In mammals, fatty acid utilization is initiated by activation of fatty acid, catalyzed by acyl-CoA synthetase(ACS, EC6.2.1.3). This enzyme reaction is essential in fatty acid metabolism, since mammalian fatty acid synthetase contains a specific thioesterase to produce fatty acid as th $\varepsilon$ final reaction product. Acyl-CoA, the product of ACS, is utilized in various metabolic pathways including membrane biogenesis, energy production and fat deposition. (omitted)
Long chain fatty acids (LCFAs) are transported into cells via plasma transporters, are activated to fatty acyl-CoA by fatty acyl-CoA synthase (ACS), and enter mitochondria via the carnitine system (CPT1/CACT/CPT2). The mitochondrial carnitine system plays an obligatory role in β-oxidation of LCFAs by catalyzing their transport into the mitochondrial matrix. Fatty acyl-CoAs are oxidized via the β-oxidation pathway, which results in the production of acetyl-CoA. The acetyl-CoA can be imported into the tricarboxylic acid (TCA) cycle for oxidation in the mitochondrial matrix or can be used for malonyl-CoA synthesis by acetyl-CoA carboxylase 2 (ACC2) in the cytoplasm. In skeletal muscle, ACC2 catalyzes the carboxylation of acetyl-CoA to form malonyl-CoA, which is a potent endogenous inhibitor of carnitine palmitoyltransferase 1 (CPT1). Thus, ACC2 indirectly inhibits the influx of fatty acids into the mitochondria. Fatty acid metabolism can also be regulated by malonyl-CoA-mediated inhibition of CPT1.
Mitsuhashi, T.;Mitsumoto, M.;Yamashita, Y.;Ozawa, S.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.1
no.2
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pp.99-106
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1988
A high performance liquid chromatographic procedure is described for the direct determination of the picomole amount of palmitoyl-Coenzyme A and stearoyl-Coenzyme A, using a stainless steel column packed with C-18 derivatized porous silica ($5{\mu}m$), an isocratic elution with a mixture of 33 mM $KH_2PO_4$/acetonitrile as a mobile phase and a UV detector. The long-chain acyl-Coenzyme A esters were determined in incubated microsomal fractions of a bovine liver to demonstrate the utility of this method for monitoring acyl-CoA synthesis in biological samples. The reaction rate of palmitate was higher than that of stearate. After a 60 minute incubation period, the generated amount of palmitoyl-Coenzyme A and stearoyl-Coenzyme A were approximately 70 and 20 n mol/mg micresomal protein, respectively. The advantage of this method are in that no decomposition of the CoA esters is involved, while the constituent molecular species is detected.
The synthesis of acyl-CoA catalyzed by acyl-CoA synthetase (ACS, EC 6.2.1.3) from fatty acid, ATP, and CoA is a crucial reaction in mammalian fatty acid metabolism. In arachidonate metabolism, acyl-CoA synthetase(ACS) plays a key role in the esterification of free arachidonate into membrane phospholipids. Following its release by the action of calcium dependent phospholipase, free arachidonate is believed to be rapidly converted to arachidonoyl-CoA and reesterified into phospholipids in order to prevent excessive synthesis of eicosanoids. In previous studies, we have characterized five ACSs (designated as ACS1-5) with different tissue distribution. ACS1, ACS2, and ACS5 are similar in structure and fatty acid preference, and completely different from ACS3 and ACS4. The latter are arachidonate-preferring enzymes closely related in structure but expressed in different tissues: ACS3 mRNA is highly expressed in the brain and the mRNA for ACS4 is expressed in steroidogenic tissues including adrenal gland, ovary, and testis. To learn more about the potential function of ACS4 in arachidonate metabolism, we have produced knock-out mice for ACS4 gene. ACS4+/- females become pregnant less frequently and produce small litters with extremely low transmission of the disrupted alleles. Striking morphological changes including extremely enlarged uterine filled with numerous proliferative cysts of various size were detected in ACS4+/- females. Furthermore, marked accumulation of prostaglandins were seen in the uterus of heterozygous females. These results indicate that ACS4 is critical for the uterine arachidonate metabolism and heterozygous disruption of its gene lead to impaired pregnancy.
Acyl-CoA synthetase 4(ACSL4) is an arachidonate-preferring enzyme abundant in steroidogenic tissues and postulated to modulate eicosanoid production. The human and mouse ACSL4 gene are mapped on chromosome X. The female mice heterozygous for ACSL4 deficiency became pregnant less frequent1y and produced small litters, with 40% of embryos surviving gestation. In this study, we examined the regulation of ACS4 by estradiol-$17{\beta}$ and progesterone (P4) in the human endometrial cancer cell line HTB-1B. ACSL4 mRNA was increased in a dose-dependent manner. Also, expression of ACSL4 gene was up-regulated in a time-dependent manner in HTB-1B cells. However, combined treatment with progesterone and estradiol-$17{\beta}$ modestly decreased the levels of ACS4L mRNA as compared with the estradiol-$17{\beta}$ and progesterone respectively. Overall, these results suggest that the ACSL4 gene is regulated by progesterone and estradiol-$17{\beta}$ in the HTB-1B cells.
