In this work, we have prepared tungsten doped vanadium oxide ($W-VO_2$) particles with a low phase transition temperature. $W-VO_2$ particles were synthesized via thermolysis method using vanadyl (IV) sulfate and ammonium bicarbonate as precursors. The structure and thermochromic property of synthesized $W-VO_2$ particles were investigated by FE-SEM, EDS, XRD, XPS, and DSC analysis. The prepared $W-VO_2$ showed a nearly platy morphology, which indicates that the tungsten was successfully doped in the crystal lattices of $VO_2$. $W-VO_2$ nanoparticles with the size of 60 nm exhibited a monoclinic crystal structure and its chemical composition and surface state were also likely to be close to that of $VO_2$. In addition, the phase transition temperature of $W-VO_2$ was $38.5^{\circ}C$, which was approximately $29.2^{\circ}C$ lower than that of pure $VO_2$ ($67.7^{\circ}C$), indicating that the prepared sample had a good reversible thermochromic stability.
Yang Woong-Suk;Lim Hak-Seob;Chung Kyung Tae;Kim Young-Hee;Huh Man Kyu;Choi Byung Tae;Choi Yung Hyun;Jeong Yong Kee
Journal of Life Science
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v.15
no.3
s.70
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pp.434-438
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2005
In the previous study, we isolated a myulchikinase (MK), which has fibrinolytic activity and cytotoxicity to the tumor cell line, from myl- chi-jeot-gal. In this study, the effect of NaCl concentration, metallic ions, pH, temperature, and plasminogen on the activity of MK was analysed. The MK activity was maintained at least $80\%$ activity up to $30\%$ NaCl, which indicates that the enzyme may be halotolerant. The optimal pH and temperature were 8 and $40^{\circ}C$, respectively. The fibrinolytic activity of MK was completely inhibited with 0.5 mM $Hg^{2+}$ and inhibited to $50^{\circ}C$ with 1 mM $Cu^{2+}\;and\;Zn^{2+}$. The MK showed strong activity in plasminogen- rich fibrin plate but not in plasminogen-free fibrin plate. The result indicates that the MK may be a plasminogen activator type fibrinolytic enzyme.
A fungal strain which produced high levels of acid protease and amylase was isolated from the atmosphere for application to the manufacture of digestive enzme preparation. This study was carried out to elucidate its microbiological characteristics, environmental conditions for production of the enzymes, and relationships between the enzyme activity and acidity. 1. The isolate was identified as a fungal strain which belonged to Aspergillus niger by the manual of Rafer and Fennel, and was found to be a strain producing high levels of acid protease and amylase. 2. The optimal pH of tile enzymes produced by the strain were: protease, 2.0;, ${\alpha}-amylase$, 4 to 5; and glucoamylase, 3 to 5. 3. The optimal culture conditions for production of the enzymes were: protease (at pH 2.5), 2 to 3 days incubation on wheat bran at $30^{\circ}C$; ${\alpha}-amylase$ and glucoamylase(at pH 3.0), 3 days incubation at $30^{\circ}C$. 4. The production of acid protease and glucoamylase was increased approximately by 20 percent when 2 percent of corn starch was added to the wheat bran medium. 5. The addition of 0.3 percent ammonium sulfate to the wheat bran medium resulted in enhancing the enzyme production, especially of acid prctease.
