Park, Choon-Ok;Kang, Young-Jin;Lee, Hoi-Young;Chang, Ki-Churl
The Korean Journal of Pharmacology
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v.31
no.3
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pp.279-284
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1995
The aim of the present study was to know whether exogenously administered nitric oxide (NO) may differently modulate muscle mechanics between heart and aorta. We used PIANO method to generate NO. In isolated rat atrial tissues, neither heart rate nor contractility was affected by PIANO $(STZ,\;30{\sim}100\;{\mu}M)$. Only high concentration $(100\;{\mu}M)$ of 8-bromo cyclic GMP slightly depressed cardiac contractility. However, the same concentrations of 8-Br cGMP and PIANO significantly relaxed the rat thoracic aorta contracted with phenylephrine $(0.1\;{\mu}M)$. In isolated rabbit cardiac atrial myocytes, the amplitude of calcium currents were decreased in the whole voltage range by the presence of streptozotocin, which was further potentiated by UV light. Calcium currents were also decreased in those preparations treated with bradykinin, nitroprusside and 8-Br cGMP. These findings suggest that exogenous NO may modulate calcium current in cardiac myocyte. However, it remains why this does not affect myocardial contractility and heart rate. We concluded that NO may differently regulate calcium signal between aorta and heart muscle.
Inhibition of $K^+$ outward currents by linopirdine in the outer hair cells (OHCs) of circling mice (homozygous (cir/cir) mice), an animal model for human deafness (DFNB6 type), was investigated using a whole cell patch clamp technique. Littermate heterozygous (+/cir) and ICR mice of the same age (postnatal day (P) 0 -P6) were used as controls. Voltage steps from -100 mV to 40 mV elicited small inward currents (-100 mV~-70 mV) and slow rising $K^+$ outward currents (-60 mV~40 mV) which activated near -50 mV in all OHCs tested. Linopirdine, a known blocker of $K^+$ currents activated at negative potentials ($I_{K,n}$), did cause inhibition at varying degree (severe, moderate, mild) in $K^+$ outward currents of heterozygous (+/cir) or homozygous (cir/cir) mice OHCs in the concentration range between 1 and $100{\mu}m$, while it was apparent only in one ICR mice OHC out of nine OHCs at $100{\mu}m$. Although the half inhibition concentrations in heterozygous (+/cir) or homozygous (cir/cir) mice OHCs were close to those reported in $I_{K,n}$, biophysical and pharmacological properties of $K^+$ outward currents, such as the activation close to -50 mV, small inward currents evoked by hyperpolarizing steps and TEA sensitivity, were not in line with $I_{K,n}$ reported in other tissues. Our results show that the delayed rectifier type $K^+$ outward currents, which are not similar to $I_{K,n}$ with respect to biophysical and pharmacological properties, are inhibited by linopirdine in the developing (P0~P6) homozygous (cir/cir) or heterozygous (+/cir) mice OHCs.
Park, Jin-Bong;Kim, Young-Rae;Jeon, Byeong-Hwa;Park, Seung-Kiel;Oh, Sae-Ock;Kim, Young-Geun;Lee, Sang-Do;Kim, Kwang-Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.7
no.4
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pp.223-229
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2003
Using phospholipase D1 (PLD1)-overexpressing PC12 (PLD1-PC12) cells, the regulatory roles of PLD1 on ATP-induced currents were investigated. In control and PLD1-PC12 cells, ATP increased PLD activity in an external $Ca^{2+}$ dependent manner. PLD activity stimulated by ATP was substantially larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. In whole-cell voltage-clamp mode, ATP induced transient inward and outward currents. The outward currents inhibited by TEA or charybdotoxin were significantly larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. The inward currents known as $Ca^{2+}$ permeable nonselective cation currents were also larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. However, the difference between the two groups of cells disappeared in $Ca^{2+}$-free external solution, where ATP did not activate PLD. Finally, ATP-induced $^{45}Ca$ uptakes were also larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. These results suggest that PLD enhances ATP-induced $Ca^{2+}$ influx via $Ca^{2+}$ permeable nonselective cation channels and increases subsequent $Ca^{2+}$-activated $K^+$ currents in PC12 cells.
