In the field Of individual identification in forensic Science, if the body is charred, it is sometimes impossible to identify the morphologic changes and charred tissue such as blood, muscle and bone can not be identified by forensic microbiologic method such as DNA typing. So the author used the characteristics of teeth which is relatively firm compare to other organs and stable to external environment such as heat and also possess cells needed for the DNA typing. The author conducted the experiment on teeth to detect DNA related to individual identification regarding to temperature in which other charredorgans can not be detected. The experiment was done on 64 extracted third molars consisted of unheated ones, and heated teeth to $100^{\circ}C$, $150^{\circ}C$, $200^{\circ}C$ for 45 min, 90 min, and 120 min respectively and to $250^{\circ}C$ for 45 min. DNA was extracted from each tooth and amplified fragment length polymorphism procedure(AMP-FLPs) using polymerase chain reaction(PCR) was applied and observed for the matching DNA in HumTH01 and HumCD4 locus and the followings Are the results : 1. It was able to detect matching DNA in HumTH01 and HumCD4 locus in every teeth which no heating has been done. 2. It was able to detect matching DNA in HumTH01 and HumCD4 locus in every teeth heated to $100^{\circ}C$ for 45, 90 and 120 min. 3. It was able to detect matching DNA in HumTH01 and HumCD4 locus in teeth heated to $l00^{\circ}C$, $200^{\circ}C$ for 45, 90, 120 min. 4. It was impossible to detect matching DNA in HumTH01 and HumCD4 locus in teeth heated to $250^{\circ}C$. So, it is possible to extract DNA from teeth that otherwise can not be extracted from other organs in the charred body and it can be concluded that teeth are highly reliable and applicatable as forensic odontology for individual identification.
DNA damage responses are important for the maintenance of genome stability and the survival of organisms. Such responses are activated in the presence of DNA damage and lead to cell cycle arrest, apoptosis, and DNA repair. In Caenorhabditis elegans, double-strand breaks induced by DNA damaging agents have been detected indirectly by antibodies against DSB recognizing proteins. In this study we used a comet assay to detect DNA strand breaks and to measure the elimination of DNA strand breaks in mitotic germline nuclei of C. elegans. We found that C. elegans brc-1 mutants were more sensitive to ionizing radiation and camptothecin than the N2 wild-type strain and repaired DNA strand breaks less efficiently than N2. This study is the first demonstration of direct measurement of DNA strand breaks in mitotic germline nuclei of C. elegans. This newly developed assay can be applied to detect DNA strand breaks in different C. elegans mutants that are sensitive to DNA damaging agents.
DNA methylation at cytosines (5mC) is a major epigenetic modification involved in the regulation of multiple biological processes in mammals. How methylation is reversed was until recently poorly understood. The family of dioxygenases commonly known as Ten-eleven translocation (Tet) proteins are responsible for the oxidation of 5mC into three new forms, 5-hydroxymethylcytosine (5hmC), 5-formylcytosine (5fC) and 5-carboxylcytosine (5caC). Current models link Tet-mediated 5mC oxidation with active DNA demethylation. The higher oxidation products (5fC and 5caC) are recognized and excised by the DNA glycosylase TDG via the base excision repair pathway. Like DNA methyltransferases, Tet enzymes are important for embryonic development. We will examine the mechanism and biological significance of Tet-mediated 5mC oxidation in the context of pronuclear DNA demethylation in mouse early embryos. In contrast to its role in active demethylation in the germ cells and early embryo, a number of lines of evidence suggest that the intragenic 5hmC present in brain may act as a stable mark instead. This short review explores mechanistic aspects of TET oxidation activity, the impact Tet enzymes have on epigenome organization and their contribution to the regulation of early embryonic and neuronal development.
The human liver cDNA clone UDPGTh2, encoding a liver UDP-glucuronosyltransferase (UDPGT) was isolated from a .gamma. gt 11 cDNA library by hybridization to mouse transferase cDNA clone, UDPGTm1. UDPGTh2 encoded a 529 amino acid protein with an amino terminus membrane-insertion signal peptide and a carboxyl terminus membrane-spanning region. There were three potential asparagine-linked glycosylation sites at residues 67, 68, and 315. In order to obtain UDPGTh2 protein encoded from cloned human liver UDP-glucuronosyltransferase cDNA, the clone was inserted into the pSVL vector (pUDPGTh2) and expressed in COS 1 cells. The presence of a transferase with Mr-52,000 in transfected cells cultured in the presence of $[^{35}S]$ methionine was shown by immunocomplexed products with goat antimouse transferase IgG and protein A-Sepharose and analysis by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and autoradiography. The expressed UDPGT was a glycoprotein as indicated by electrophoretic mobility shift in Mr-3,000-4,000 when expressed in the presence of tunicamycin. The extent of glycosylation was difficult to assess, although one could assume that glycosyl structures incorporated at the level of endoplasmic reticulum were always the core oligosaccharides. Thus, it is likely that at least two moieties inserted can account for the shift of Mr-3,000-4,000. This study demonstrates the cDNA and deduced amino acid sequence of human liver UDP-glucuronosyltransferase cDNA, UDPGTh2.
