Gyaneshwar, P.;Reddy, Pallavolu M.;Ladha, Jagdish K.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.10
no.5
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pp.694-699
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2000
Serratia marcescens IRBG500 and Herbaspirillum seropedicae Z67 grow endophytically in rice. The ability of these bacteria to colonize rice grown under increased nutrient availability was assessed in variety IR72 using strains marked with transposon-based gusA. The endophytic colonization was monitored via bacterial enumeration and histochemical visualization of GUS expression of bacteria in plant tissues. Rhizoplane and endophytic colonization by both bacteria was significantly inhibited in the rice plants grown in the presence of 10 mM $NH_4Cl$. In contrast, the addition of 10 mM $KNO_3$ showed no adverse effect on colonization. Increasing the concentration of $Ca^{2+}$ to 5 mM significantly reduced endophytic colonization by both bacterial strains, whereas the addition of 0.5 mM $Fe^{2+}$ substantially lowered the colonization of roots by S. marcescens IRBG500 but showed no effect on colonization by H. seropedicae Z67. Taken together, these finding suggest that, like in legume-rhizobial symbiosis as well as plant-pathogen interactions, nutrient status, particularly $NH_4^+$ and $Ca^{2+}$ concentrations in the surrounding medium, plays an important role in the regulation of endophytic infection and colonization processes in rice.
Dynamics of bacterial communities and its colonization under aerobic gemp retting were observed in air lift fermentor as a closed system, unlike conventional hemp retting as an open system. Dried hemp which was harvested in both 1986 and 1987 was retted at room temperature. Predominant community was facultatively anaerobic Gram-negative rods, and its density was increased from $3.0\times 10^{7}$ cells/ml to $9.0\times 10^{8}$ cells/ml. The density of facultatively nanerobic Gram-positive fods was maintained at the lovel of $5.0\times 10^{6}$ cells/m, and this Gram-positive bacterial community was not participated in retting. In the Gram-negative bacterial community during the retting, five types of colonieswere developed at early stage of pH7.0-8.0, and thereafter, only three types were colonized till later stage, shich were identified as pectolytic strain Erwinia salicis, Erwinia tracheiphila and Enterobacter agglomerans. A community of facultatively Gram-negative rods was mainly proliferated in stems and dispersed into liquor after 6-8 hours. Retting was terminated within 70-80 hours.
Previously, Pseudomonas plecoglossicida YJR13 and Pseudomonas putida YJR92 from a sequential screening procedure were proven to effectively control Phytophthora blight caused by Phytophthora capsici. In this study, we further investigated the anti-oomycete activities of these strains against mycelial growth, zoospore germination, and germ tube elongation of P. capsici. We also investigated root colonization ability of the bacterial strains in square dishes, including cell motility (swimming and swarming motilities) and biofilm formation. Both strains significantly inhibited mycelial growth in liquid and solid V8 juice media and M9 minimal media, zoospore germination, and germ tube elongation compared with Bacillus vallismortis EXTN-1 (positive biocontrol strain), Sphingomonas aquatilis KU408 (negative biocontrol strain), and MgSO4 solution (untreated control). In diluted (nutrient-deficient) V8 juice broth, the tested strain populations were maintained at >108 cells/ml, simultaneously providing mycelial inhibitory activity. Additionally, these strains colonized pepper roots at a 106 cells/ml concentration for 7 days. The root colonization of the strains was supported by strong swimming and swarming activities, biofilm formation, and chemotactic activity towards exudate components (amino acids, organic acids, and sugars) of pepper roots. Collectively, these results suggest that strains YJR13 and YJR92 can effectively suppress Phytophthora blight of pepper through direct anti-oomycete activities against mycelial growth, zoospore germination and germ tube elongation. Bacterial colonization of pepper roots may be mediated by cell motility and biofilm formation together with chemotaxis to root exudates.
