Facile methods are reported for the synthesis of optically pure derivatives of (2S,3R)-3-amino-2-hydroxy-4-(4'-hydroxyphenyl)b utanoic acid. To avoid troublesome synthesis of O-benzyl-N-Boc-D-tyrosine, without the protection of phenolic OH group of tyrosine N-Boc-D-tyrosine methyl ester was reduced with DiBAL to the aldehyde. The aldehyde was converted via the cyanohydrin to (2S,3R)-3-amino-2-hydroxy-4-(4'-hydroxyphenyl)butanoic acid (AHpHBA). The mixture of diastereomers was converted to the corresponding Boc-AHpHBA methyl ester derivatives and separated by chromatography over silica gel. Optically active (2S,3R)-AHpHBA was used to synthesize aminopeptidase inhibitors.
Distribution of rhEGF in the skin, plasma and several organ tissues following topical application of $^{125}I-rhEGF$ (0.4${\mu}$Ci) solution in 25% Pluronic F-127 on 154$mm^2$ normal and damaged (burned and stripped) skins of hairless mice was examined. The radioactivity in the stripped skin tissues increased as a function of time, and was 10-20 times higher than that in the normal and burned skins. The fractions of intact drug in the skin tissues were 40-60% for the normal and burned skins, and 60-80% for the stripped skin. It indicates that the stratum corneum layer behaves as a barrier for the dermal penetration of the drug. The radioactivity in the plasma was much higher for the stripped skin than for the normal and burned skins. However, the concentration of intact drug in the stripped skin was comparable to those in the normal and burned skins indicating most severe degradation (or metabolism) of the drug in the stripped skin. As a result, the fraction of intact drug in the plasma was lowest for the stripped skin (<10%). Body organ distribution of the drug was much higher for the stripped skin. The concentration in the stomach. Both in total radioactivity and intact drug, showed more than 10-times higher value than in the other organs (liver, kidney and spleen). The fraction of intact drug in each organ tissue was below 10-20%. And generally lowest for the stripped skin. The lowest fraction of the drug for the stripped skin could not be explained by the activity of the aminopeptidases in the skin since it was lower for the stripped skin than for the normal skin. Thereover, the fraction of intact drug appears to be determined by the balance between dermal uptake and systemic elimination of the drug, for example. The mechanism of dermal uptake of rhEGF was examined by topical applying 200${\mu}$l of 25% Pluronic F-127 solution containing 0.4 ${\mu}$Ci of $^{125}I-rhEGF$ and 0.14${\mu}$Ci of $^{14}C$-inulin (a marker of passive diffusion). The radioactivity of $^{125}I-rhEGF$ at each sampling time point (0.5, 1, 2, 4 and 8hr) was correlated (p<0.05) with the corresponding radioactivity of $^{14}C$-inulin. It appears to indicate the rhEGF may be uptaken into the skins mainly by the passive diffusion. This hypothesis was supported by the constant specific binding of EGF to the skin homogenates regardless of the skin models. Receptor mediated endocytosis (RME) appears to contribute negligibly, if any, to the overall uptake process.
In order to study systemic peptide delivery through the ocular route, the stabilities of methionine enkephalin (Met-Enk) and $[D-ala^2]-methionine$ enkephalinamide (YAGFM) in the corneal extracts of rabbits were investigated using reversed phase HPLC. Met-Enk was found to be hydrolyzed most rapidly in the corneal epithelium, but YAGFM was relatively stable. Aminopeptidases appeared to contribute over 60% to the degradation of Met-Enk and the degradation rate of Met-Enk followed the first order kinetics. The half-lives of Met-Enk in the extracts of the corneal epithelium and endothelium were 36 and 673 min, respectively. From the effects of enzyme inhibitors, it was found that the application of the mixture of amastatin, thimerosal and EDTA was very useful for the inhibition of peptide degradation.
Angiotensin II (Ang II) is metabolized from N-terminal by aminopeptidases and from C-terminal by Ang converting enzyme (ACE) to generate several truncated angiotensin peptides (Angs). The truncated Angs have different biological effects but it remains unknown whether Ang-(4-8) is an active peptide. The present study was to investigate the effects of Ang-(4-8) on hemodynamics and atrial natriuretic peptide (ANP) secretion using isolated beating rat atria. Atrial stretch caused increases in atrial contractility by 60% and in ANP secretion by 70%. Ang-(4-8) (0.01, 0.1, and $1{\mu}M$) suppressed high stretch-induced ANP secretion in a dose-dependent manner. Ang-(4-8) ($0.1{\mu}M$)-induced suppression of ANP secretion was attenuated by the pretreatment with an antagonist of Ang type 1 receptor ($AT_1R$) but not by an antagonist of $AT_2R$ or $AT_4R$. Ang-(4-8)-induced suppression of ANP secretion was attenuated by the pretreatment with inhibitor of phospholipase (PLC), inositol triphosphate ($IP_3$) receptor, or nonspecific protein kinase C (PKC). The potency of Ang-(4-8) to inhibit ANP secretion was similar to Ang II. However, Ang-(4-8) $10{\mu}M$ caused an increased mean arterial pressure which was similar to that by 1 nM Ang II. Therefore, we suggest that Ang-(4-8) suppresses high stretch-induced ANP secretion through the $AT_1R$ and $PLC/IP_3/PKC$ pathway. Ang-(4-8) is a biologically active peptide which functions as an inhibition mechanism of ANP secretion and an increment of blood pressure.
