This study investigated the effect of naringin, a flavonoid, on the bioavailability of etoposide administered orally to rats. Etoposide (6 mg/kg) was administered orally to rats alone or with naringin (1, 4 or 12 mg/kg). Compared with the control group, the co-administration of etoposide with 4 and 12 mg/kg of naringin significantly (p<0.05) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak plasma concentration ($C_{max}$) of the oral etoposide. Consequently, the absolute bioavailability (AB) of etoposide in the presence (4 and 12 mg/kg) of naringin was significantly (p<0.05) increased by $9.4{\sim}10.6%$ compared with the control group (7.4%). The relative bioavailability (RB) of etoposide was increased 1.13- to 1.44-fold compared to the control group. Enhanced bioavailability of etoposide might be due to inhibition of both cytochrome P450 (CYP) 3A4 in the intestine or liver and P-glycoprotein (P-gp) transport efflux of etoposide in the intestinal membrane. This data indicate that careful consideration of the dosage for therapy with etoposide is required in a case of clinical application of the co-administration of etoposide and naringin.
The purpose of this study was to investigate the effects of morin, an antioxidant, on the bioavailability of doxorubicin (DOX) in rats. Thus, DOX was administered intravenously (10 mg/kg) or orally (50 mg/kg) with or without oral morin (0.5, 3 and 10 mg/kg). In the presence of morin, the total area under the plasma concentration-time curve (AUC) of DOX was significantly greater than that of the control. In the presence of 3 and 10 mg/kg of morin, the peak concentration $C_{MAX}$) was significantly higher than that of the control. Consequently, the absolute bioavailability (AB) of DOX in the presence of morin was 3.7-8.3%, which was significantly enhanced compared with those of the control group (2.7%). The relative bioavailability (RB) of DOX was 1.36 to 3.02 times higher than those of the control group. Compared to the intravenous control, the presence of morin increased the AUC of DOX, but was not significantly affected. The enhanced bioavailability of oral DOX by oral morin may be due to the inhibition of both P-glycoprotein (P-gp) and cytochrome P450 (CYP) 3A in the intestine and/or liver by morin. This result may suggest that the development of oral DOX combination with morin is feasible, which is more convenient than the i.v. dosage forms. The present study raised the awareness about the potential drug interactions by concomitant use of DOX with morin.
The purpose of this study was to investigate the effect of naringin, one of flavonoids, on the pharmacokinetics and bioavailability of nimodipine in rabbits. Pharmacokinetic parameters of nimodipine were determined in rabbits after oral administration of nimodipine (16 mg/kg) with or without naringin (1, 5 or 15 mg/kg). Nimodipine was analyzed by high performance liquid chromatography using Hypersil ODS column. Naringin significantly (p<0.05) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentration ($C_{max}$) of nimodipine at 5 and 15 mg/kg. The absolute bioavailability (AB%) of nimodipine by prescence of naringin (5 or 15 mg/kg) increased from 32.2-36.9% (p<0.05) compared to the control (22.0%). However, presence of naringin had no significant effect on the elimination rate constant ($K_{el}$) of nimodipine. There were no apparent changes of the time of peak concentration ($T_{max}$) of nimodipine by coadministration. These results suggest that the increased bioavailability and the significant changes of these pharmacokinetic parameters of nimodipine by naringin may be attributed to the potential of narigin to inhibit cytochrome P450 (CYP) 3A4 and P-glycoprotein efflux pump in the liver and intestinal mucosa.
