Aflatoxin B1 (AFB1) has been reported to directly suppress the immune responses. In the present study, the effect of AFB1 on immune functions was investigated. Splenic lymphocytes were treated with various doses of the mitogens (lipopolysaccharide, concanavalin A) in the presence of AFB1. AFB1 pretretment decreased the number of plaque forming cells (PFC) in a dose-dependent manner. Antibody production of IgM and IgG class was significantly decreased in AFB1-treated splenic cells. In addition, when animals were exposed to AFB1, the susceptibility of bacterial infection as well as the growth of tumor cells was increased. These data suggest that AFB1 affected the immune function and humoral immunity impaired by AFB1 treatment contributed to pathological process.
In order to develop an enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) for detecting aflatoxin $B_1(AFB_1)$, we produced and purified antibodies, thereafter established and evaluated methods of direct and indirect competitive ELISA. Anti-AFB, antisera, produced by immunizing rabbits with $AFB_1$-1-(0-carboxymethy1)oxime-bovine serum albumin conjugate ($AFB_1$-BSA), were removed of anti-BSA antibodies by quantitative precipitation reaction and further purified by ammonium sulfate precipitation and DEAE-Sephadex A-50 ion exchange chromatography. Purified IgG fractions were used as anti-$AFB_1$ antibodies. The antibodies, whose titer was deterrnined extremely high above $2 \times 10^6$, showed low cross-reactivity of 3~34% against $AFB_1$ analogues such as G2, B2, and GI. From the standard curves of direct and indirect competitive ELISA for AFBI, the detection ranges were found 0.2~20 and 1~10, 000 ng/ml(ppb) respectively. In their sensitivity, stability, simplicity, and rapidity, the direct method was more suitable than the indirect method for practical use.
Aflatoxin $B_1$ ($AFB_1$) was reacted with ascorbic acid (AA) alone, with AA plue cysteine and with AA plus cupric ion for 5 days (at $37^{\circ}C$ and pH 5), and the mutagenicity of the reaction products was tested with Salmonella typhimurium TA 100. About 10% of AFBl induced mutagenesis was reduced when $AFB_1$ reacted with AA. This decreasing effect was more severe when $AFB_1$ reacted with AA plus cysteine. The mutagenicity of $AFB_1$ when reacted with AA plus cupric ion was almost completely inhibited, however, eupric ion itself was shown to enhance the mutagenicity of $AFB_1$. Therefore, $AFB_1$ may be degraded in the presence of AA under the given reaction condition and the reaction products was observed to have nonmutagenic effects on the bacterial mutagenecity trials.
Lipid peroxidation is one of the main manifestations of oxidative damage and has been found play an important role in the toxicity and carcinogenesis of many carcinogens. This study was carried out to investigate the effects of aflatoxin B$_1$co-administrated with antioxidant vitamins on lipid contents and fatty acids components of liver in mice. For this work, vita-min C and vitamin E, the major antioxidants, were administrated with 10 mg/kg and 63.8 mg/kg respectively, through intraperitoneal(i.p) injection to male ICR mice, and 0.4 mg/kg of the AFB$_1$injected by i.p. 1hr later. The results were as follows: two fold amounts of free cholesterol, triglyceride, and total cholesterol in serum and liver of mice treated with only AFB$_1$were observed, when compared to those of mice co-administrated with antioxidant vitamins. However, the levels of phospholipids in serum and liver of mice treated with only AFB$_1$were decreased. Concerning to fatty acids composition of liver from AFB$_1$-treated mice, P/S ratio was shown more low level in cholesteryl ester, triglyceride, total cholesterol and phospholipid than those of mice co-administrated with antioxidant vitamins. In these data which provide with a reliable evidence on their antioxidantal effects to aflatoxicosis.
