Fragment molecular orbital (FMO) method provides a novel tool for ab initio calculations of large biomolecules. This method overcomes the size limitation difficulties in conventional molecular orbital methods and has several advantages compared to classical force field approaches. While there are many features in this method, we here focus on explaining the issues related to protein-ligand binding: FMO method provides useful interaction-analysis tools such as IFIE, CAFI and FILM. FMO calculations can provide not only binding energies, which are well correlated with experimental binding affinity, but also QSAR descriptors. In addition, FMO-derived charges improve the descriptions of electrostatic properties and the correlations between docking scores and experimental binding affinities. These calculations can be performed by the ABINIT-MPX program and the calculation results can be visualized by its proper BioStation Viewer. The acceleration of FMO calculations on various computer facilities is ongoing, and we are also developing methods to deal with cytochrome P450, which belongs to the family of drug metabolic enzymes.
The binding of cethyl trimethylammonium bromide, (CTAB) with human serum albumin (HSA) has been investigated at 5 mM phosphate buffer pH 7.0, 27 $^{\circ}C$ and various ionic strength using ion selective membrane electrodes. This method is faster and much more accurate than equilibrium dialysis technique, so provides sufficient and accurate data for binding data analysis. A novel and simple method was introduced for resolution and characterization of binding sets on basis of binding capacity concept. The values of Hill binding parameters were estimated for each set and used for calculation of intrinsic binding affinity. The results interpreted on basis of nature of forces which interfered in the interaction and represent the existence of three and two binding sets for binding of CTAB at $10^{-4}$ and $10^{-3}$ M of NaBr, respectively.
Binding of sulfaethidole to bovine serum albumin was studied by equilibrium dialysis, fluorescence probe technique, uv difference spectrophotometry and circular dichroism. Equilibrium dialysis method enabled us to estimate the total number of drug binding sites of albumin molecule. For sulfaethidole, albumin had 6 primary and 40 secondary binding sites. The primary and secondary binding constants were 0.9 * 10/sup 5/ M/sup -1/ and 0.2 * 10/sup 6/ M/sup -1/, respectivitely. 1-Anilino-8-naphthalenesulfonate (ANS) and 2-(4-hydroxylbenzeneazo)- benzoic acid (HBAB) were used as the fluorescence probe and the uv spectrophotometric probe, respectively. In fluorescence probe technique, results indicated that the number of higher affinity drug binding site of albumin was 1 and the number of lower affinity drug binding sites of albumin was 3, and the primary and secondary drug binding constants for bovine serum albumin were 2.15 * 10/sup 5/M/sup -1/ and 1.04 * 10/sup 5/ M/sup -1/, respectively. In uv difference spectrophotometry, binding sites were 3 and binding constant was 1.88 * 10/sup 5/M/sup -1/. The above spectrophotometry, binding sites were 3 and binding constant was 1.88 * 10/sup 5/M/sup -1/. The above results suggest that several different methods should be used in ompensation for insufficient information about drug binding to albumin molecule given by only one method.
Treponema denticola is a gram-negative anaerobe that can cause periodontal disease. The adhesion of this bacterium to host tissues is considered to be the primary event in the colonization and infection of a host. Fibrinogen is generally found in damaged tissues resulting from periodontitis. The binding ability of T. denticola to fibrinogen may therefore be an important virulence factor in inducing periodontal diseases. It has been reported recently that oral spirochetes can be labeled with fluorescent fatty acids and we speculated that this labeling method could be used in an oral spirochete binding assay. The binding of several different strains of T. denticola to immobilized human fibrinogen was therefore tested using the fluorescent fatty acid labeling method. In the case of immobilized fibrinogen, the T. denticola ATCC 35405 strain showed saturable binding to immobilized fibrinogen. Indeed, all four different T. denticola strains tested in this experiment, T. denticola ATCC 35405, T. denticola ATCC 33520, T. denticola ATCC 35404 and T. denticola OTK showed binding to fibrinogen. The fluorescent fatty acid labeling method thus shows utility in binding assays for T. denticola, different strains of which can generally bind to immobilized fibrinogen.
THEMATICS is a simple computational method for predicting functional sites in proteins. The method computes the theoretical titration curves of the ionizable residues of a protein using its 3D structure, determines the residues with perturbed, non-Henderson-Hasselbalch titration behavior, and identifies clusters of these perturbed residues in physical proximity. We have shown previously that this method is highly successful in predicting catalytic sites in enzymes. In the present study, we apply the method to non-catalytic ligand-binding proteins. It is shown that THEMATICS can predict non-catalytic binding sites. The success rate is better than 80 % for a set of 30 non-catalytic, ligand-binding proteins. The application of the method to Glutamine-binding protein from E. coli is discussed in detail.
