The aim of this study is to determine the effects of using emulsion manufactured with soybeans (ES) to substitute chicken breast in Vienna sausages. Four types of Vienna sausages (S1: 10% ES and 50% chicken, S2: 20% ES and 40% chicken, S3: 30% ES and 30% chicken, and S4: 40% ES and 20% chicken) for this study were made. The pH, color, proximate composition, sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), microphotographs, cooking yields, and texture profile analysis of sausages were examined. The pH value of uncooked and cooked sausages increased significantly with increasing ES content (p<0.05). The crude protein contents of S2, S3, and S4 were significantly higher than that of the control (p<0.05). Furthermore, the SDS-PAGE results showed that α-conglycinin, β-conglycinin, and the acidic subunit of glycinin all increased with increasing ES content. Microphotographs revealed that increasing the ES content decreased the size of fat globules. The cooking yields of samples increased significantly with increasing ES content (p<0.05). The hardness values of ES treated samples were significantly lower than that of the control (p<0.05). Therefore, 30% substitute of chicken breast with ES can improve the quality and structure of Vienna sausage, without inducing critical defects.
분획(分劃)된 대두(大豆) 7S 및 11S 단백질(蛋白質)의 단백질분해효소(蛋白質分解酵素)(trypsin, alcalase 및 pronase)에 대한 반응성(反應性)을 동력학변수(動力學變數)인 Km 과 Vmax 및 가수분해도(加水分解度)(DH)를 측정(測定)하여 검토(檢討)하였으며 가수분해물의 전기영동분석(電氣泳動分析)을 실시하였다. 효소(酵素)의 대두단백질(大豆蛋白質)에 대한 친화력(親化力)은 대체로 가열처리(加熱處理)된 단백질(蛋白質)은 기질농도(基質濃度) 1.5(w/w) 이하(以下)에서 가수분해(加水分解)에 대하여 기질조해작용(基質阻害作用)을 보였다. 1시간(時間) 가수분해(加水分解)에 따라 alcalase에 의하여 가장 큰 가수분해도(加水分解度)가 얻어졌으며 7S 단백질(蛋白質)에 대하여 60% 및 11S 단백질(蛋白質)에 대하여 80%였다. Trypsin 은 가열처리(加熱處理)되지 않은 단백질(蛋白質)에는 11S 단백질(蛋白質)의 acidic subunit 이외에는 거의 작용(作用)하지 못했으며 alcalase는 특이적으로 2S 단백질(蛋白質)에 변화(變化)를 가져오는 것으로 전기영동분석(電氣泳動分析)에서 나타났다.
Development of mouse fetus brains can be defined morphologically and functionally by three developmental stages, embryo day (ED) 16, postnatal stage one week and eight weeks. These defined stages of brain development may be closely associated with differential gene expression rates due to limited cellular resources such as energy, space, and free water. Complex patterns of expressed genes and proteins during brain development suggests the changes in relative concentrations of proteins rather than the increase in numbers of new gene products. This study was designed to evaluate early protein expression pattern in mouse fetus brain. The mouse brain proteome of fetus at ED 15.5, and 19.5 was obtained using 2-dimensional gel electrophoresis (DE). Analysis of the 2-DE gels in pH 3-10 range revealed the presence of 15 differentially expressed spots, of which 11 spots were identified to be known proteins following MALDI-TOF analysis; 3 spots were up-regulated and 8 spots were down-regulated in the mouse fetus brain at ED 15.5. UP-regulated proteins were identified as MCG18238, isoform M2 of pyruvate kinase isozymes M1/M2, isoform 2 of heterogeneous nuclear ribonucleoprotein K, heterogeneous nuclear ribonucleoprotein H2, creatine kinase B-type, 40S ribosomal protein SA and hemoglobin subunit beta-H1. Down-regulated proteins were putative uncharacterized protein, lactoylglutathione lyase and secreted acidic cysteine rich glycoprotein. Our results revealed composite profiles of mouse fetus brain proteins related to mouse fetus development by 2-DE analysis implying possible roles of these proteins in neural differentiation.
Activity staining on the native polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) of a cell-free extract of Rhodococcus sp. TK6, grown in media containing alcohols as the carbon source, revealed at least seven isozyme bands, which were identified as alcohol dehydrogenases that oxidize cyclohexanol to cyclohexanone. Among the alcohol dehydrogenases, cyclohexanol dehydrogenase II (CDH II), which is the major enzyme involved in the oxidation of cyclohexanol, was purified to homogeneity. The molecular mass of the CDH II was determined to be 60 kDa by gel filtration, while the molecular mass of each subunit was estimated to be 28 kDa by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The CDH II was unstable in acidic and basic pHs, and rapidly inactivated at temperatures above $40^{\circ}C$ . The CDH II activity was enhanced by the addition of divalent metal ions, like $Ba^2+\;and\;Mg^{2+}$. The purified enzyme catalyzed the oxidation of a broad range of alcohols, including cyclohexanol, trans-cyclohexane-1,2-diol, trans-cyclopentane-l,2-diol, cyclopentanol, and hexane-1,2-diol. The $K_m$ values of the CDH II for cyclohexanol, trans-cyclohexane-l,2-diol, cyclopentanol, trans-cyclopentane-l,2-diol, and hexane-l,2-diol were 1.7, 2.8, 14.2, 13.7, and 13.5 mM, respectively. The CDH II would appear to be a major alcohol dehydrogenase for the oxidation of cyclohexanol. The N-terminal sequence of the CDH II was determined to be TVAHVTGAARGIGRA. Furthermore, based on a comparison of the determined sequence with other short chain alcohol dehydrogenases, the purified CDH II was suggested to be a new enzyme.
과요오드산-산화가용성전분은 Aspergillus awamori a-glucosidase의 pH 안정성을 증가시켰다. 40℃에서 두시간 항온시킨 결과, 과요오드산-산화가용성전분이 존재하지 않을 때의 효소는 pH 3∼7, 존재할 때의 효소는 pH 3∼9, 50℃에서 과요오드산-산화가용성전분이 존재하지 않을 때의 효소는 pH 3∼6, 존재할 때의 효소는 pH 3∼8 범위에서 안정하였다. 60℃에서는 과요오드산-산화가용성전분의 존재여부에 관계없이 효소는 pH 3∼6 범위에서 안정하였으나 pH 5와 6에서 과요오드산-산화가용성전분이 존재하면 효소의 잔존활성은 존재하지 않을 때보다 20% 더 높았다. 과요오드산으로 변형한 효소는 pH 9에서 활성이 70% 남았으나 변형하지 않은 효소는 남지 않아서 변형으로 안정성이 증가된 것으로 나타났다. 변형효소는 50℃에서 12%, 80℃에서 7%의 활성이 남았으나 변형시키지 않은 효소는 50℃에서 8%가 남고, 70℃이상에서는 남지 않았다. HPLC 분석 결과 pH 2 이하 및 9 이상에서는 효소의 서브유니트가 분리되고, 변성 중합되었다. 변형하지 않은 효소는 산성과 알칼리성 pH에서 변성되어 단백질의 구조가 무너졌지만 과요오드산-산화가용성전분이 존재하면 변성되지 않았다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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