Kim, Ik-Hyun;Kim, Yang-Mi;Haan, Jae-Hee;Park, Choon-Ok;Hong, Seong-Geun
The Korean Journal of Physiology
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v.27
no.1
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pp.93-105
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1993
The present study was performed to investigate the properties of ionic currents elicited by voltage pulses in the unfertilized eggs of mouse and hamster by using the whole cell voltage clamp techniques and to find out if there are any differences in properties between eggs of the two rodents. In addition, the modulatory effect of G proteins and protein kinase C (PKC) on the ionic channels were observed. The inward current in hamster eggs was shown to be due to $Ca^{2+}\;current\;(i_{ca})$). The current voltage relations of these currents in hamster egg were analogous to those in mouse eggs. The amplitude of $i_{ca}$ in the hamster egg was larger than that in the mouse egg ($-3.12{\pm}1.07\;nA\;vs.\;-1.71{\pm}0.71\;nA,\;mean{\pm}\;SD$). These results suggest that the $Ca^{2+}$ channels in both kinds of eggs have similar channel properties but their density, and/or conduct ance per unit area is higher in hamster eggs than in mouse eggs. Outward currents in eggs of both mouse and hamster were carried by $K^+$. In hamster eggs, they appeared to comprise at least two components; a transient outward component ($i_{to}$) and a steady state component ($i_{\infty}.$ The $i_{to}$ was found to be dependent on intracellular $Ca^{2+}$ concentration; whereas on the other hand $i_{\infty}\;was\;Ca^{2+}$-independent. $Ca^{2+}$ currents were increased in eggs treated with GTP (or $GTP{\gamma}S$) or fluoroaluminate ($AIF_4^-$). In the hamster egg these increments were antagonized by GDP (or $GDP{\beta}S$) application. In contrast to the enhancement of $i_{ca},\;i_k$ was reduced following GTP (or $GTP{\gamma}S$) perfusion in mouse eggs. The transient component ($i_{to}$) in hamster eggs was increased by adding GTP but decreased by phorbol ester, TPA or dioctanoyl glycerol (DOG). Simultaneous application of $GTP{\gamma}S$ and DOG suppressed $i_{to}$ more effectively than a single application or DOG or TPA. From the above results, we have shown that ionic currents elicited by voltage pulses existed in the unfertilized eggs of mouse and hamster. There are at least two types of currents, $i_{ca}\;and\;i_k$ in mouse eggs, while three types, $i_{ca},\;Ca^{2+}$-dependent $i_k$ and $Ca^{2+}$-independent $i_k$ exist in hamster eggs. ionic channels in these eggs may be regulated either directly by GTP and PKC or indirectly by the substances linked with GTP and PKC.
Park, Choon-Ok;Kang, Young-Jin;Lee, Hoi-Young;Chang, Ki-Churl
The Korean Journal of Pharmacology
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v.31
no.3
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pp.279-284
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1995
The aim of the present study was to know whether exogenously administered nitric oxide (NO) may differently modulate muscle mechanics between heart and aorta. We used PIANO method to generate NO. In isolated rat atrial tissues, neither heart rate nor contractility was affected by PIANO $(STZ,\;30{\sim}100\;{\mu}M)$. Only high concentration $(100\;{\mu}M)$ of 8-bromo cyclic GMP slightly depressed cardiac contractility. However, the same concentrations of 8-Br cGMP and PIANO significantly relaxed the rat thoracic aorta contracted with phenylephrine $(0.1\;{\mu}M)$. In isolated rabbit cardiac atrial myocytes, the amplitude of calcium currents were decreased in the whole voltage range by the presence of streptozotocin, which was further potentiated by UV light. Calcium currents were also decreased in those preparations treated with bradykinin, nitroprusside and 8-Br cGMP. These findings suggest that exogenous NO may modulate calcium current in cardiac myocyte. However, it remains why this does not affect myocardial contractility and heart rate. We concluded that NO may differently regulate calcium signal between aorta and heart muscle.