Proteases from papaya latex were partially purified by ammonium sulfate precipitation and separated into two fractions (Fraction I and II ) by carboxymethyl cellelose column chromatography. Each fraction, mixture of the two fractions, and crude extract of the papaya latex at pH 7.0 were inactivated at the range of $60{\sim}90^{\circ}C$ and thermal properties of the enzymes were investigated. In the thermal inactivation of fraction I, the enthalpy of activation was 89.5 kJ/mol; the entropy of activation, -44.0 J/mol K; the free energy of activation, 104.6 kJ/mol; z-value, $25^{\circ}C$. For fraction II, the enthalpy of activation was 96.5 kJ,/mol; the entropy of activation, -22.0 J/mol K; the free energy of activation, 104.0 kJ/mol; z-value, $23^{\circ}C$. For the mixture of fraction I and II, the enthalpy of activation was 90.9 kJ/mol; the entropy of activation, -38.8 J/mol·K; the free energy of activation, 104.2 kJ/mol; z-value, $24.6^{\circ}C$. For crude extract, the enthalpy of activation was 113.8 kJ/mol; the entropy of activation, 22.0 J/mol·K; the free energy of activation, 106.2 kJ/mol; z-value, $23.2^{\circ}C$. It was indicated that the fraction I was more heat-stable than the fraction II and this suggested that the thermal stability of the proteases in papaya latex is probably due to the fraction I.
In the study, the protease activity of kiwifruit (Actinidia deliciosa Planch) cultivated in Korea was estimated, with specific examination of proteolytic effects on myofibrilar protein. The crude protease extract of kiwifruit was prepared in two ways; one in which the kiwifruit was homogenized with buffer followed by centrifugation, and the other were the supernatant was precipitated by saturated ammonium sulfate followed by dialysis. The former had 21.23 mM/mL of protease activity, which corresponded to 112.28 mM/g kiwifruit utilized, and the latter had 11.58 mM/mL and 45.80 mM/g of kiwifruit. The crude protease extract of the kiwifruit showed high specificity for casein substrate followed by bovine serum albumin, egg white, collagen, and elastin, in order. The enzyme lost proteolytic activity in acidic conditions such as pH 2-3, and at high temperatures over $60^{\circ}C$. It showed optimal activity in both pH 3.0 and pH 7.5 as well as at $40^{\circ}C$ for casein substrate and at $50^{\circ}C$ for myofibrilar protein substrate. The proteolytic activity toward casein was high with up to 0.5M salt, followed by a sharp decrease beyond this concentration. On the other hand the proteolytic activity for myofibrilar protein decreased steadily with increasing of salt concentration. Kiwifruit has been used as a for meat tenderizer for in home cooking and these results support the its tenderizing effectiveness of kiwifruit especially for Korean style marinating of meat for cooking.
Kim, Jin-Soo;Kim, Hye-Suk;Lee, Hyun Ji;Park, Sung Hwan;Kim, Ki Hyun;Kang, Sang In;Heu, Min Soo
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.46
no.6
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pp.716-722
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2014
Aminopeptidase-active fractions from crude extract of the hepatopancreas of a common squid (Todarodes pacificus) were obtained using acetone (AC; 30-40%) and ammonium sulfate precipitation (AS; 60-70% saturation), anion exchange (AE-II; 0.2 M NaCl) and gel filtration chromatography (GF-I; 30-50 kDa), respectively. The debittering capacity of GF-I fraction based on the aminopeptidase activity (89.2 U/mg), recovery (56.6%) and sensory evaluation (1.0) was better than that of other fractions. Release of amino acids increased as incubation time was increased, and the bitterness of the enzyme reaction mixtures decreased. Incubation with the GF-I fraction for 24 h resulted in the hydrolysis of several peptides, as revealed by reverse-phase HPLC profiles. Peaks 3, 5 and 6 showed the decreased area (%), whereas peaks 1, 2 and 4 showed the increased area. The GF-I fractions were found to be suitable for reducing bitterness in protein hydrolysates by catalyzing the hydrolysis of bitter peptides.
The extracellular endoinulase from Streptomyces sp. 556 was purified and characterized, The culture broth was fractionated by ammonium sulfate saturation followed by DEAE-cellulose column chromatography and 5ephadex G-200 gel filtration, The ultimately purified fraction revealed a single band in 7.5% polyacrylamide gel electropherogram. The purified enzyme showed the maximal activity at pH 5.5-6.0 and $50^{\circ}C$, but lost 93% of inulase activity after 30 min incubation at $55^{\circ}C$ . The essen.tial amino acid residue for catalytic activity appeared to be tryptophan. This endo inulase was activated by $Mn^{2+}$, whereas inactivated by $Ag^{+}$, $Hg^{+}$, $Cu^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Fe^{3+}$ and $Mo^{6+}$ EDTA and 8-hydroxyquinoline inhibited the enzyme so that the enzyme was considered to be a metalloenzyme. The Km value for inulin was 0.287 mM, and no invertase or $\alpha$-glucosidase activity was found in the enzyme.
