재조합 Agrobacterium tumefaciens균주를 사용한 Liquid Culture Assay는 quorum sensing autoinducer를 검색하는 생물학적 분석 방법으로 개발되었다. 그러나 이 시스템에 사용되는 해양천연물 시료들이 일반적으로 낮은 수용액에 대한 용해도를 갖기 때문에 활성검색에 걸림돌이 되고 있다. 시료의 용해도는 유기용매 혹은 계면활성제의 첨가로 증가될 수 있으나, 유기용매나 계면활성제 자체가 검색결과의 정확한 해석을 방해할 수 있으므로 적절한 조건의 확립이 매우 중요하다. Methanol, ethanol, 1-propanol, DMSO와 DMF를 0~10% 농도 범위에서 재조합 A. tumefaciens균주에 대한 세포 성장에 미치는 영향과 ${\beta}$-galactosidase activity에 미치는 영향을 살펴본 결과 methanol 2%이하의 농도가 가장 적합하였으며, 계면활성제의 경우, Tween 20, Tween 80보다는 Triton X-100이 약 0.05% 농도에서 세포내로의 활성물질의 전달효율을 높이는데 효과적이었다.
Polyethylene glycol(PEG) 처리에 의한 Agrobacterium tumefaciens spheroplast와 연초 엽육 protoplast의 상호작용을 연구하기 위하여, 효소적 방법으로 분리한 연초엽육 protoplast와 carbenicillin 및 lysozyme의 처리에 의해 제조된 Agrobacterium tumefaciens ATCC 15955 spheroplast를 섞어서 polyethylene glycol (PEG) 및 high pH-high $Ca^{2+}$ buffer를 처리한 후 시료를 취하여 전자현미경으로 관찰한 결과, spheroplast는 초기 단계에서 protoplast membrane에 부착하고, 시간이 경과함에 따라 endocytosis에 의해 protoplast의 세포질 내부로 도입된 다음, 점차로 그 형체(cell integrity)가 파괴되어지는 것을 관찰할 수 있었다. 이러한 관찰 결과로부터 spheroplast는 polyethylene glycol(PEG)에 의해 protoplast내부로 endocytosis되어짐을 알 수 있었다.
국내에서 분리된 Agrobacterium tumefaciens KU12 는 많은 식물체에서 종양을 유발하여 octopine 을 유일한 탄소원과 질소원으로 이용할 수 있다. A. tumefaciens KU12 내에는 크기가 각각 45.5 kb, 240 kb 및 240 kb 이상인 3종류의 플라스미드가 존재하는 것으로 확인되었다. KU12내에 존재하는 octopine type Ti plasmid 를 확인하기 위하여 플라스미드를 가지고 있지 않은 A. tumefaciens A136 을 direct transformation 방법에 따라 KU12 에서 분리한 플라스미드 시료로 형질전환시킨후 질소원으로 octopine 만을 가지로 있는 AB 최소배지를 이용하여 Ti plasmid 에 의해 형질전환된 형질정환체를 선별하였다. 선별된 형질전환체를 A. tumefaciens KU911 이라고 명명하였으며 KU911 내에는 240 kb 크기의 플라스미드만이 존재하였다. 종양형성능 및 Southern hybridization 을 이용하여 octopine type Ti plasmid 인 pTiKU12 로 명명된 240 kb 크기의 플라스미드가 Ti plasmid 임을 확인되었다.
Inactivation of Agrobacterium tumefaciens was evaluated on the inoculated fresh Radix Ginseng by electron beam irradiation or aqueous chlorine dioxide ($ClO_2$) treatment. Two groups of fresh ginsengs were prepared and inoculated with A. tumefaciens. One group was then irradiated at 0, 2, and 4 kGy using an electron beam accelerator, and the other group was treated with 0, 50, and 100 ppm of aqueous $ClO_2$. Microbiological data indicated that populations of A. tumefaciens significantly decreased with increasing irradiation dose or aqueous $ClO_2$ concentration. In particular, A. tumefaciens was eliminated by irradiation at 4 kGy, and 100 ppm $ClO_2$ treatment reduced the populations of A. tumefaciens by 1.44 log CFU/g. These results suggest that electron beam irradiation or aqueous $ClO_2$ treatment can be useful in improving the microbial safety of fresh ginsengs during storage.