A non-steroidal anti-inflammatory drug (NSAID) has many adverse effects including cardiovascular (CV) risk. Diclofenac among the nonselective NSAIDs has the highest CV risk such as congestive heart failure, which resulted commonly from the impaired cardiac pumping due to a disrupted excitationcontraction (E-C) coupling. We investigated the effects of diclofenac on the L-type calcium channels which are essential to the E-C coupling at the level of single ventricular myocytes isolated from neonatal rat heart, using the whole-cell voltage-clamp technique. Only diclofenac of three NSAIDs, including naproxen and ibuprofen, significantly reduced inward whole cell currents. At concentrations higher than $3\;{\mu}M$, diclofenac inhibited reversibly the $Na^+$ current and did irreversibly the L-type $Ca^{2+}$ channels-mediated inward current $(IC_{50}=12.89\pm0.43\;{\mu}M)$ in a dose-dependent manner. However, nifedipine, a well-known L-type channel blocker, effectively inhibited the L-type $Ca^{2+}$ currents but not the $Na^+$ current. Our finding may explain that diclofenac causes the CV risk by the inhibition of L-type $Ca^{2+}$ channel, leading to the impairment of E-C coupling in cardiac myocytes.
The profile of membrane currents was investigated in differentiated neuronal cells derived from human neural stem cells (hNSCs) that were obtained from aborted fetal cortex. Whole-cell voltage clamp recording revealed at least 4 different currents: a tetrodotoxin (TTX)-sensitive $Na^+$ current, a hyperpolarization-activated inward current, and A-type and delayed rectifier-type $K^+$ outward currents. Both types of $K^+$ outward currents were blocked by either 5 mM tetraethylammonium (TEA) or 5 mM 4-aminopyridine (4-AP). The hyperpolarization-activated current resembled the classical $K^+$ inward current in that it exhibited a voltage-dependent block in the presence of external $Ba^{2+}$ (30 ${\mu}$M) or $Cs^+$ (3${\mu}$M). However, the reversal potentials did not match well with the predicted $K^+$ equilibrium potentials, suggesting that it was not a classical $K^+$ inward rectifier current. The other $Na^+$ inward current resembled the classical $Na^+$ current observed in pharmacological studies. The expression of these channels may contribute to generation and repolarization of action potential and might be regarded as functional markers for hNSCs-derived neurons.
Yin, Ming Zhe;Park, Seok-Woo;Kang, Tae Wook;Kim, Kyung Soo;Yoo, Hae Young;Lee, Junho;Hah, J. Hun;Sung, Myung Hun;Kim, Sung Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.20
no.1
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pp.25-33
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2016
Ion channels in carcinoma and their roles in cell proliferation are drawing attention. Intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$)-dependent signaling affects the fate of cancer cells. Here we investigate the role of $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel (SK4) in head and neck squamous cell carcinoma cells (HNSCCs) of dif-ferent cell lines; SNU-1076, OSC-19 and HN5. Treatment with $1{\mu}M$ ionomycin induced cell death in all the three cell lines. Whole-cell patch clamp study suggested common expressions of $Ca^{2+}$-activated $Cl^-$ channels (Ano-1) and $Ca^{2+}$-activated nonselective cation channels (CAN). 1-EBIO, an activator of SK4, induced outward $K^+$ current (ISK4) in SNU-1076 and OSC-19. In HN5, ISK4 was not observed or negligible. The 1-EBIO-induced current was abolished by TRAM-34, a selective SK4 blocker. Interestingly, the ionomycin-induced cell death was effectively prevented by 1-EBIO in SNU-1076 and OSC-19, and the rescue effect was annihilated by combined TRAM-34. Con-sistent with the lower level of ISK4, the rescue by 1-EBIO was least effective in HN5. The results newly demonstrate the role of SK4 in the fate of HNSCCs under the $Ca^{2+}$ overloaded condition. Pharmacological modulation of SK4 might provide an intriguing novel tool for the anti-cancer strategy in HNSCC.