Purpose: The purpose of this study was to compare and analyze the effects of gargling using normal saline or essential oil on oral bacterial colonization of the subjects who did transoral endotracheal intubation for general anesthesia. Methods: A repeated measures, non-equivalent control group pretest-posttest design was used in this study. The subjects of the study included 58 people; the gargling group with normal saline (n=19); the gargling group with essential oil (n=20); and the control group (n=19). Data were collected from University hospitals in a Korean province from August 13-31, 2012. The collected data were analyzed with $X^2$-test, t-test, ANOVA and Scheff$\acute{e}$ test using SPSS 19.0. Results: Although statistically significant differences among the three groups did not appear in the change of the aerobic bacterial colony before and after the experiments, the aerobic bacterial colony of the gargling group with normal saline ($71.58{\pm}143.39$) and the group with essential oil ($6.95{\pm}332.07$) have increased less compared to the control group ($145.42{\pm}385.01$). The change of the anaerobic bacterial colony before and after the experiments, the control group was ($167.58{\pm}483.58$) and the gargling group with essential oil was ($169.70{\pm}291.60$) and increased, while the gargling group with normal saline ($-42{\pm}331.09$) reduced, but statistically significant differences have not appeared. Conclusion: These findings indicated that oral gargling with normal saline is effective in reducing anaerobic bacterial colonization.
The eglS gene in Bacillus amyloliquefaciens encodes an endo-β-1,4-glucanase that belongs to glycosyl hydrolase family 5. In this study, a disruption mutant of gene eglS was constructed to examine its role in bacterial adaptation in plants. The mutant TB2k, eglS gene inactivated bacterial strain, was remarkably impaired in extracellular cellulase activity. When inoculated on Brassica campestris, the TB2k population was reduced by more than 60% compared with the wild-type strain in the root, stem, and leaf tissues. Overexpression of eglS in the wild-type strain increased the bacteria population in the plant tissues. Further studies revealed that the transcription level of eglS was correlated with bacterial population. These data demonstrate that endo-β-1,4-glucanase of B. amyloliquefaciens is required for its optimal endophytic colonization.
Microorganisms are implicated the endodontic treatment failures. Persistent endodontic infection may be the result of retention of microorganisms in the dentin of the root canal walls. Dentinal tubules of the root canal walls have been shown to harbor microorganisms. The purpose of this study was to investigate the invasion of microorganism into the root dentin and dentinal tubules. The effects of irrigation solutions and smear layer on bacterial colonization of root canal were evaluated using a scanning electron microscopy. Canals of extracted human teeth with single and straight canals were stepback prepared using normal saline. Tooth samples were divided into four groups according to the irrigation solutions -5 % sodium hypochlorite and normal saline-and smear layer treatment. The smear layer was removed by 5% NaOCl and 20% EDTA for 10 min respectively. After sterilization, they were incubated with each strains of Streptococcus sanguis, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus and Escherichia coli. Sodium hypochlorite solution reduced the adhesion of microorganisms effectively compared to normal saline. The smear layer inhibited colonization of E. faecalis, S. aureus and E. coli in the root canals due to their blocking of dentianl tubules. But S. sanguis invaded dentinal tubules in the root canals without smear layer. It was suggested that bacterial attachment might be different according to the strains. Sodium hypochlorite inhibited bacterial attachment in the dentinal tubules dramatically. The absence or presence of smear layer affected bacterial invasion of the dentinal tubules.
Colonization studies previously performed with a green-fluorescent-protein, GFP, labeled derivative of Bacillus amyloliquefaciens FZB42 revealed that the bacterium behaved different in colonizing surfaces of plant roots of different species (Fan et al., 2012). In order to extend these studies and to elucidate which genes are crucial for root colonization, we applied targeted mutant strains to Arabidopsis seedlings. The fates of root colonization in mutant strains impaired in synthesis of alternative sigma factors, non-ribosomal synthesis of lipopeptides and polyketides, biofilm formation, swarming motility, and plant growth promoting activity were analyzed by confocal laser scanning microscopy. Whilst the wild-type strain heavily colonized surfaces of root tips and lateral roots, the mutant strains were impaired in their ability to colonize root tips and most of them were unable to colonize lateral roots. Ability to colonize plant roots is not only dependent on the ability to form biofilms or swarming motility. Six mutants, deficient in abrB-, sigH-, sigD-, nrfA-, yusV and RBAM017410, but not affected in biofilm formation, displayed significantly reduced root colonization. The nrfA- and yusV-mutant strains colonized border cells and, partly, root surfaces but did not colonize root tips or lateral roots.