Chrysanthemum stunt viroid (CSVd), a noncoding infectious RNA molecule, causes seriously economic losses of chrysanthemum for 3 or 4 years after its first infection. Monomeric cDNA clones of CSVd isolate SK1 (CSVd-SK1) were constructed in the plasmids pGEM-T easy vector and pUC19 vector. Linear positive-sense transcripts synthesized in vitro from the full-length monomeric cDNA clones of CSVd-SK1 could infect systemically tomato seedlings and chrysanthemum plants, suggesting that the linear CSVd RNA transcribed from the cDNA clones could be replicated as efficiently as circular CSVd in host species. However, direct inoculation of plasmid cDNA clones containing full-length monomeric cDNA of CSVd-SK1 failed to infect tomato and chrysanthemum and linear negative-sense transcripts from the plasmid DNAs were not infectious in the two plant species. The cDNA sequences of progeny viroid in systemically infected tomato and chrysanthemum showed a few substitutions at a specific nucleotide position, but there were no deletions and insertions in the sequences of the CSVd progeny from tomato and chrysanthemum plants.
These experiments were carried out to construct mouse testis cDNA library and to to seen H-Y Ag gene. Mouse testis was obtained from BALB/c inbreed mouse that was after-born 1 week. Isolation of mouse testis total RNA was carried out by guanidum/cesium choloride, poly(A+) mRNAs were purified by oligo d(T)-cellulose chromatography method. To investigate protein synthesis activity, in-vitro translation carried out by total RNA and poly(A+) mRNA. The products of in-vitro translation were identified in 12.5% PAGE. Single strand DNA and double strand DNA were synthesized from poly(A+) mRNA and purified using phenol/chloroform/isoamylalcohol. Synthesized cDNA was combined with cohesive Eco RI polylinker, its recombination efficiencies were identified by X-gal and IPTG. In the cDNA library, 1$\times$107 phagemids were screened with 32P labelled probe. Hybridization were carried on $65^{\circ}C$ for 16~20hours. And 1$\times$106 phagemids were screened with rabbit-anti-H-Y. In former, select 5 positive clones, and later, 1 positive clone. Its southern blot analysis showed various size of insert cDNA from 0.7kb to 3kb.
C. sinensis total RMh was containing large amount of 185 rRNA but little 285 rRNA. The size of the double-stranded cDNA synthesized from poly $(A)^{+}$ mRNA was 0.4-4.2 kb long with tapering unto 9.5 kb. Degenerated oligonucleotides (as 2 sense and 3 antisense Primers) were designed on the conserved regions of the known tropomyosin amino acid sequences. From one out of the PCR amplifications using total CDNA and matrix of primers, a specific gene product, 580 bp in size, was produced. Upon Southern hybridization of the PCR products with Schistosomn mnnsoni tropomyosin (SMTM) CDNA, only one signal appeared at the band of 580 bp product. This 580 bp product was considered to encode C. sinensis tropomyosin (CSTM) and cloned in pGEM-3Zf(-) for DNA sequencing. CSTM cDNA was 575 bp containing one open reading frame of 191 predicted amino acids, which revealed 86.3% homology with SMTM and 51.1% with rrichostronsylur coeubnlormis tropomyosin. CSTM cDNA obtained will serve as a probe in the studies of molecular cloning of CSTM.
${\gamma}-Tocopherol$ methyltransferase (TMT) is an enzyme catalyzing ${\gamma}-tocopherol$ into ${\alpha}-tocopherol$ at the final step of ${\alpha}-tocopherol$ synthesis pathway. Putative TMT cDNA clone specific to Perilla frutescens immature seeds was isolated from cDNA library. The cDNA clone consisted of 1369 bp open reading frame encoding 369 amino acids with a relative Mw of 42 kDa. Results revealed the CDNA has 60% homology to Arabidopsis thaliana TMT, and possesses methyltransferase and S-adenosyl methionine-binding domains, suggesting that cDNA encodes a ${\gamma}-tocopherol$ methyltransferase To characterize the properties of the TMT gene, the cDNA sequences coding for mature TMT were expressed in E. coli and assayed to determine the enzyme activity in vitro.
Mixed primers based on the high sequence homology of selected regions of known connexins (Cxs) was used for PCR reaction. A full-length connexin cDNA of sweetfish (Plecoglossus altivelis) was cloned by rapid amplification of cDNA 5'and (5'RACE) and 3'RACE method. When compared to other known Cx sequences, homology of sweetfish Cx cDNA to Atlantic croaker, Mycropogonias undulatus Cx32.7, bovine, Bos taurus Cx44 and Atlantic croaker Cx32.2 were $63.8{\%},\;61.6{\%}\;and\;56.7{\%}$, respectively. This cDNA encoded 308 amino acids (35,028 dalton) and named as sweetfish Cx35. Hydropathicity analysis of predicted amino acid sequences indicated that sweetfish Cx35 have four major hydrophobic regions and four major hydrophilic regions, suggesting its topology is similar to that of known Cxs. The presence of a tfical Cx consensus sequences were identified in each of the extracellular loops (first loop and second loop).
A cDNA encoding desiccation-related protein was isolated from a flower bud cDNA library of Chinese cabbage (C-DH) and its nucleotide sequence was characterized. It contains 679 bp nucleotides with 501 bp open reading frame. The amino acid sequence of the putative protein showed the highest amino acid sequence homology (79 % identity) to dehydrin protein in Gossypium hirsutum. Also, the C-DH shares 48-52% amino acid sequence identity with the other typical dehydrin proteins in plant cells. When the amino acid sequence of their proteins were aligned, several peptide motifs were well conserved, of which function has to be solved. Particularly the C-DH contains 15 additional amino acids at its N-terminus. Genomic Southern blot analysis using the coding region of C-DH showed that the C-DH consists of a single copy gene in Chinese cabbage genome. The C-DH mRNA, whose transcript size is 0.7 kb, was expressed with a tissue-specific manner. It was highly expressed in seed, flower buds and low expression as detected in root, stem or leaf tissues of Chinese cabbage. And the transcript level of C-DH was significantly induced by the treatment of plant hormone, abscisic acid and water-deficit conditions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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