The action of opioid on the hyperpolarization-activated cation current $(I_h)$ in substantia gelatinosa neurons were investigated by using whole-cell voltage-clamp recording in rat spinal brain slices. Hyperpolarizing voltage steps revealed slowly activating currents in a subgroup of neurons. The half-maximal activation and the reversal potential of the current were compatible to neuronal $I_h.$ DAMGO $(1\;{\mu}M),$ a selective- opioid agonist, reduced the amplitude of $I_h$ reversibly. This reduction was dose-dependent and was blocked by CTOP $(2\;{\mu}M),$ a selective ${\mu}-opioid$ antagonist. DAMGO shifted the voltage dependence of activation to more hyperpolarized potential. Cesium (1 mM) or ZD 7288 $(100\;{\mu}M)$ blocked $I_h$ and the currents inhibited by cesium, ZD 7288 and DAMGO shared a similar time and voltage dependence. These results suggest that activation of ${\mu}-opioid$ receptor by DAMGO can inhibit $I_h$ in a subgroup of rat substantia gelatinosa neurons.
It is well known that chromaffin cells of adrenal medulla secrete catecholamine in response to sympathetic nerve activation and the influx of $Ca^{2+}$ through the voltage dependent $Ca^{2+}$ channels (VDCC) in the cell membrane do a major role in this secretory process. In this study, we explored the effect of divalent cations on VDCC of rat chromaffin cells. Rat (Sprague-Dawley rat, 150-250 gm) chromaffin cells were isolated and cultured. Standard giga seal, whole cell recording techniques were employed to study $Ca^{2+}$ current with external and internal solutions that could effectively isolate VDCC currents $(NMG\;in\;external\;and\;TEA\;and\;Cs^{2+}\;in\;internal\;solution)$. The voltage dependence and the inactivation time course of VDCC in our cells were identical to those of bovine chromaffin cells. A persistent inward current was first activated by depolarizing step pulse from the holding potential (H.P.) of -80 mV to -40 mV, increased to maximum amplitude at around +10 mV, and became smaller with progressively higher depolarizing pulses to reverse at around +60 mV. The inactivation time constant $(\tau)$, fitted from the long duration test potential (2 sec) was $1295.2{\pm}126.8$ msec $(n=20,\;1\;day\;of\;culture,\;mean\;{\pm}S.E.M.)$ and the kinetic parameters were not altered along the culture duration. Nicardipine $(10\;{\mu}M)$ blocked the current almost completely. Among treated divalent cations such as $Cd^{2+},\;Co^{2+},\;Ni^{2+},\;Zn^{2+}\;and\;,Mn^{2+},\;Cd^{2+}$ was the most potent blocker on VDCC. When the depolarizing step pulse from -80 mV to 10 mV was applied, the equilibrium dissociation constant $(K_d)$ of $Cd^{2+}\;was\;39\;{\mu}M,\;K_d\;of\;Co^{2+}\;was\;100\;{\mu}M\;and\;K_d\;of\;Ni^{2+}];was];780{\mu}M.$ The principal findings of this study are as follows. First, the majority of $Ca^{2+}$ channels in rat chromaffin cells are well classified to L-type $Ca^{2+}$ channel in the view of kinetics and pharmacology. Second, all divalent cations tested could block the $Ca^{2+}$ current and the most potent blocker among the tested was $Cd^{2+}$.
Many gastrointestinal muscles show electrical oscillation, so-called 'slow wave', originated from interstitial cells of Cajal (ICCs). Thus, a technique to freshly isolate the cells is indispensable to explore the electrophysiological properties of the ICCs. To apply an enzyme solution on the serosal surface for cell isolation, the intestine was inverted and 0.02% trypsin solution and 0.04% collagenase solution were applied to serosal cavity. After the enzyme treatment, mucosal layer was removed and longitudinal muscle layer was gently separated from the rest of tissue. The thin layer was stretched in the recording chamber and mounted on an inverted microscope. Using ${\beta}-escine$, perforated whole cell patch clamp technique was used. Under a microscope, the tissue showed smooth muscle cells and interstitial cells around the myenteric plexus. Under voltage clamp condition, three types of membrane potential were recorded. One group of interstitial cells, which were positive to methylene blue and CD34, showed spontaneous outward current. These cells had bipolar shape and were considered as fibroblast-like cells because of their peculiar shape and arrangement. Another group, positive to c-kit and methylene blue, showed spontaneous inward current. These cells had more rounded shape and processes and were considered as ICCs. The third, positive to c-kit and had granules containing methylene blue, showed quiet membrane potentials under the voltage-clamp mode. These cells appeared to be resident macrophages. Therefore, in the freshly isolated thin tissue preparation, methylene blue could easily identify three types of cells rather than morphological properties. Using this method, we were able to study electrical properties of fibroblast and residential macrophage as well as myenteric ICCs.