The binding energy in the n-type $GaAs/Al_xGa_{1-x}As$ quantum well is calculated. The shooting method, modified from the finite difference method, is used for the calculation of the subband energy level and its wave function. In order to account tot the change of the potential energy due to the charged particles, impurities and electrons, the self consistent method is employed. The wave function used for the calculation of the binding energy is assumed to be composed of the envelope function and hydrogenic 1s function. Then, the binding energies calculated by taking into account lot two different types of the hydrogenic 1s function are compared.
Aleurone layers of normal and vp1 mutant maize kernels were extracted and centrifuged at 100,000g to yield a cytosol fraction. Binding of [3H]ABA cis, trans (+)ABA to a soluble macromolecular components present in the cytosol was demonstrated by Sephadex chromatography and non-denaturing PAGE. The binding component was of high molecular weight and seems to be an aggregate of proteins. A rapid DEAE-cellulose filter method for assaying bound [3H]ABA to a soluble protein was adapted. Binding assays were performed with cytosol that had been preheated or incubated with several enzymes, indicating that heat and protease treatments disrupted the binding. This suggested that binding occurred to proteins. Some properties of the ABA binding proteins were described. The [3H]ABA binding were reduced dramatically when unlabeled ABA was added as a competitor, suggesting a specific binding of [3H]ABA. Gel filtration profiles and autoradiogram of [3H]ABA binding showed no difference in the binding components of Vp1 and vp1/vp1 mutant cytosol, indicating that Vp1 protein is not a sole ABA binding protein.
Based on plasmid display technology by the complexes of fusion protein and the encoding plasmid DNA, an in vitro selection method for high affinity DNA-binding protein was developed and experimentally demonstrated. The GAL4 DNA-binding domain (GAL4 DBD) was selected as a model DNA-binding protein, and enhanced green fluorescent protein (EGFP) was used as an expression reporter for the selection of target proteins. Error prone PCR was conducted to construct a mutant library of the model. Based on the affinity decrease with increased salt concentration, mutants of GAL4 DBD having high affinity were selected from the mutant protein library of protein-encoding plasmid complex by this method. Two mutants of (Lys33Glu, Arg123Lys, Ile127Lys) and (Ser47Pro, Ser85Pro) having high affinity were obtained from the first generation mutants. This method can be used for rapid in vitro selection of high affinity DNA-binding proteins, and has high potential for the screening of high affinity DNA-binding proteins in a sequence-specific manner.
The C-terminal starch-binding domain of Bacillus cereus $\beta$-amylase expressed in Escherichia coli was purified and crystallized using the vapor diffusion method. The crystals obtained belong to a space group of $P3_2$ 21 with cell dimensions, a=b=60.20${\AA},\; c=64.92{\AA},\; and \; \gamma = 120^{\circ}$ The structure was determined by the molecular replacement method and refined at 1.95 ${\AA}$, with R-factors of 0.181. The final model of the starch-binding domain comprised 99 amino acid residues and 108 water molecules. The starch-binding domain had a secondary structure of two 4-stranded antiparallel p-sheets similar to domain E of cyclodextrin glucanotransferase and the C-terminal starch-binding domain of glucoamylase. A comparison of the structures of these starch-binding domains revealed that the separated starch-binding domain of Bacillus cereus $\beta-Amylase$had only one starch-binding site (site 1) in contrast to two sites (site 1 and site 2) reported in the domains of cyclodextrin glucanotransferase and glucoamylase.
Grb2, which is composed of a Src homology 2 (SH2) domain and two Src homology 3 (SH3) domains, is known to serve as an adaptor protein in signaling for Ras activation. Thus, a blocker of the Grb2 interactions with other proteins can be a potential candidate for an anticancer drug. In this study, we have developed a high throughput screening method for SH3 domain binding ligands and blockers. Firstly, we made and purified the glutathione S-transferase (GST)-fusion proteins with the Grb2 SH2 and SH3 domains, and the entire Grb2. This method measures the binding of a biotin-labeled oligopeptide, derived from a Grb2/SH3 binding motif in the hSos, to the GST-fusion proteins, which are precoated as glutathione S-transferase fusion protein on a solid phase. When $1\;{\mu}g$ of each fusion protein was used to coat the wells, both N- and C- terminal SH3 the domains as well as the whole of Grb2 were able to interact with the biotin-conjugated ligand peptide, while the SH2 domain and GST alone showed no binding affinity. Although N- and C- terminal SH3 domains showed an increase of binding to the ligand peptide in proportion to the amount of peptide, the GST fusion protein with Grb2 demonstrated much higher binding affinity. GST-Grb2 coating on the solid phase showed a saturation curve; 66 and 84% of the maximal binding was observed at 100 and 300 ng/$100\;{\mu}l$, respectively. This binding assay system was peptide sequence-specific, showing a dose-dependent inhibition with the unlabeled peptide of SH3 binding motif. Several other peptides, such as SH2 domain binding motifs and PTB domain binding motif, were ineffective to inhibit the binding to the biotin-conjugated ligand peptide. These results suggest that our method may be useful to screen for new anticancer drug candidates which can block the signaling pathways mediated by SH3 domain binding.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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