The nucleotide sequence of the luxC gene coding for lux-specific fatty acyl-CoA reductase and the upstream DNA (325bp)of the structural gene from bioluminescent bacterium, Photobacterium phosphoreum, has been deternubed. An open reading frame extending for more than 20 codons in 325 bp DNA upstream of luxC was not present in both directions. The lux gene can be translated into a polypeptide of 54 kDa and the amino acid sequences of lux specific reductases of P. phosphoreum shares 80, 65, 58, and 62% identity with those of the Photobacterium leiognathi, Vibrio fischeri, Vibrio harveyi, and Xehnorhabdus luminescenens reductases, respectively. Analyses of codon usage, showing that a high frequency (2.3%) of the isoleucine codon, AUA, in the luxC gene compared to that found in Escherichia coli genes (0.2%) and its absence in the luxA and B genes, suggested that the AUA codon may play a modulator role in the expression of lux gene in E. coli. The structural genes (luxC, D, A, B, E) of the P. phosphoreum coding for luciferase (${\alpha}$,${\beta}$) and fatty acid reductase (r, s, t) polypeptides can be expressed exclusively in E. coli under the T7 phage RNA polymerase/promoter system and identificationof the [35S]methionine labelled polypeptide products. The degree of expression of lux genes in analyses of codon usage. High expression of the luxC gene could only be accomplished in a mutant E. coli 43R. Even in crude extracts, the acylated acyl-CoA reductase intermediate as well as acyl-CoA reductrase activities could be readily detected.
A novel series of imidazo[1,2-$\alpha$]pyridines was designed, synthesized, and tested for their ability to inhibit acyl- CoA:cholesterol acyltransferase. Preliminary lead optimization efforts resulted in the identification of ACAT inhibitors represented by analogues 5b, 5c, 6a, 6c, 7b, and 7c. The ACAT inhibitory activity of these compounds was further established by potent inhibition of cholesteryl ester formation in HepG2 cells by a representative analogue 7b.
Park, Hyo-Young;Lee, Sang-Mi;Jeong, Young-Hee;Moon, Seung-Ju;Kang, Man-Jong
Proceedings of the KSAR Conference
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2004.06a
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pp.225-225
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2004
Acyl-CoA synthetase 4(ACS4) is an arachidonate-preferring enzyme aboundant in steroidogenic tissues and postulated to modulate eicosanoid production. Most of arachidonate present in cells is esterified predominantly in phospholipids. After its release by the action of calcium-dependent phospholipases, arachidonate can be converted to prostaglandins, thromboxanes, and leukotrenes via the cyclooxygenas and lipoxygenase pathways, respectively, depending on the cell type.(omitted)
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1999.07a
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pp.37-40
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1999
cDNAs for long- and short-chain acyl-CoA oxidases in fatty acid $\beta$-oxidation were isolated and were characterized their enzymatical and molecular properties. Both oxidases were exclusively localized in glyoxysomes, indicating that glyoxysomes can completely metabolize fatty acids to acyl-CoA by their cooperative action. In order to clarify the regulatory mechanisms underlying degradation of storage oil, we tried to obtain glyoxysome-deficient mutants of Arabidopsis. We screened 2,4-dichlorophenoxybutyric acid (2,4-DB) mutants of Arabidopsis which have defects in glyoxysomal fatty acid $\beta$-oxidation. Four mutants can be classified as carrying alleles at three independent loci, which we designated pedl, ped2, and ped3, respectively (where ped stands for peroxisome defective). The characteristics of these ped mutants are described.
Acyl carrier protein is related with fatty acid biosynthesis in which specific enzymes are involved. Especially, acyl carrier protein (ACP) is the key component in the growing of fatty acid chain. ACP is the small, very acidic protein that covalently binds various intermediates of fatty acyl chain. Acylation of ACP is mediated by holo-acyl carrier protein synthase (ACPS), which transfers the 4'PP-moiety of CoA to the 36th residue Ser of apo ACP. Acyl carrier protein P (ACPP) is one of ACPs from Helicobacter plyori. The NMR structure of ACPP consists of four helices, which were reported previously. Here we show how acylation of ACPP can affect the overall structure of ACPP and figured out the contact surface of ACPP to acyl chain attached during expression of ACPP in E. coli. Based on the chemical shift perturbation data, the acylation of ACCP seems to affect the conformation of the long loop connecting helix I and helix II as well as the second short loop connecting helix II and helix III. The significant chemical shift change of Ile 54 upon acylation supports the contact of acyl chain and the second loop.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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