Objective: The purpose of this study was to use a mouse model to investigate the blastocyst formation rate in vitrified-warmed embryos derived from vitrified-warmed oocytes. Methods: Metaphase II oocytes obtained from BDF1 mice were vitrified and warmed, followed by fertilization with epididymal sperm. On day 3, a total of 176 embryos, at either the eight-cell or the morula stage, were vitrified-warmed (representing group 1). For group 2, 155 embryos at the same developmental stages were not vitrified, but rather were directly cultured until day 5. Finally, group 3 included day-5 blastocysts derived from fresh oocytes, which served as fresh controls. The primary outcome measured was the rate of blastocyst formation per day-3 embryo at the eight-cell or morula stage. Results: The rates of blastocyst formation per day-3 embryo were comparable between groups 1 and 2, at 64.5% and 69.7%, respectively (p>0.05). The formation rates of good-quality blastocysts (expanded, hatching, or hatched) were also similar for groups 1 and 2, at 35.5% and 43.2%, respectively (p>0.05). For the fresh oocytes (group 3), the blastocyst formation rate was 75.5%, which was similar to groups 1 and 2. However, the rate of good-quality blastocyst formation in group 3 was 57.3%, significantly exceeding those of group 1 (p=0.001) and group 2 (p=0.023). Conclusion: Regarding developmental potential to the blastocyst stage, vitrified-warmed day-3 embryos originating from vitrified-warmed oocytes demonstrated comparable results to non-vitrified embryos from similar oocytes. These findings indicate that day-3 embryos derived from vitrified-warmed oocytes can be effectively cryopreserved without incurring cellular damage.
The aim of this study was to investigate the effects of donor cell passage, size and type on the development of nuclear transfer embryos. Porcine cumulus cells, fetal fibroblasts and oviductal epithelial cells from 1-2, 3-6 and 7-10 passages were used for the nuclear transfer. In the oocytes with the cumulus donor cells, fusion and cleavage rates of oocytes and cell numbers per blastocyst among the three different passage groups did not show any differences, but the rates of blastocyst formation from 1-2 and 3-6 passage groups were higher than those from 7-10 passage group. The rates of fusion, cleavage and blastocyst formation, and the cell numbers per blastocyst were higher in the embryos with the sizes of <20 and 20 ${\mu}m$ cumulus donor cells compared to the >20 ${\mu}m$ cumulus donor cell. In the oocytes with the fetal fibroblast donor cells, the rate of blastocyst formation from the 3-6 passage group was higher than from 1-2 and 7-10 passage groups. The embryos with the size of 20 $\mu{m}$ fetal fibroblast donor cell showed higher rate of blastocyst formation compared to those with <20 and >20 ${\mu}m$ donor cells. In the oocytes with the oviductal epithelial cells, the rates of blastocyst formation from 1-2 and 3-6 passage groups were higher compared to those from 7-10 passage group. The embryos with the sizes of <20 and 20 ${\mu}m$ oviductal epithelial donor cells had a higher rate of blastocyst formation compared to those with >20 ${\mu}m$ donor cell. Fusion and cleavage rates of oocytes, and cell numbers per blastocyst among the three different donor cell types from the 3-6 passage did not show any differences. However, the rate of blastocyst formation of somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos with the fetal fibroblast donor cell was higher than that of blastocyst formation of SCNT embryos with the cumulus and oviductal epithelial donor cells.
To determine the effect of calcium on the preimplantational development of mouse two-cell embryo, the various concentrations of calcium were added into the culture media and the rate of blastocyst formation was observed. Also, to examine the effect of trifluoperazine, an inhibitor of calmodulin which is involved in the several intracellular calcium functions, embryos were cultured for 48 hours at the various concentrations of this inhibitor. An additional 24 hour culture was done to examine the effect of this drug on the transformation from morula to blastocyst. The results are as following ; 1. About 1.71mM of extracellular calcium is adequate for blastocyst formation and the higher concentrations of calcium (3.43mM and 8.55mM) do not affect on the blastocyst formation and the degenerating rate. 2. Trifluoperazine $100{\mu}M$ presents the inhibitory effect on the blastocyst formation while $1{\mu}M$ and $10{\mu}M$ do not so. 3. After an additional 24 hour culture, there is transformation of morula to blastocyst and the degenerating rate of embryo is increased all together.