The objective of this study was to examine the effects of vitamin C on the formation of aflatoxin $B_1$ ($AFB_1$)-DNA adduct and $AFB_1$-induing cellular oxidative damage in rat livers treated with radiation and $AFB_1$. Six-week-old male Sprague-Dawley rats were randomly divided into five groups: the control group, the $AFB_1$-treated group, the group treated with $AFB_1$ and vitamin C, the group treated with X-ray and $AFB_1$, and the group treated with X-ray and $AFB_1$ with vitamin C. On the first day of the experiment, only one dose of X-rays was exposed to the entire liver at 1,500 cGy. Next, vitamin C was injected at 10 mg/kg body weight via intraperitoneal injection, followed an hour later by the administration of 0.4 mg/kg of $AFB_1$ via intraperitoneal injection. These treatments were administered every three days for 15 days. On the 16th day, the animals were sacrificed. The $AFB_1$ contents of the rat sera were determined via indirect competitive ELISA. In the quantitative analysis of $AFB_1$ in the rat sera via ELISA, $5.17{\pm}0.34ng/mL$ of $AFB_1$ was detected in the $AFB_1$-treated groups, but the amount decreased more significantly to $3.23{\pm}0.76ng/mL$ in the groups treated with $AFB_1$ and vitamin C (p<0.01) than in the $AFB_1$-treated groups. The effect of vitamin C on $AFB_1$-DNA adduct formation was determined via ELISA. The values of $AFB_1$-DNA adduct formation were $9.38{\pm}0.41ng/mL$ in the $AFB_1$-treated groups, but the amount decreased more significantly to $5.28{\pm}0.32ng/mL$ in the groups treated with $AFB_1$ and vitamin C (p<0.01) than in the $AFB_1$-treated groups. Immunohistochemistry revealed that the accumulation of the $AFB_1$ was not observed in the normal liver tissue (G1). The $AFB_1$-positive materials were observed in the central vein and the portal vein of the liver tissue from the $AFB_1$(G2) treatment or the X-ray and $AFB_1$(G4) co-treatment, but the $AFB_1$-positive materials were observed weakly in the group treated with vitamin C (G3 and G5). These results indicate that vitamin C had ameliorating effects on the $AFB_1$ accumulation of liver tissue.
This study was conducted to determine the effects of vitamin C on the activity of liver function enzymes and electromicrographic changes in white rats treated with aflatoxin $B_1(AFB_1)$ or X-ray and $AFB_1$. Six week-old male Sprague-Dawley rats were randomly divided into five groups: a control group, $AFB_1$ treated group, $AFB_1$ treated group with vitamin C, X-ray and $AFB_1$ co-treated group, X-ray and $AFB_1$ co-treated group with vitamin C. On the first day of the experiment, only one dose of X-rays was exposed to the entire liver at 1,500 cGy. Next, vitamin C was injected at 10 mg/kg body weight by intraperitoneal injection, followed 1 hr later by the administration of 0.4 mg/kg of $AFB_1$ by intraperitoneal injection. These treatments were then administered every three days over a period of 15 days. On the 16th day of treatments, the animals were sacrificed. Analysis of the activity of the liver function enzymes, GOT, ALK phatase and LDH, in the sera of rats revealed that they were somewhat increased by $AFB_1$ treatment, X-ray and $AFB_1$ co-treatment when compared to the control group. Furthermore, the activity of these enzymes decreased in response to administration of vitamin C. Especially, the levels of GOT were remarkably decreased in the $AFB_1$ treated group treated with vitamin C when compared to the group treated with $AFB_1$ alone(p<0.001). Electromicrographic analysis revealed cloudy swelling, necrosis, vesicular degeneration and fat accumulation of hepatocytes in response to treatment with $AFB_1$ or co-treatment with X-ray and $AFB_1$. However, the destruction of hepatic cells was considerably lower in the vitamin C-treated group. These results indicate that vitamin C had ameliorating effects on the hepatic cell damage.
Cyclopiazonic acid(CPA) known as stimulating the release of intracellular calcium, aflatoxin $B_1(AFB_1)$ causing gastrointestinal hemorrhage frequently were used as model toxic mycotoxins in these studies. First of all, the effects of various mycotoxins on the platelet aggregation response were determined. The effects of mycotoxins on the ATP release from platelet by aggregating factors were investigated. The results and conclusions obtained from these studies are : 1) CPA promoted ADP, collagen, thrombin, A.A. and PAF-induced rabbit platelet aggregation. $AFB_1$ inhibited collagen, A.A. and PAF-induced rabbit platelet aggregation only. 2) CPA increased both aggregation and disaggregation time, whereas $AFB_1$ decreased in a dose dependent manner. 3) CPA increased ADP, thrombin, A.A. and PAF-induced ATP release. $AFB_1$ increased A.A.-induced ATP release and decreased PAF-induced release in a dose dependent manner. In conclusion, CPA promoted platelet aggregation by the increase of ATP. Antiaggregating effects of AFB1 may be due to decreases of ATP. These data provide the basis for the future study of roles of ATP release in platelet aggregation.