The purpose of this study was to investigate the effect of naringenin, one of flavonoids, on the pharmacokinetics and bioavailability of diltiazem (15 mg/kg) after oral administration of diltiazem with or without naringenin (2.0, 10 and 20 mg/kg) in rabbits. Coadministration of naringenin increased the absorption rate constant $(K_a)$, the area under the plasma concentration-time curve (AUC) and peak concentration $(C_{max})$ of diltiazem compared to the control group, but only significantly (p<0.05) by 10mg/kg of naringenin coadministration. The absolute bioavailability (AB%) of diltiazem by coadministration ranges from 7.8% to 10.3%, increased more than control (7.2%), and relative bioavailability (RB%) of diltiazem is increased from 1.08- to 1.43-fold. Coadministration caused on significant changes in the terminal half-lives $(t_{1/2})$ and the time to reach the peak concentration $(T_{max})$ of diltiazem. On the other hand, coadministration of naringenin increased the AUC desacetyldiltiazem, significantly at the dose of 10mg/kg. But the metabolite ratio (MR) was decreased, significantly at 10mg/kg of naringenin. Based on these results, we can make a conclusion that the increased bioavailability and the significant changes of these pharmacokinetic parameters might be due to naringenin, which possess the potency to inhibit the metabolizing enzyme (CYP3A4) in the liver and intestinal mucosa, and also inhibit the P-glycoprotein efflux pump in the intestinal mucosa.
The purpose of this study was to investigate the effect of epigallocatechin gallate (EGCG) on the pharmacokinetics of nimodipine in rats. Pharmacokinetic parameters of nimodipine were determined in rats after oral and iv administration of nimodipine with or without EGCG and also the effect of EGCG on the cytochrome P450 (CYP) 3A4 and P-glycoprotein (P-gp) activity were evaluated. EGCG inhibited CYP3A4 and P-gp activity. EGCG significantly increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) and peak plasma concentration ($C_{max}$) of nimodipine. The absolute bioavailability (AB%) and relative bioavailability (RB%) of nimodipine by EGCG were increased by 16% and by 48%, respectively, compared to the control. In contrast, EGCG did not affect the intravenous pharmacokinetics of nimodipine. Based on these results, the increased bioavailability of nimodipine might be due to inhibition of CYP3A4 in the small intestine and/or in the liver and inhibition of P-gp in the small intestine by EGCG.
The aim of this study is to investigate the effect of apigenin on the pharmacokinetics of tamoxifen in rats. Tamoxifen was administered orally (10 mg/kg) or intravenously (2 mg/kg) without or with oral administration of apigenin (0.4, 2.0 or 8.0 mg/kg) to rats. The effect of apigenin on the P-glycoprotein (P-gp) and CYP3A4 activity was also evaluated. Apigenin inhibited CYP3A4 enzyme activity with 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of 1.8 ${\mu}M$. In addition, apigenin significantly enhanced the cellular accumulation of rhodamine 123 in MCF-7/ADR cells overexpressing P-gp. The plasma concentrations of tamoxifen were increased significantly by apigenin compared to control. The areas under the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentrations ($IC_{max}$) of tamoxifen with apigenin were significantly higher than those of the control group. Consequently, the relative bioavailability (RB%) of tamoxifen with apigenin was 2-3-fold higher than the control, and absolute bioavailability (AB%) of tamoxifen were significantly higher (p<0.05 with co-administration, p<0.01 with pretreatment) than those of the control. The increased bioavailability of tamoxifen in rats with apigenin might be associated with the inhibition of an efflux pump P-glycoprotein and CYP3A4 by apigenin. From these results, dosage regimen of tamoxifen may be need to adjust when concomitantly administered with apigenin.
The aim of this study was to investigate the effect of morin on the bioavailability of nimodipine after administering nimodipine (15 mg/kg) orally to rabbits either co-administered or pretreated with morin (2, 10 and 20 mg/kg). The plasma concentrations of nimodipine in the rabbits pretreated with morin were increased significantly (p<0.05 at 10 mg/kg, p<0.01 at 20 mg/kg) compared with the control, but the plasma concentrations of nimodipine co-administered with morin were not significant. The areas under the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentrations $(C_{max})$ of the nimodipine in the rabbits pretreated with morin were significantly higher (p<0.05 at 10 mg/kg, p<0.01 at 20 mg/kg), but only the $C_{max}$ of nimodipine coadministered with morin 10 mg/kg was increased significantly (p<0.05). The absolute bioavailability $(A.B\%)$ of nimodipine in the rabbits pretreated with morin was significantly (p<0.05 at 10 mg/kg, p<0.01 at 20 mg/kg) higher $(54.1-65.0\%)$ than the control $(36.7\%)$. The increased bioavailability of nimodipine in the rabbits pretreated with morin might have been resulted from the morin, which inhibits the efflux pump P-glycoprotein and the first-pass metabolizing enzyme by cytochrome P-450 3A4 (CYP 3A4).
