To identify the presence of inwardly rectifying $K^+$ channels and its characteristics, membrane currents were measured using a whole-cell patch clamp from isolated gastric myocytes of guinea-pig. Change of external $K^+$ concentration from 5 to 90 mM induced an inward current at a holding potential of -80 mV. The high $K^+-induced$ inward current was blocked by $Ba^{2+}$ and $Cs^+,$ but not by glibenclamide. With 90 mM $K^+$ in bath, the $Ba^{2+}-$ and $Cs^+-sensitive$ currents showed strong inward rectification. Ten mM TEA weakly blocked the inward current only at potentials more negative than -50 mV. With 90 mM $K^+$ in bath, hyperpolarizing step pulses from -10 mV induced inward currents, which were inactivated at potentials more negative than -70 mV. Reduction of external $K^+$ to 60 mM decreased the amplitudes of the currents and shifted the reversal potential to more negative potential. The inactivation of inward $K^+$ current at negative clamp voltage was not affected by removing external $Na^+.$ These results suggest that the inwardly rectifying $K^+$ channels may exist in gastric smooth muscle.
The Kv channel activity in vascular smooth muscle cell plays an important role in the regulation of membrane potential and blood vessel tone. It was postulated that increased blood vessel tone in hypertension was associated with alteration of Kv channel and membrane potential. Therefore, using whole cell mode of patch-clamp technique, the membrane potential and the 4-AP-sensitive Kv current in cerebral arterial smooth muscle cells were compared between normotensive rat and one-kidney, one-clip Goldblatt hypertensive rat (lK,lC-GBH rat). Cell capacitance of hypertensive rat was similar to that of normotensive rat. Cell capacitance of normotensive rat and 1K,lC-GBH rat were $20.8{\pm}2.3$ and $19.5{\pm}1.4$ pF, respectively. The resting membrane potentials measured in current clamp mode from normotensive rat and 1K,lC-GBH rat were $-45.9{\pm}1.7$ and $-38.5{\pm}1.6$ mV, respectively. 4-AP (5 mM) caused the resting membrane potential hypopolarize but charybdotoxin $(0.1\;{\mu}M)$ did not cause any change of membrane potential. Component of 4-AP-sensitive Kv current was smaller in 1K,lC-GBH rat than in normotensive rat. The voltage dependence of steady-state activation and inactivation of Kv channel determined by using double-pulse protocol showed no significant difference. These results suggest that 4-AP-sensitive Kv channels playa major role in the regulation of membrane potential in cerebral arterial smooth muscle cells and alterations of 4-AP-sensitive Kv channels would contribute to hypopolarization of membrane potential in 1K,lC-GBH rat.
Ethanol actions in the amygdala formation may underlie in part the reinforcing effects of ethanol consumption. Previously a physiological phenomenon in the basolateral amygdala (BLA) that is dependent on neuronal network activity, compound postsynaptic potentials (cPSPs) were characterized. Effects of acute ethanol application on the frequency of cPSPs were subsequently investigated. Whole cell patch clamp recordings were performed from identified projection neurons in a rat brain slice preparation containing the amygdala formation. Acute ethanol exposure had complex effects on cPSP frequency, with both increases and decreases dependent on concentration, duration of exposure and age of the animal. Ethanol produces complex biphasic effects on synaptically-driven network activity in the BLA. These findings may relate to subjective effects of ethanol on arousal and anxiolysis in humans.
Decursin was purified from Angelica gigas Nakai, and its effects on the human Kv1.5 (hKv1.5) currents were recorded in mouse fibroblasts ($Ltk^-$ cells) by whole-cell patch-clamp technique. Decursin inhibited hKv1.5 current in a concentration-dependent manner, with an $IC_{50}$ value of $2.7\;{\mu}M$ at +60 mV. Decursin accelerated the inactivation kinetics of the hKv1.5 channel, and slowed the deactivation kinetics of the hKv1.5 current, resulting in a tail crossover phenomenon. Also, decursin inhibited the hKv1.5 current in a use-dependent manner. These results strongly suggest that decursin is a kind of open-channel blocker of the hKv1.5 channel.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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1996.07a
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pp.5-5
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1996
In sino-atrial node cells which act as the normal pacemaker of the heart, K conductance in resting state is minimal due to the absence of inward rectifier K channels K conductance only increases when the membrane is depolarized by the activation of the delayed rectifier K current I$\_$k/. In the present study, we investigated the gating mechanism of$\_$k/ using the whole cell patch clamp technique in isolated single sinoatrial cells of the rabbit. (omitted)
Kim, Jun-Hee;Nam, Joo-Hyun;Uhm, Dae-Yong;Kim, Sung-Joon
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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2002.06b
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pp.45-45
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2002
Extracellular ATP regulates a wide range of cellular function including the growth of prostate gland. Purinoceptors (ATP receptors) are divided into P2X (ligand-gated ion channels) and P2Y (G-protein-coupled receptor) subfamilies. In the present study, we investigated the types of purinoceptors in rat prostate neuroendocrine (RPNE) cells using whole-cell patch clamp technique, intracellular $Ca^{2+}$ measurement and RT-PCR analysis.(omitted)d)
Medial vestibular nucleus (MVN) neurons are involved in the reflex control of the head and eyes, and in the recovery of vestibular function after the formation of peripheral vestibular lesions. In our present study, whole cell patch clamp recordings were carried out on MVN neurons in brainstem slices from neonatal rats to investigate the actions of a group I metabotropic glutamate receptor (mGluR) agonist upon synaptic transmission and ionic currents. Application of the mGluR I agonist (S)-3,5- dihydroxyphenylglycine (DHPG) increased the frequency of miniature inhibitory postsynaptic currents (mIPSCs) but had no effect upon amplitude distributions. To then identify which of mGluR subtypes is responsible for the actions of DHPG in the MVN, we employed two novel subtype selective antagonists. (S)-(+)-$\alpha$-amino-a-methylbenzeneacetic acid (LY367385) is a potent competitive antagonist that is selective for mGluR1, whereas 2-methyl-6-(phenylethynyl)-pyridine (MPEP) is a potent noncompetitive antagonist of mGluR5. Both LY367385 and MPEP antagonized the DHPG-induced increase of mIPSCs, with the former being more potent. DHPG was also found to induce an inward current, which can be enhanced under depolarized conditions. This DHPG-induced current was reduced by both LY367385 and MPEP. The DHPG-induced inward current was also suppressed by the PLC blocker U-73122, the $IP_3$ receptor antagonist 2-APB, and following the depletion of the intracellular $Ca^{2+}$ pool by thapsigargin. These data suggest that the DHPG-induced inward current may be mainly regulated by the intracellular $Ca^{2+}$ store via the PLC-$IP_3$ pathway. In conclusion, mGluR I, via pre- and postsynaptic actions, may modulate the excitability of the MVN neurons.