Objectives:eurotoxicity is mediated by nitric oxide(NO) in the rat primary neuronal cultures and assess the effect of $Mn^{2+}$ on the N-methyl-D aspartate(NMDA) receptors. Methods: We have used 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT)assay to examine the effect of cytotoxicity of $MnCl_2$ in neuronal cells , NO production was determined by measuring nirites, a stable oxidation product of NO. The neurons in the rat that contains neuronal nitric oxide synthase(nNOS) were examined by immunofluorescence and confocal microscopy. The effects of $Mn^{2+}$ on the NMDA receptors was assesed by the whole cell voltage clamp technique. Results: We showed that the NO release and NOS expression was increased with 500uM $MnCl_2$ treatment and an NOS inhibitors, $N^G-nitro-L-arginine$, prevented neurotoxicity elicited by manganese. In the electrophysiological study, $Mn^{2+}$ does not block or activate the NMDA receptors and not pass through the NMDA receptors in a neurons of basal ganglia. Conclusions: It is concluded that manganese neurotoxicity in basal ganglia was partially mediated by nitric oxide in the cell culture model.
In single atrial cells isolated from the rabbit the properties of inward current of Na-Ca exchange were investigated using the whole cell voltage clamp technique. The current was recorded during repolarization following brief 2 ms depolarizing pulse to +40 mV from a holding potential of * 70 mV. Followings are the results obtained: 1. When stimulated every 30 seconds, the inward currents were activated and reached peak values 6-12 ms after the beginning of depolarizing pulse. The mean current amplitude was 342 pA/cell. 2. The current decayed spontaneously from the peak activation and the time course of the relaxation showed two different phases fast and slow phase. The time constants were 10-18 ms and 60-140 ms, respectively. 3. The recovery of inward current was tested by paired pulse of various intervals. The peak current recovered exponentially with time constant of 140 ms and 1 p M isoprenaline accelerated the recovery process. 4. Relaxation time course was also affected by pulse interval and time constant of the fast phase was reduced almost linearly according to the decrease of pulse interval between 30 sec and 1 sec. 5. The peak activation was increased in magnitude by long prepulse stimulation, 5 p M Bay K, 1 p M isoprenaline or internal and external application of c-AMP. 6. The relaxation time constant of the fast phase was prolonged by 5 p M Bay K or c-AMP, and shortened by isoprenaline. However the time course of the slow relaxation phase was not so much changed. From the above results, it could be concluded that increase of the calcium current by Bay K or c-AMP results in the potentiation and prolongation of intracellular calcium transient, and the facilitation of Ca uptake by SR might be a mechanism of shortening the time constant of current relaxation by short interval stimulation or isoprenaline.
The present study was aimed at investigating whether the calcium current in the vascular smooth muscle (VSM) cells is altered in renal hypertension. Two-kidney, one clip (2K1C) and deoxycorticosterone acetate (DOCA)-salt hypertension were made in Sprague-Dawley rats. Rats without clipping the renal artery or implanting DOCA were used as control for 2K1C and DOCA-salt hypertension, respectively. Four weeks after clipping, systolic blood pressure was significantly higher in 2K1C rats than in control $(192{\pm}24\;and\;119{\pm}4$ mmHg, respectively, n=16 each). DOCA-salt rats also showed a higher blood pressure $(180{\pm}15$ mmHg, n=18) compared with control $(121{\pm}6$ mmHg, n=14). VSM cells were enzymatically and mechanically isolated from basilar arteries. Single relaxed VSM cells measured $5{\sim}10\;{\mu}m$ in width and $70{\sim}150\;{\mu}m$ in length were obtained. VSM cells could not be differentiated in size and shape between hypertensive and normotensive rats under light microscopy. High-threshold (L-type) calcium currents were recorded using whole-cell patch clamp technique. The amplitude of the current recorded from VSM cells was larger in 2K1C hypertension than in control. Neither the voltage-dependence of the calcium current nor the cell capacitance was significantly affected by 2K1C hypertension. By contrast, the amplitude of the calcium current was not altered in DOCA-salt hypertension. These results suggest that high-threshold calcium current of the VSM cells is altered in 2K1C hypertension, and that calcium channel may not be involved in calcium recruitment of VSM in DOCA-salt hypertension.