Spatial and temporal distribution of Bacillus licheniformis N1 was investigated over time on the leaves, petioles and crowns of the strawberry plants. Bacterial population on the strawberry plants was quantified over time by selective plating. Bacterial population of N1 containing a plasmid pWH43G carrying green fluorescent protein (GFP) declined relatively faster on the plant surface as compared to the Strain N1 itself. However, this result was found to be enough to utilize the strain to visualize bacterial colonization on the plant surface. When B. licheniformis N1 was treated together with Silwet L-77 at 0.03%, the bacterial population on plant surface persisted for up to 7 days. B. licheniformis N1 (pWH43G) containing Silwet L-77 was applied on the strawberry plants and the GFP expressing bacteria were visualized by confocal laser scanning microscopy. Bacterial persistence was also investigated in a growth chamber and in a plastic house after N1 bioformulation treatment on the strawberry plant. The Strain N1 colonized three different tissues well and persisted over 3 to 5 days on the strawberry plants. They formed bacterial aggregates on plant surfaces for at least 3 days, resulting in a biofilm to resist fluctuating plant surface environment. However, the bacterial persistence dramatically declined after 7 days in all tested tissues in a plastic house. This study suggest that B. licheniformis N1 colonizes the strawberry plant surface and persists for a long time in a controlled growth chamber, while it can not persist over 7 days on the plant surface in a plastic house.
Degradation of rice straw was observed to be higher (p<0.01) in the buffaloes than in cattle. At 48 h, the dry matter (DM) loss of straw for buffaloes was 53.6 0.8% and that for cattle was 48.7 2.6%. Palm press fibre (PPF) was poorly degraded in the rumen of both animal species. A loss of about 21% DM was observed in both cattle and buffaloes after 48 h of incubation in the rumen. The pattern of bacterial and fungal colonization of straw and PPF seemed to be similar in both cattle and buffaloes. Microbial colonization was restricted by plant structures like the silica crystals in both straw and PPF. The predominant bacteria colonizing both straw and PPF fragments were the rods. Eroded zones and digestion pits were pronounced in straw fragments after 1 h of incubation. The PPF fragments appeared undegraded even after 6 h of incubation. Fungal colonization of straw was rapid and extensive in both cattle and buffaloes. The sporangia observed in straw were mainly spherical or oval in shape, but fusiform sporangia with acuminate tip were predominantly seen in PPF fragments.
Park, Okhee;Kim, Jinwoo;Ryu, Choong-Min;Park, Chang-Seuk
The Plant Pathology Journal
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v.20
no.2
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pp.97-102
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2004
Paenibacillus polymyxa E681, with its plant growth promotion and root colonization ability, has been proven to be a promising biocontrol agent of cucumber and barley. This study investigated the attributes related to the movement of bacteria from the seed to the radicle and to the whole root system. It also illustrated the existing form and population changes of the bacteria on seed and root using the scanning electron microscope and confocal laser scanning microscopy. The bacteria invaded and colonized the inside of the seed coat while the seeds were soaked in bacterial suspension. Almost the same number of bacteria on seed surface invaded the inside of the seed coat right after seed soaking. The population densities of E681 increased greatly inside as well as on the surface of the seed before the radicle emerged. The bacteria attached on the emerging radicle directly affected the initial population of newly emerg-ing root. The colonized cells on the root were arranged linearly toward the elongation of the root axis. In addition to colonizing the root surface, strain E681 was found inside the roots, where cells colonized the inter-cellular space between certain epidermal and cortical cells. When the cucumber seeds were soaked in bacterial suspension and sown in pot, the bacterial populations attached on both the surface and inside of the root were sustained up to harvesting time. This means that E681 successfully colonized the root of cucumber and sustained its population density up to harvesting time through seed treatment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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