The effects of acidic pH on several voltage-dependent ion channels, such as voltage-dependent $K^+$ and $Ca^{2+}$ channels, and hyperpolarization-gated and cyclic nucleotide-activated cation (HCN) channels, were examined using a whole-cell patch clamp technique on mechanically isolated rat mesencephalic trigeminal nucleus neurons. The application of a pH 6.5 solution had no effect on the peak amplitude of voltage-dependent $K^+$currents. A pH 6.0 solution slightly, but significantly inhibited the peak amplitude of voltage-dependent $K^+$ currents. The pH 6.0 also shifted both the current-voltage and conductance-voltage relationships to the depolarization range. The application of a pH 6.5 solution scarcely affected the peak amplitude of membrane currents mediated by HCN channels, which were profoundly inhibited by the general HCN channel blocker $Cs^+$ (1 mM). However, the pH 6.0 solution slightly, but significantly inhibited the peak amplitude of HCN-mediated currents. Although the pH 6.0 solution showed complex modulation of the current-voltage and conductance-voltage relationships, the midpoint voltages for the activation of HCN channels were not changed by acidic pH. On the other hand, voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels were significantly inhibited by an acidic pH. The application of an acidic pH solution significantly shifted the current-voltage and conductance-voltage relationships to the depolarization range. The modulation of several voltage-dependent ion channels by an acidic pH might affect the excitability of mesencephalic trigeminal nucleus neurons, and thus physiological functions mediated by the mesencephalic trigeminal nucleus could be affected in acidic pH conditions.
Kim, Young-Ho;Hahn, Jung-Hyun;Lim, In-Ja;Chung, Sung-Kwon;Bang, Hyo-Weon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.2
no.2
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pp.165-172
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1998
Under certain pathophysiological conditions, such as inflammation and ischemia, the concentration of H^+$ ion in the tissue surrounding neurons is changed. Variations in H^+$ concentration are known to alter the conduction and/of the gating properties of several types of ion channels. Several types of K^+$ channels are modulated by pH. In this study, the whole cell configuration of the patch clamp technique has been applied to the recording of the responses of change of external pH on the delayed rectifier K^+$ current of cultured DRG neurons of rat. Outward K^+$ currents were examined in DRG cells, and the Charybdotoxin and Mn^{2+}$ could eliminate Ca^{2+}-dependent$K^+$ currents from outward K^+$ currents. This outward K^+$ current was activated around -60 mV by step depolarizing pulses from holding potential -70 mV. Outward K^+$ currents were decreased by low external pH. Activation and steady-state inactivation curve were shifted to the right by acidification, while there was small change by alkalization. These results suggest that H^+$ could be alter the sensory modality by changing and modifying voltage-dependent K^+$ currents, which participated in repolarization.
Kim, Il-Man;Son, Eun-Ik;Kim, Dong-Won;Kim, In-Hong;Yim, Man-Bin;Song, Dae-Kyu;Park, Won-Kyun;Bae, Jae-Hun;Choi, Ha-Young
Journal of Korean Neurosurgical Society
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v.29
no.11
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pp.1429-1436
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2000
Objectives : This study was performed in cultured rat hippocampal neurons to investigate the acute electrophysiological features of ionotropic glutamate receptors which act as a major excitatory neurotransmitter in mammalian brain. Method : Glutamate receptor agonists were applied into the bath solution embedding in whole-cell patch-clamp recording of single hippocampal neuron. Results : In voltage-clamped at -60mV and the presence of 1mmol $Mg^{2+}$, extracellulary applied NMDA did not induce any inward current. Both the elimination of $Mg^{2+}$ and addition of glycine in bath, however, elicited a NMDAinduced inward current. $Mg^{2+}$ block current was increased gradually in more negative potentials from -30mV, showing a negative slope in I-V plot with $Mg^{2+}$. Glutamate-induced current represented an outward rectification. A non-NMDA receptor component occupied about 40% of glutamate-induced current in the voltage range of -80mV to +60mV. Conclusion : Present study suggests that glutamate activates acutely the non-NMDA receptors which induces an inward current in the level of resting membrane potential. This makes the membrane potential increase and can activate the NMDA receptors that permit calcium influx against $Mg^{2+}$ block. At the depolarized state of neuron, there may be recovery mechanisms of membrane potential to repolarize irrespective of voltage-dependent potassium channels in the hippocampal neurons.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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