형질전환 효율을 높이기 위하여, NPTII와 GUS유전자를 포함하고 있는 pIG121Hm을 미세 입자에 코팅하여 particle bombardment를 수행한 후 pIG121Hm가 도입된 Agrobacterium tumefaciens EHA101와 3일간 공동 배양하였다. 그 후 캘러스를 1mg/L 2,4-D, 0.1mg/L BAP, 100mg/L kanamycin, 그리고 200mg/L carbenicillin이 포함된 MS배지로 옮겨 4주간 성장시킨 후 kanamycin저항성 캘러스를 선발하여 GUS 발현을 관찰하였고, PCR 분석을 통하여 700 bp의 NPT II 유전자가 도입된 것을 확인하였다. Particle bombardment 후 Agrobacterium과 공동배양 한 처리구가 Agrobacterium과 공동배양만 한 처리구보다 GUS발현 분석에 의한 형질전환 효율이 3배정도 더 높았다 형질전환 된 재분화 식물체를 얻기위해 다시 선발된 kanamycin저항성 캘러스는 1mg/L NAA와 1mg/L BAP가 포함된 재분화 배지에 옮겨져 4주 후 형질전환 된 소인경을 형성하였다.
옥수수 미숙배배양과 Agrobacterium tumefaciens공동배양법에 의해 형질전환체를 생산하였다. Hi II계통의 미숙배를 Ubiquitin 1 promoter-GUS유전자와 선발마커로서 nptII 유전자로 제작된 pPTN290벡터를 C58C1에 도입한 후 형질전환 균주로 사용하였다. 7개의 paromomycin저항성 배 발생캘러스를 얻었으며, GUS양성반응을 나타내는 7개의 독립적인 식물체를 얻었다. Southern분석법에 의하여 $T_1$세대 식물체로부터 nptII유전자가 안정적으로 도입되어 있음을 확인하였다.
Rose crown gall caused by Agrobacterium tumefaciens is a major disease that damages the production of cutroses in Korea. The effective prevention methods for this disease include the use of resistant varieties. This study was conducted to evaluate the resistance of 58 Korean cultivars and six foreign cultivars to crown gall disease with nodal explants in vitro. Among 180 A. tumefaciens strains, pathogenic strain RC12 was selected as an inoculant strain. The strain RC12 was identified based on characteristics of some selective media, pathogenicity test, and polymerase chain reaction analysis. Forty rose cultivars formed tumors on explants inoculated with A. tumefaciens RC12. However, 24 cultivars, including 22 Korean cultivars and 2 foreign cultivars, showed resistance to A. tumefaciens RC12 without forming any tumors. Six cultivars with tumor formation rates of over 30% formed initial tumors within 23 days after inoculation. Six cultivars with low tumor formation rates of around 5% formed initial tumors after 28 days of inoculation. It was found that gall formation rate was highly correlated with the initial gall formation period. Thus, the relationship between the period of gall formation and the rate of gall formation could be useful for assessing resistance to crown gall disease. In vitro inoculation methods could be used to evaluate resistance of cut-rose cultivars to crown gall diseases.
To produce of transgenic orchardgrass, the seed-derived calli of orchardgrass (Dactylis glomerata L.) co-cultivated with Agrobacterium turnefaciens EHAlOl harboring binary vector pIG121-Hm were selected with hygromycin and then transferred onto N6 regeneration medium containing 1 rngl l of NAA, 5 rngl l of kinetin, 250 rngl l of carbenicillin and 50 mg/ l of hygromycin. The efficiency of transformation was differed on cultivars, that is, 'Potomac' appeared 12% of transformation efficiency while 'Amba' did 5.5%. The addition of acetosyringone during co-cultivation was a key to successhl transformation of orchardgrass. Transgene fragments were identified by PCR analysis and the constitutive expression of GUS gene was confirmed by Northern blot analysis. (Key words : Acetosyringone, Agrobacterium tumefaciens, Orchardgrass (Dactylis glomerata L.), Transformation)
The process by which Agrobacterium tumefaciens genetically transforms plants involves a complex series of reactions communicated between the pathogen and the plants. To identify plant factors involved in agrobacterium-mediated plant transformation, a large number of T-DNA inserted Arabidopsis thaliana mutant lines were investigated for susceptibility to Agrobacterium infection by using an in vitro root inoculation assay. Based on the phenotype of tumorigenesis, twelve T-DNA inserted Arabidopsis mutants(rat) that were resistant to Agrobacterium transformation were found. Three mutants, rat1, rat3, and rat4 were characterized in detail. They showed low transient GUS activity and very low stable transformation efficiency compared to the wild-type plant. The resistance phenotype of rat1 and rats resulted from decreased attachment of Agrobacterium tumefaciens to inoculated root explants. They may be deficient in plant actors that are necessary for bacterial attachment to plant cells. The disrupted genes in rat1, rat3, and rat4 mutants were coding a arabinogalactan protein, a likely cell wall protein and a cellulose synthase-like protein, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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