Quercetin (3,3',4',5,7-pentahydroxyflavone) is an attractive therapeutic flavonoid for cancer treatment because of its beneficial properties including apoptotic, antioxidant, and antiproliferative effects on cancer cells. However, the exact mechanism of action of quercetin on ion channel modulation is poorly understood in bladder cancer 253J cells. In this study, we demonstrated that large conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ ($BK_{Ca}$) or MaxiK channels were functionally expressed in 253J cells, and quercetin increased $BK_{Ca}$ current in a concentration dependent and reversible manner using a whole cell patch configuration. The half maximal activation concentration ($IC_{50}$) of quercetin was $45.5{\pm}7.2{\mu}m$. The quercetin-evoked $BK_{Ca}$ current was inhibited by tetraethylammonium (TEA; 5 mM) a non-specific $BK_{Ca}$ blocker and iberiotoxin (IBX; 100 nM) a $BK_{Ca}$-specific blocker. Quercetin-induced membrane hyperpolarization was measured by fluorescence-activated cell sorting (FACS) with voltage sensitive dye, bis (1,3-dibutylbarbituric acid) trimethine oxonol ($DiBAC_4$2(3); 100 nM). Quercetin-evoked hyperpolarization was prevented by TEA. Quercetin produced an antiproliferative effect ($30.3{\pm}13.5%$) which was recovered to $53.3{\pm}10.5%$ and $72.9{\pm}3.7%$ by TEA and IBX, respectively. Taken together our results indicate that activation of $BK_{Ca}$ channels may be considered an important target related to the action of quercetin on human bladder cancer cells.
We investigated the effect of ${\alpha}-adrenergic$ and cholinergic receptor agonists on $Ca^{2+}$ current in adult rat trigeminal ganglion neurons using whole-cell patch clamp methods. The application of acetylcholine, carbachol, and oxotremorine ($50\;{\mu}M\;each$) produced a rapid and reversible reduction of the $Ca^{2+}$ current by $17{\pm}6%,\;19{\pm}3%,\;and\;18{\pm}4%$, respectively. Atropine, a muscarinic antagonist, blocked carbachol- induced $Ca^{2+}$ current inhibition to $3{\pm}1%$. Norepinephrine ($50\;{\mu}M$) reduced $Ca^{2+}$ current by $18{\pm}2%$, while clonidine ($50\;{\mu}M$), an ${\alpha}2-adrenergic$ receptor agonist, inhibited $Ca^{2+}$ current by only $4{\pm}1%$. Yohimbine, an ${\alpha}2-adrenergic$ receptor antagonist, did not block the inhibitory effect of norepinephrine on $Ca^{2+}$ current, whereas prazosin, an ${\alpha}1-adrenergic$ receptor antagonist, attenuated the inhibitory effect of norepinephrine on $Ca^{2+}$ current to $6{\pm}1%$. This pharmacology contrasts with ${\alpha}2-adrenergic$ receptor modulation of $Ca^{2+}$ channels in rat sympathetic neurons, which is sensitive to clonidine and blocked by yohimbine. Our data suggest that the modulation of voltage dependent $Ca^{2+}$ channel by norepinephrine is mediated via an α1-adrenergic receptor. Pretreatment with pertussis toxin (250 ng/ml) for 16 h greatly reduced norepinephrine- and carbachol-induced $Ca^{2+}$ current inhibition from $17{\pm}3%\;and\;18{\pm}3%\;to\;2{\pm}1%\;and\;2{\pm}1%$, respectively. These results demonstrate that norepinephrine, through an ${\alpha}1-adrenergic$ receptor, and carbachol, through a muscarinic receptor, inhibit $Ca^{2+}$ currents in adult rat trigeminal ganglion neurons via pertussis toxin sensitive GTP-binding proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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