The aim of this study was to compare the effects of oviductal fluid, porcine zygote medium (PZM)-3, PZM-4 and PZM-5, and modified PZM-5 culture media, and determine the effects of zona pellucida (ZP) removal on the development of nuclear transfer (NT) embryos. There were no significant differences in the rates of fusion and cleavage among the five different oviductal fluid concentrations. However, the rates of blastocyst formation and the cell numbers per blastocyst were high in the embryos at the 14 and 28 $\mu{g}$/ml concentrations of oviductal fluid compared to the 0, 56 and 100 $\mu{g}$/ml concentrations. The rates of cleavage and blastocyst formation, and the cell numbers per blastocyst were higher in the PZM-3, PZM-5 and modified PZM-5 media than in the PZM-4 medium. However, there were no significant differences in the fusion rates of oocytes among the four culture media. The cell numbers per blastocyst in the embryos without ZP were significantly greater than those with ZP. However, there were no significant differences in the rates of fusion, cleavage and blastocyst formation between the embryos with and without ZP. In conclusion, we improved blastocyst development and the quality of NT embryos by replacing PVA with 3 mg/ml of BSA in PZM-5 medium and supplementing the PZM-5 medium with 14 $\mu{g}$/ml oviductal fluid. The NT embryos produced by the zona-free NT method had a high rate of blastocyst formation in the modified PZM-5 medium.
Objective: The aim of this study was to explore the effects of the insemination method on the outcomes of elective blastocyst culture. Methods: We retrospectively analyzed the outcomes of elective blastocyst culture performed between January 2011 and December 2014. Results: There were 2,003 cycles of conventional in vitro fertilization (IVF) and 336 cycles of intracytoplasmic sperm injection (ICSI), including 25,652 and 4,164 embryos that underwent sequential blastocyst culture, respectively. No significant differences were found in the female patients' age, basal follicle-stimulating hormone level, basal luteinizing hormone level, body mass index, number of oocytes, maturity rate, fertilization rate, or good-quality embryo rate. However, the blastocyst formation rate and embryo utilization rate were significantly higher in the conventional IVF group than in the ICSI group (54.70% vs. 50.94% and 51.09% vs. 47.65%, respectively, p<0.05). The implantation/pregnancy rate (IVF, 50.93%; ICSI, 55.10%), miscarriage rate (IVF, 12.57%; ICSI, 16.29%), and live birth rate (IVF, 42.12%; ICSI, 44.08%) were similar (p>0.05). No cycles were canceled due to the formation of no usable blastocysts. Conclusion: Although the fertilization method had no effect on clinical outcomes, the blastocyst formation rate and embryo utilization rate in the ICSI group were significantly lower than those observed in the conventional IVF group. Therefore, more care should be taken when choosing to perform blastocyst culture in ICSI patients.
This study was carried out to investigate the optimal activation condition for parthenogenetic development. In order to activate oocytes at 24 hrs post onset of maturation, the oocytes were cultured 3 - 13 μM Ca for 5 min., 5-8 ㎍/㎖ cytoclacin(CH) for 6 hrs, 0.5-2.0 mM 6-dimethylaminopurine(DMAP) for 3 hrs alone or combination. The activated oocytes were cultured in TCM-199 media at 5% CO₂, 95% N₂, 38℃. 1. The cleavage rate after 48 hrs culture of oocytes treated with 3-13 μM Ca for 5 min. were 9.6%-20.0% and 3.8-7.3%, respectively. When oocyte were treated with 10 μM Ca, the blastocyst formation rate was significantly higher than other group. 2. The cleavage rate after 48 hrs culture of oocytes treated with 5-8 ㎍/㎖ cytoclacin(CH) for 6 hrs, were 9.4%-21.8% and 0.0-7.3%, respectively. When oocyte were treated with 10㎍/㎖ CH, the blastocyst formation rate was significantly higher than other group. 3. The cleavage rate after 48 hrs culture of oocytes treated with 0.5-2.0 mM 6-dimethylaminopurine(DMAP) for 3 hrs were 9.1%-21.8% and 0.0-7.3%, respectively. When oocyte were treated with 2.0mM DMAP, the blastocyst formation rate was significantly higher than other group. 4. The cleavage rate after 48 hrs culture of oocytes treated with Ca+CH, Ca+DMAP, CH+DMAP were 75.9%-93.5% and 9.7 -13.3%, respectively. When oocytes were treated with Ca followed by DMAP, the blastocyst formation rate was significantly higher than other group(p〈0.05). 5. When necleus transferred embryos co-cultured with BSA, EGF and CS, the developmental rate to blastocyst were higher than control group.