This study was to investigate the effect of baicalein, an antioxidant, on the bioavailability of nicardipine after orally or intravenously administered nicardipine in rats. Nicardipine was administered orally (12 mg/kg) or intravenously (4 mg/kg) with or without orally administered baicalein (0.4, 2 or 10 mg/kg) to rats. In the inhibitory effect of baicalein on CYP3A4 activity, baicalein inhibited CYP3A4 activity with $IC_{50}$ values of 9.2 ${\mu}M$. The cell-based P-gp activity test using rhodamine-123 also showed that baicalein (30-10 ${\mu}M$, p<0.01) significantly inhibited P-gp activity. Compared with the control group (given nicardipine alone), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) was significantly (2 mg/kg, P<0.05; 10 mg/kg, P<0.01) increased by 25.9-60.0%, and the peak concentration ($C_{max}$) was significantly (10 mg/kg, P<0.01) increased by 40.0% in the presence of baicalein after orally administration of nicardipine. Consequently, the relative bioavailability (R.B.) of nicardipine was increased by 1.26- to 1.60-fold and the absolute bioavailability (A.B.) was significantly (2 mg/kg, P<0.05; 10 mg/kg, P<0.01) increased by 26.0-59.9%. Compared to the i.v. control, baicalein did not significantly change pharmacokinetic parameters of nicardipine in i.v. administration. Accordingly, the enhanced oral bioavailability of nicardipine might be mainly due to increased intestinal absorption caused by P-gp inhibition rather than to reduced elimination of nicardipine by baicalein. The increase in the oral bioavailability might be mainly attributed to enhanced absorption in the small intestine via the inhibition of P-gp and reduced first-pass metabolism of nicardipine via the inhibition of the CYP3A subfamily in the small intestine and/or in the liver by baicalein. Based on these results, nicardipine dosage should be adjusted when given concomitantly with baicalein.
The aim of this study is to investigate the effect of naringin on the pharmacokinetics of tamoxifen in rats. Tamoxifen (10 mg/kg) was administered orally 0.5 h and 3 days after oral administration of naringin (5 mg/kg). The plasma concentrations of tamoxifen were increased significantly tv naringin compared to control. Absorption rate constant ($K_a$) of tamoxifen with naringin was increased significantly compared to that of the control. The areas under the plasma concentration-time curve (AUC) and the peak concentrations ($C_{max}$) of tamoxifen with naringin were significantly higher than those of the control. Consequently, the relative bioavailability (R.B${\%}$) of tamoxifen with naringin was 2-3-fold higher than the control, and absolute bioavailability (A.B${\%}$) of tamoxifen were significantly higher (p<0.05 with coadministration, p<0.01 with pretreatment) than those of the control. The increased bioavailability of tamoxifen in rats with naringin might be associated with the inhibition by naringin of an efflux pump P-glycoprotein and the first-pass metabolizing enzyme CYP3A4.
Cho, Kyung Hee;Lee, Hee Joo;Choie, Hyung Sik;Lee, Kyoung Ryul;Dueker, Stephen R.;Shin, Young G.
YAKHAK HOEJI
/
v.57
no.6
/
pp.412-419
/
2013
Drug discovery and development processes are time consuming and costly endeavors. It has been reported that on average it takes 10 to 15 years and costs more than $ 1billion to bring a molecule from discovery to market. Compounds fail for various reasons but one of the significant reasons that accounts for failures in clinical trials is poor prediction/understanding of pharmacokinetics and drug metabolism in human. In an effort to improve the number of compounds that exhibit optimal absorption, distribution, metabolism, elimination (ADME), and pharmacokinetic properties in human, drug metabolism, pharmacokinetic scientists have been continually developing new technologies and compound screening strategies. Over the last few years, accelerator mass spectrometry (AMS) and its applications to preclinical/clinical pharmacokinetics and ADME studies have significantly increased, particularly for new chemical/biological entities that are difficult to support with conventional radiolabel studies. In this review, the application of AMS for micro-dosing, micro-tracer absolute bioavailability, mass balance and metabolite profiling studies will be discussed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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