To study the feasibility of transmucosal delivery of leucine enkephalin (Leu-Enk) and $[D-ala^2]$-leucine enkephalinamide (YAGFL), their degradation extents and pathways in various rabbit mucosa extracts were investigated by high performance liquid chromatography. The degradation of Leu-Enk and YAGFL was observed to follow the first-order kinetics. The degradation half-lives of Leu-Enk in the nasal, rectal and vaginal mucosal extracts were 1.62, 0.37 and 1.12 hrs and those of YAGFL were 30.55, 9.70 and 6.82 hrs, respectively, indicating Leu-Enk was degraded in a more extensive and rapid manner than YAGFL. But the mucosal and serosal extracts of the same mucosa showed the similar degradation rates for both pentapeptides. The degradation was most rapid in the neutral pH and increasing concentrations of substrates retarded the degradation rates. The maior hydrolytic fragments of Leu-Enk were Des-Tyr-Leu-Enk and tyrosine, indicating the enzymatic hydrolysis by aminopeptidases. However, the data also suggested endopeptidases such as dipeptidyl carboxypeptidase and dipeptidyl aminopeptidase could play some role in the degradation of Leu-Enk. On the other hand, the hydrolytic fragments of YAGFL in all the mucosa extracts were mainly Tyr-D-Ala-Gly and Phe-Leu-Amide, demonstrating the hydrolytic breakdown by endopeptidases. The degradation pathways were further explored by concomitantly determining the formation of smaller metabolites of primary hydrolytic fragments of Leu-Enk and YAGFL in the mucosa extracts.
Salt stability of enzymes is a crucial practical factor in the food industry. Previously, leucine aminopeptidase (LAP) was purified from Bacillus sp. N2. Here, we present the salt effect of LAP using synthetic substrates. LAP had a hydrolytic activity for L-leucine-${\rho}$-nitroanilide in high concentrations of NaCl (up to 4 M), but not for other neutral salts (LiBr, LiCl, NaBr, KBr, and KCl). It hydrolyzed various synthetic di-peptide substrates with hydrophobic and hydrophilic amino acids at the C-terminal Xaa region, in the presence of 0-4 M NaCl. The result indicated that the hydrolytic action of LAP is not dependent on the hydrophobicity of the amino acid side chain at the scissile bond of the substrate. Remarkably, the hydrolytic activity of LAP was 1-3 folds higher than those of other LAPs and aminopeptidases in 4.5 M NaCl, suggesting that NaCl-tolerant LAP might be used in the food industry as cheese and anchovy sauce.
To study the feasibility of transmucosal delivery of $[D-ala^2]-methionine$ enkephalinamide (YAGFM), its enzymatic degradation and stabilization in various rabbit mucosal extracts were investigated by HPLC method. The degradation of YAGFM was observed to follow the first-order kinetics and the half-lives of YAGFM in the nasal, rectal and vaginal mucosal extracts were found to be 25.7, 3.0 and 7.8 hr, respectively. However, there was no significant difference in degradation rates of YAGFM between the mucosal and serosal extracts obtained from the same mucosal membrane. This finding suggests that even a synthetic enkephalin analog, which is designed to be resistent to aminopeptidases, needs to be fully protected from the enzymatic degradation in mucosal sites for the delivery of the analog through mucosal routes. To inhibit the degradation of YAGFM in various mucosal extracts, effects of enzyme inhibitors such as bestatin (BS), amastatin (AM), thiorphan (TP), thimerosal (TM) and EDTA, alone or in combination, and modified cyclodextrins were observed by assaying YAGFM staying intact during 24 hr-incubation at $37^{\circ}C$. It was found from the results that mixed inhibitors such as TM (0.5 mM)/EDTA (5 mM) or AM $(50{\mu}M)/TM$ (0.5 mM)/EDTA (5 mM) provided very useful means for the stabilization in various mucosal extracts. The latter was found to protect YAGFM from the degradation in the nasal, rectal, and vaginal mucosal extracts by 90.9, 90.4 and 91.3%, respectively, after 24 hr-incubation, suggesting almost complete inhibition of YAGFM-degrading enzymes present in the incubation mixture. However, BS $(50{\mu}M)$, AM 50 $(50{\mu}M)$ or TP$(50{\mu}M)$ alone did not reveal sufficient inhibition except TM (0.5 mM) or EDTA (5 mM). The adddition of $2-hydroxylpropyl-{\beta}-cyclodextrin$(10%) to the nasal mucosal extract, and $dimethyl-{\beta}-cyclodextrin$(10%) to the rectal and vaginal mucosal extracts reduced the first-order rate constants for the degradation of YAGFM by 5.8, 17.3 and 8.9 times, respectively, compared to those with no additive.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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