Cell adhesion plays an important role in the differentiation of the morphogenesis and the trophectoderm epithelium of the blastocyst. In the porcine embryo, CDH1 mediated adhesion initiates at compaction before blastocyst formation, regulated post-translationally via protein kinase C and other signaling molecules. Here we focus on muscle RAS oncogene homolog (M-RAS), which is the closest relative to the RAS related proteins and shares most regulatory and effector interactions. To characterize the effects of M-RAS on embryo compaction, we used gain- and loss-of-function strategies in porcine embryos, in which M-RAS gene structure and protein sequence are conserved. We showed that knockdown of M-RAS in zygotes reduced embryo development abilities and CDH1 expression. Moreover, the phosphorylation of ERK was also decreased in M-RAS KD embryos. Overexpression of M-RAS allows M-RAS KD embryos to rescue the embryo compaction and blastocyst formation. Collectively, these results highlight novel conserved and multiple effects of M-RAS during porcine embryo development.
Park S. B.;Park K S.;Lee T. H.;Chun S. S.;Kim K S.;Song H. B.
Reproductive and Developmental Biology
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제28권4호
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pp.227-233
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2004
This study was conducted to investigate the effect of various addition and exclusion time of glucose (Control: no addition, A: 24~72 h, B: 24~48 h, C: 48~72 h, D: 0~72 h, E: 0~48 h, F: 0~24 h and 48~72 h, G: 0~24 h) on embryonic developmental capacity of 2-cell embryos in mice. Developed blastocysts were assessed for mean cell number by differential staining. The zona-intact blastocyst (ZiB) rates were higher (p<0.05) in group B than control. However, the zona-escape blastocyst (ZeB) rates were not significantly different in all groups. At 72 h, total blastocyst (ZiB + ZeB) formation rates were not significantly different in all groups. The mean cell number was not significantly different among all groups. The inner cell mass (ICM) cell number was higher (p<0.05) in group F than control, group A, B and G. The trophectoderm (TE) cell number was higher (p<0.05) in control than group A and D. The %ICM was higher (p<0.05) in group C, D and F than control. The ICM : TE ratio was not significantly different in all groups. Between control and glucose group, no significant difference was observed in the total blastocysts (ZiB + ZeB) formation rates. Also, no significant difference was observed in the mean cell number, ICM cell number and ICM : TE ratio. However the TE cell number was higher (p<0.05) in control than glucose group and %ICM was higher (p<0.05) in glucose group than control. In conclusion, glucose added in culture medium was not inhibitory on blastocyst formation but glucose added for 48 ~72 h in culture medium increases %ICM of blastocysts in mice.
These studies were conducted to investigate the microbe control effect of antibiotics treatment in all media used for in vitro fertilization(IVF) embryo production. The bovine oocytes were recovered from follicles(2~5mm) and were cultrued for 22hrs at 38.5$^{\circ}C$ with 5% CO2 incubator. The contamination and development rate in vitro fertilized oocyte was evaluated everyday. The results were summerized as follow ; 1. Control, antibiotic-antimycotic solution(AAS, Gibco) 1%+gentamycin, and AAS 1%+kanamycin(Sigma, USA) treatment was contaminated with 72hrs. However Baytril and Kanamycin(Korea) added was not contaminated. 2. The blastocyst formation rate in Baytril supplementated 1, 2 and 3${mu}ell$/ml was 3.73, 1.28 and 0.00%, respectively. 3. The blastocyst formation in kanamycin added concentration of 50, 75 and 100$\mu\textrm{g}$/ml was 13.0, 9.4 and 3.49%, respectively.
Lee, Young Seok;Park, Min Jung;Park, Sea Hee;Koo, Ja Seong;Moon, Hwa Sook;Joo, Bo Sun
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제42권2호
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pp.51-57
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2015
Objective: This study aimed to examine the effect of laser-assisted zona thinning (LAZT) at one or four-points on the blastocyst formation and hatching process in mice with respect to female age. Methods: Eight-cell or morula embryos collected from superovulated C57BL female mice with different ages (6-11 and 28-31 weeks) were treated with LAZT at one-point (LAZT1) or four-points (LAZT4). The zona pellucida was thinned to more than 70% of its initial thickness by making two holes of $15-20{\mu}m$. Results: In the young mice, LAZT resulted in a significant increase in early hatching and hatching rates compared to the control group (p<0.05). However, in the old mice, LAZT significantly increased blastocyst formation as well as early hatching and hatching compared to the controls (p<0.05). These effects were more remarkable in LAZT4 than in LAZT1 and in aged mice than in young ones. Conclusion: These results show that multi-point LAZT leads to a significant improvement of blastocyst formation and hatching in mice compared to controls.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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