Microsomes from human liver sample HL 110 oxidized aflatoxin $B_1$$(AFB_1)$ to $AFB_1$ exo-8, 9-epoxide which was detected as a glutathione (GSH) conjugate with excess GSH S-transferase and to aflatoxin $Q_1$ ($AFB_1$; 3$\alpha$-hydroxyafiatoxin $B_1$), and testosterone to 6$\beta$-hydroxytestosterone. Anti-P450 3A4 nearly completely inhibited all of the reactions. Some fiavonoids inhibited all of the reactions. While other fiayonolds stimulated 8, 9-epoxidation and inhibited 3$\alpha$-hydroxylation. Gestodene inhibited all of the reactions when gestodene was metabolized by human liver microsomal P450 3A4 prior to adding substrate. But, ges-todene was added in the enzyme mixtures in the presence of $AFB_1$, it could not inhibit 8, 9-epoxidation of $AFB_1$. Nifedipine and troleandomycin inhibited both of the reactions of $AFB_1$ but only 3$\alpha$-hydroxylation was inhibited by the oxidation product of nifedipine. Although, troleandomycin was known as a mechanism-based inhibitor, the chemical did not show any detectable inhibitory effect on 6$\beta$-hydroxylation of testosterone. The results suggest that there are several different substrate-binding sites on P450 3A4.
By the 505 chromotest which utilized Escherichia bolt PQ 37, Korean medicinal plants had been screened to Investigate the antimutagenic effect to aflatoxin B1(AFBl). Ikmocho(IMC, Leonurus sibiricus L.) was extracted with hot water. The extract was not found to be mutagenic in the Salmonella mutation test with or without metabolic activation, and the extract was showed to possess the antimutagenic properties towards AFB1-induced metation. The mutagenicity of AFB1 was inhibited by methanol soluble fracstion (IMC-MS) in dose-dependent. However, water-soluble fraction exhibited comutagenic activity. The greatest inhibitory effect of IMC-MS on AFB1 mutagenicity occurred when IMC-MS was first incubated, AFB1 followed by a second incubation with the cells and 59 mixture. Also lower inhibition was occurred when S9 mixtures were first incubated, with IMC-MS followed by a second incubation with AFBI. The results of the sequential incubation study support the probability that one mechanism of inhibition could involve the formation of chemical complex between IMC-MS and AFB1 rather than deactivation of S9 enzyme.
Lee, Sung Deuk;Yu, In Sil;Jung, Kweon;Kim, Yeon Sun
Mycobiology
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v.42
no.4
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pp.339-345
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2014
During 2011~2013, a total of 729 samples for 19 types of medicinal plant were collected from Seoulyekryungsi in Seoul, Korea, and investigated for the presence of aflatoxins. The samples were analyzed using immunoaffinity column cleanup and high-performance liquid chromatography coupled to a fluorescence detector after post-column derivatization. Aflatoxins were found in 124 out of the 729 analyzed samples: 65 containing aflatoxin B1 (AFB1), 24 with aflatoxin B2 (AFB2), 15 with aflatoxin G1 (AFG1), and 20 samples with aflatoxin G2 (AFG2). The ranges for positive samples were $0.1{\sim}404.7{\mu}g/kg$ for AFB1, $0.1{\sim}10.0{\mu}g/kg$ for AFB2, $0.1{\sim}635.3{\mu}g/kg$ for AFG1, $0.1{\sim}182.5{\mu}g/kg$ for AFG2, and $0.1{\sim}1,043.9{\mu}g/kg$ for total aflatoxins. Most of the medicinal plant samples (721, 98.9%) were below legal limits, but 8 samples exceeded the legal limits of 10 and $15{\mu}g/kg$ established by the Korean standard for AFB1 and total aflatoxins (the sum of AFB1, AFB2, AFG1 and AFG2), respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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