Fitriana, Yuyun;Tampubolon, Desi Apriani Teresa;Suharjo, Radix;Lestari, Puji;Swibawa, I Gede
The Plant Pathology Journal
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v.38
no.5
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pp.449-460
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2022
This study was performed to reveal phenotypic characters and identity of symbiont bacteria of Nasutitermes as well as investigate their potential as antagonist of plant pathogenic fungi. Isolation of the symbiont bacteria was carried out from inside the heads and the bodies of soldier and worker termite which were collected from 3 locations of nests. Identification was performed using phenotypic test and sequence of 16S ribosomal DNA (16S rDNA). Antagonistic capability was investigated in the laboratory against 3 phytopathogenic fungi i.e., Phytophthora capsici, Ganoderma boninense, and Rigidoporus microporus. Totally, 39 bacterial isolates were obtained from inside the heads and the bodies of Nasutitermes. All the isolates showed capability to inhibit growth of P. capsici, however, 34 isolates showed capability to inhibit growth of G. boninense and 32 isolates showed capability to inhibit growth of R. microporus. Two bacterial strains (IK3.1P and 1B1.2P) which showed the highest percentage of inhibition were further identified based on their sequence of 16S rDNA. The result showed that 1K3.1P strain was placed in the group of type strain and reference strains of Lysinibacillus fusiformis meanwhile 1B1.2P strain was grouped within type strain and reference strains Paenibacillus alvei. The result of this study supply valuable information on the role of symbiont bacteria of Nasutitermes, which may support the development of the control method of the three above-mentioned phytopathogenic fungi.
The bacterial strain T-9, which shows strong antifungal activity, is isolated from the soils of Samcheok, Gangwondo and identified as Paenibacillus kribbensis according to morphological and taxonomic characteristics and 16S rRNA gene sequence analysis. The P. kribbensis strain T-9 strongly inhibits the growth of various phytopathogenic fungi including Botrytis cinerea, Colletotricum acutatum, Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici, Magnaporthe oryzae, Phytophthora capsici, Rhizoctonia solani, and Sclerotium cepivorum in vitro. Also, the P. kribbensis strain T-9 exhibited similar or better control effects to plant diseases than in fungicide treatment through in vivo assays. In the 2-year greenhouse experiments, P. kribbensis strain T-9 was highly effective against clubroot. In the 2-year field trials, the P. kribbensis strain T-9 was less effective than the fungicide, but reduced clubroot on Chinese cabbage when compared to the control. The above-described results indicate that the strain T-9 may have the potential as an antagonist to control various phytopathogenic fungi.
This study was conducted to find out antifungal activities of entomopathogenic fungus, Metarhizium anisopliae, against phytopathogenic fungi, Fusarium oxysporum, Botrytis cinerea and Alternaria solani. M. anisopliae was confirmed its antagonistic effect through mycelial inhibition zone of phytopathogenic fungi by culture filtrate of the antagonist. The filtrate (30%: v/v) inhibited the conidial germination of B. cinerea and F. oxysporum to 21.5% (control: 88.2%) and 53.0% (control: 78.6%), respectively and delayed the start of spore germination about 8hours. Microscopic observations proved that the addition of 10% culture filtrate of M. anisopliae restricted the growth of phytopathogenic fungus, F. oxysporum, to the formation of chlamydospore. From these results, we concluded that an addition effect of the filtrate from M. anisopliae on culturing F. oxysporum was fungistatic.
Indigenous strains of Trichoderma species isolated from rhizosphere soils of Tea gardens of Assam, north eastern state of India were assessed for in vitro antagonism against two important tea fungal pathogens namely Pestalotia theae and Fusarium solani. A potent antagonist against both tea pathogenic fungi, designated as SDRLIN1, was selected and identified as Trichoderma viride. The strain also showed substantial antifungal activity against five standard phytopathogenic fungi. Culture filtrate collected from stationary growth phase of the antagonist demonstrated a significantly higher degree of inhibitory activity against all the test fungi, demonstrating the presence of an optimal blend of extracellular antifungal metabolites. Moreover, quantitative enzyme assay of exponential and stationary culture filtrates revealed that the activity of cellulase, ${\beta}$-1,3-glucanase, pectinase, and amylase was highest in the exponential phase, whereas the activity of proteases and chitinase was noted highest in the stationary phase. Morphological changes such as hyphal swelling and distortion were also observed in the fungal pathogen grown on potato dextrose agar containing stationary phase culture filtrate. Moreover, the antifungal activity of the filtrate was significantly reduced but not entirely after heat or proteinase K treatment, demonstrating substantial role of certain unknown thermostable antifungal compound(s) in the inhibitory activity.
Kim, Keun-Ki;Kang, Jae-Gon;Choi, Yong-Lark;Yun, Han-Dae;Ha, Ho-Sung;Kang, Kyu-Young
The Korean Journal of Pesticide Science
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v.2
no.1
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pp.40-45
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1998
An antagonistic fungus inhibiting growth of various phytopathogenic fungi was isolated from greenhouse soils and identified. Mophological features of fruiting structures on potato dextrose agar and colorless globose to ovate heavy walled hyaline cells from the vegetative mycelium grown on MY20 agar indicate that this antagonist is Aspergillus terreus. The antagonistic activity is due to the production of antifungal compounds. An antifungal compound was purified from its culture filtrate using chloroform extraction, column chromatography, and thin layer chromatography. The purified antibiotic was effective to various phytopathogenic fungi and identified as butyrolactone I. $ED_{50}$ values measured by petri-plate assay through effective dosage(ED)-probit analysis were 9.7, 13.7, 23.3, 42.6 and 102.7 ppm on Botrytis cinerea, Rhizoctonia solani, Pythium ultimum, Phytophthora capsici, and Fusarium oxysporum, respectively.
In this study, to retain a stable bacterial inoculant, Bacillus strains showing antifungal activity were screened. The improved production, antifungal mechanism, and stability of the antifungal metabolite by a selected strain, AF4, a potent antagonist against phytopathogenic Botrytis cinerea, were also investigated. The AF4 strain was isolated from rhizospheric soil of hot pepper and identified as Bacillus subtilis by phenotypic characters and 16S rRNA gene analysis. Strain AF4 did not produce antifungal activity in the absence of a nitrogen source and produced antifungal activity at a broad range of temperatures (25-40℃) and pH (7-10). Optimal carbon and nitrogen sources for the production of antifungal activity were glycerol and casein, respectively. Under improved conditions, the maximum antifungal activity was 140±3 AU/ml, which was higher than in the basal medium. Photomicrographs of strain AF4-treated B. cinerea showed morphological abnormalities of fungal mycelia, demonstrating the role of the antifungal metabolite. The B. subtilis AF4 culture exhibited broad antifungal activity against several phytopathogenic fungi. The antifungal activity was heat-, pH-, solvent-, and protease-stable, indicating its nonproteinous nature. These results suggest that B. subtilis AF4 is a potential candidate for the control of phytopathogenic fungi-derived plant diseases.
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