Various voltage-gated $K^+$ currents were recently described in dorsal root ganglion (DRG) neurons. However, the characterization and diversity of voltage-gated $K^+$ currents have not been well studied in trigeminal root ganglion (TRG) neurons, which are similar to the DRG neurons in terms of physiological roles and anatomy. This study was aimed to investigate the characteristics and diversity of voltage-gated $K^+$ currents in acutely isolated TRG neurons of rat using whole cell patch clamp techniques. The first type (type I) had a rapid, transient outward current ($I_A$) with the largest current size having a slow inactivation rate and a sustained delayed rectifier outward current ($I_K$) that was small in size having a fast inactivation rate. The $I_A$ currents of this type were mostly blocked by TEA and 4-AP, K channel blockers whereas the $I_K$ current was inhibited by TEA but not by 4-AP. The second type had a large $I_A$ current with a slow inactivation rate and a medium size-sustained delayed $I_K$ current with a slow inactivation rate. In this second type (type II), the sensitivities of the $I_A$ or $I_K$ current by TEA and 4-AP were similar to those of the type I. The third type (type III) had a medium sized $I_A$ current with a fast inactivation rate and a large sustained $I_K$ current with the slow inactivation rate. In type III current, TEA decreased both $I_A$ and $I_K$ but 4-AP only blocked $I_A$ current. The fourth type (type IV) had a smallest $I_A$ with a fast inactivation rate and a large $I_K$ current with a slow inactivation rate. TEA or 4-AP similarly decreased the $I_A$ but the $I_K$ was only blocked by 4-AP. These findings suggest that at least four different voltage-gated $K^+$ currents in biophysical and pharmacological properties exist in the TRG neurons of rats.
Steroid hormones control the expression of many cellular regulators, and a role thor estrogen in mouse oocytes has been well documented. The preovulatory $E_2$increment is generally accepted as the endocrine process regulating induction of in vivo oocyte maturation To address whether the activity of the T-type $Ca^{2+}$ channel is altered by 17 beta-estradiol ( $E_2$), we examined the actions of $E_2$on the calcium channel of mouse oocytes and early embryos. Oocrtes were collected from the oviduct of mice treated with pregnant mare's serum gonadotropin (PMSG) and human choronic gonadotropin (hCG). Whole cell voltage clamp technique and confocal microscopy were used to examine that $E_2$increase intracellular $Ca^{2+}$ concentration ([C $a^{2+}$]$_{i}$ ) via voltage dependent $Ca^{2+}$ channel (VDC) and estrogen receptor (FSR), and $E_2$concentration by the use of radioimmunoassay (RIA) were examined in mouse. The results obtained were as follows: The peak of $Ca^{2+}$ current induced by $E_2$increased 122% to 1.50$\pm$0.03 nA from 1.23$\pm$0.21 nA (n=15) in the presence of 5 mM extracellular $Ca^{2+}$ concentration ([C $a^{2+}$]$_{o}$ ). The increased $Ca^{2+}$ current was temporally associated with $Ca^{2+}$ transients. The intracellular $Ca^{2+}$ level increased 207%~30 s following the addition of 1${\mu}{\textrm}{m}$$E_2$(relative fluorescence intensity: 836.4$\pm$131.2 for control, n=10, 1736.4$\pm$192.0 in the presence of $E_2$, n=10). $E_2$increased amplitude of $Ca^{2+}$ current and [C $a^{2+}$]$_{i}$ . $E_2$-induced $Ca^{2+}$ current and $E_2$concentration in blood were showed difference on the stage of embryo. These results suggest that $E_2$modulate $Ca^{2+}$ channel to increase $Ca^{2+}$ influx.$Ca^{2+}$ influx.