A decomposition reaction of bauxite ore with $(NH_4)_2SO_4$ was investigated to prepare Al component pregnant solution for the direct product of high purity $Al_2O_3$ from low grade bauxite ore. Al component in the bauxite was sulfatized to $NH_4Al(SO_4)_2$ or $Al_2(SO_4)_3$ in this decomposition. The optimum conditions of the decomposition for bauxite ore were reaction temperature of $425^{\circ}C$, reaction time of 40min, $(NH_4)_2SO_4$ weight ratio to bauxite of 7.0 and particle size of bauxite ore of -200mesh. The optimum leaching conditions of sulfated bauxite ore were leaching temperature of $100^{\circ}C$, leaching time of 1hr and pulp density of 200ml $H_2O$ to sulfated ore of 1.0g bauxite. Under the above mentioned decomposition and leaching conditions, 94% of Al component in the bauxite ore was extracted.
For screening thermostable $\alpha$-amylase from thermophiles, various samples from extreme environments such as hot spring and sewage near them, and compoat, wereexamined microbial growth in enrichment culture medium at 55$\circ$C on the assumption that enzymes from thermophiles are inevitable thermostable. One strain showing higher $\alpha$-amylase activity was pure cultured and designated as Bacillus sp. TR-25 from the results of morphological, cultural and physiological characteristics. The most important carbon sourses for the enzyme production were soluble starch, dextrin, potato starch and corn starch. Glucose and fructose had a catabolite repression on the enzyme production. The good nitrogen sources for the enzyme production were yeat extract, nutrient broth, tryptone, corn steep liquor and ammonium sulfate. The enzyme production was accelerated by addition of CaCl$_{2}$. $\cdot $ H$_{2}$O. The optimal medium composition for the enzyme production was soluble starch 2.0%, yeast extract 0.55, CaCl$_{2}$ $\cdot $ 2H$_{2}$O 0.015, Tween 80 0.001%, pH8.0, respectively. In jar fermenter culture, this strain shows a rapid growth and required cheaper carbon and nitrogen source. These properties are very useful to fermentation industry. The $\alpha$-amylase of this strain demonstrated a maximum activity at 80$\circ$C, pH 5.0, respectively. And calcium ion did not improve thermostability of the enzyme. At 10$0^{\circ}C$, this enzyme has 235 of relative activity. Transformation was carried out by thermophilic Bacillus sp. TR-25 genomic DNA. As a result, the transformant has increased thermostable $\alpha$-amylase activity.
Asparagine biosynthesis by soybean sprouts grown under the dark conditions has been demonstrated. The amount of free asparagine synthesized in ten day-old soybean sprouts increases to 22.7% on the dry weight base. The effects of nitrogen compounds such as $NH_4Cl,\;(NH_4)_2SO_4$ and urea on asparagine synthesis during the sprouting were examined and the results showed that urea was more effective than other two compounds. Glutamine-dependent asparagine synthetase was partially purified (8.6 folds) through ammonium sulfate fractionation, followed by Sephadex G-150 gel filtration. The enzyme was very labile and required protection by thiol groups or high level of glycerol. The mixture of ATP and $Mg^{++}$ ion also stabilized the enzyme activity. The enzyme utilized glutamine more effectively than ${NH_4}^+$ as an amide donor for the formation of asparagine. The enzyme required L-aspartate (Km=3.1 mM), L-glutamine, ATP and $Mg^{++}$. It showed pH optimum of 7.5 and catalyzed the formation of ${\beta}-aspartyl$ hydroxamate in the presence of L-aspartate, ATP, $Mg^{++}$ and $NH_2OH$ in the reaction mixture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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