Human cardiac fibroblasts (HCFs) have various voltage-dependent $K^+$ channels (VDKCs) that can induce apoptosis. Hydrogen peroxide ($H_2O_2$) modulates VDKCs and induces oxidative stress, which is the main contributor to cardiac injury and cardiac remodeling. We investigated whether $H_2O_2$ could modulate VDKCs in HCFs and induce cell injury through this process. In whole-cell mode patch-clamp recordings, application of $H_2O_2$ stimulated $Ca^{2+}-activated$$K^+$ ($K_{Ca}$) currents but not delayed rectifier $K^+$ or transient outward $K^+$ currents, all of which are VDKCs. $H_2O_2-stimulated$$K_{Ca}$ currents were blocked by iberiotoxin (IbTX, a large conductance $K_{Ca}$ blocker). The $H_2O_2-stimulating$ effect on large-conductance $K_{Ca}$ ($BK_{Ca}$) currents was also blocked by KT5823 (a protein kinase G inhibitor) and 1 H-[1, 2, 4] oxadiazolo-[4, 3-a] quinoxalin-1-one (ODQ, a soluble guanylate cyclase inhibitor). In addition, 8-bromo-cyclic guanosine 3', 5'-monophosphate (8-Br-cGMP) stimulated $BK_{Ca}$ currents. In contrast, KT5720 and H-89 (protein kinase A inhibitors) did not block the $H_2O_2-stimulating$ effect on $BK_{Ca}$ currents. Using RT-PCR and western blot analysis, three subtypes of $K_{Ca}$ channels were detected in HCFs: $BK_{Ca}$ channels, small-conductance $K_{Ca}$ ($SK_{Ca}$) channels, and intermediate-conductance $K_{Ca}$ ($IK_{Ca}$) channels. In the annexin V/propidium iodide assay, apoptotic changes in HCFs increased in response to $H_2O_2$, but IbTX decreased $H_2O_2$-induced apoptosis. These data suggest that among the VDKCs of HCFs, $H_2O_2$ only enhances $BK_{Ca}$ currents through the protein kinase G pathway but not the protein kinase A pathway, and is involved in cell injury through $BK_{Ca}$ channels.
Na Kyeong Park;Seong Woo Choi;Soon-Jung Park;JooHan Woo;Hyun Jong Kim;Woo Kyung Kim;Sung-Hwan Moon;Hun-Jun Park;Sung Joon Kim
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.28
no.4
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pp.313-322
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2024
Mutations within the SCN5A gene, which encodes the α-subunit 5 (NaV1.5) of the voltage-gated Na+ channel, have been linked to three distinct cardiac arrhythmia disorders: long QT syndrome type 3, Brugada syndrome (BrS), and cardiac conduction disorder. In this study, we have identified novel missense mutations (p.A385T/R504T) within SCN5A in a patient exhibiting overlap arrhythmia phenotypes. This study aims to elucidate the functional consequences of SCN5A mutants (p.A385T/R504T) to understand the clinical phenotypes. Whole-cell patch-clamp technique was used to analyze the NaV1.5 current (INa) in HEK293 cells transfected with the wild-type and mutant SCN5A with or without SCN1B co-expression. The amplitude of INa was not altered in mutant SCN5A (p.A385T/R504T) alone. Furthermore, a rightward shift of the voltage-dependent inactivation and faster recovery from inactivation was observed, suggesting a gain-of-function state. Intriguingly, the co-expression of SCN1B with p.A385T/R504T revealed significant reduction of INa and slower recovery from inactivation, consistent with the loss-of-function in Na+ channels. The SCN1B dependent reduction of INa was also observed in a single mutation p.R504T, but p.A385T co-expressed with SCN1B showed no reduction. In contrast, the slower recovery from inactivation with SCN1B was observed in A385T while not in R504T. The expression of SCN1B is indispensable for the electrophysiological phenotype of BrS with the novel double mutations; p.A385T and p.R504T contributed to the slower recovery from inactivation and reduced current density of NaV1.5, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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