배아줄기세포를 이용한 형질전환동물의 제조는 유전자의 기능 연구에 필수적이다. 특히 유전자 파괴 생쥐는 유전자의 기능 연구뿐만 아니라 사람 질병 연구에 중요한 모델이 되어 왔다. 유전자 적중법(gene targeting)과 유전자 함정법(gene trapping)은 ES 세포에서 녹아웃(knockout) 생쥐를 제조하는 대표적인 방법이다. 20여 년 전 유전자 적중법과 함정법이 최초로 개발된 이후에 이 기술은 많은 변화를 거쳤다. 특히 상동재조합에 기초한 전통적 유전자 적중법은 대량 제조기반의 조건부 유전자 적중법의 개발로 이어졌고, 유전자 적중법 및 유전자 함정법의 장점 요소의 조합은 유전자를 파괴하는 범위를 넓혔고, 유전자 적중을 더욱 효율적으로 만들었다. 이런 기술은 특정 유전자를 표적으로 하는 다양한 종류의 돌연변이 형질전환동물을 제조할 수 있게 하여 포스트게놈 시대에 요구되는 전체 유전체의 기능 연구를 더욱 효과적으로 진행시켜 줄 것이다.
Kim Hyun-Joo;Shin Young-Min;Chang Suk-Min;Park Chang-Sik;Jin Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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제30권2호
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pp.93-97
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2006
To study the signaling effect of insulin-like growth factor-I(IGF-1), transgenic mice containing IGF-1 Receptor (IGF-1R) cDNA fused to metallothionein promoter were produced by DNA microinjection into the pronucleus of mouse zygote. Three founders were produced with transgenic mice containing IGF-1R gene. Transgenic mice lines contained approximately $4{\sim}20$ copies of transgenes per cell and transmission of this gene into the progeny with Mendelian manner were determined. The founder mice were mated with normal mice to produce $F_1$ mice and then $F_2$ mice. Transmission rates of IGF-1R transgene in the progeny mice were $25{\sim}60%$ in $F_1$ generation and $40{\sim}50%$ in $F_2$ generation. The mRNA expression of IGF-1R transgene in liver was analyzed using RT-PCR for IGF-1R gene in liver. When body weights of transgenic pups were measured during 4, 10 and 14 weeks after birth, IGF-1R transgenic mice grew faster than non transgenic littermates. This study indicated that growth regulation by IGF-1 signaling through IGF-1R can be elucidated using IGF-1R transgenic mice.
Usui, T.;Urano, K.;Suzuki, S.;Hioki, K.;Maruyama, Ch.;Tomisawa, M.;Ohnishi, Y.;Suemizu, H.;Yamamoto, S.
Toxicological Research
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제17권
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pp.293-297
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2001
The international pharmaceutical and regulatory communities had been recognizing the limited utility of conventional rodent carcinogenicity study particularly on the second species, mouse, after intense investigation of carcinogenicity data base worldwide, and a new scheme for carcinogenicity testing for pharmaceuticals was proposed at the Expert Working Group on Safety in the International Conference on Harmonization (ICH) in 1996. CB6F 1-Tg rasH2 mouse carrying human prototype c-Ha-ras gene with its own promoter/enhancer is one oj the new carcinogenicity assay model for human cancer risk assessment. Studies have been conducted since 1992 to validate the transgenic (Tg) mice for rapid carcinogenicity test-ing, short term (26 weeks) studies with genotoxic (by Salmonella), non-genotoxic carcinogens, genotoxic non-carcinogens, non-genotoxic non-carcinogens revealed relatively high concordance oj the response of the Tg mouse with classical bioassay across classes of carcinogenic agents. Mechanistic basis for carcinogensis in the model are being elucidated in terms of the role of overexpression and/or point mutation of the transgene. This report review the initial studies of validation of the model and preliminary results of on-going ILSI HESI ACT project will be presented.
In an attempt to simultaneously produce two human proteins, hGH and hG-CSF, in the milk of transgenic mice, we constructed goat $\beta$-casein-directed hGH and hG-CSF expression cassettes individually and generated transgenic mice by co-injecting them into mouse zygotes. Out of 33 transgenic mice, 29 were identified as double transgenic harboring both transgenes on their genome. All analyzed double transgenic females secreted both hGH and hG-CSF in their milks. Concentrations ranged from 2.1 to $12.4\;mg/m{\ell}$ for hGH and from 0.04 to $0.13\;mg/m{\ell}$ for hG-CSF. hG-CSF level was much lower than hGH level but very similar to that of single hG-CSF mice, which were introduced with hG-CSF cassette alone. In order to address the causes of concentration difference between hGH and hG-CSF in milk, we examined mRNA level of hGH and hG-CSF in the mammary glands of double transgenic mice and tissue specificity of hG-CSF mRNA expression in both double and single transgenic mice. Likewise protein levels in milk, hGH mRNA level was much higher than hG-CSF mRNA, and hG-CSF mRNA expression was definitely specific to the mammary glands of both double and single transgenic mice. These results demonstrated that two transgenes have distinct transcriptional potentials without interaction each other in double transgenic mice although two transgenes co-integrated into same genomic sites and their expressions were directed by the same goat $\beta$-casein promoter. Therefore goat $\beta$-casein promoter is very useful for the multiple production of human proteins in the milk of transgenic animals.
Transgenic mice expressing green fluorescent protein (GFP) under the control of human glial fibrillary acidic protein promoter (hGFAP) have been utilized for in vivo labeling of astrocytes. Although it has been considered that virtually all astrocytes express GFP in this transgenic mouse, we found that different subsets of GFAP-expressing astrocytes express considerably different levels of GFP in the adult brain. Astrocytes in the spinal cord, the molecular layer of thecerebellum, meninges, white matter, corpus callosum and blood vessels exhibited strong GFP, whereas subsets of astrocytes associated with granule cells in the cerebellum and dentate gyrus did not or only marginally exhibited GFP. We also found that a small subset of GFP-expressing cells in the periglomeruli of the olfactory bulb did not express GFAP immunoreactivity. Collectively, these results suggest that human GFAP promoter-derived GFP expression does not faithfully recapitulate the endogenous GFAP expression in mice, suggesting that upstream regulatory mechanisms controlling GFAP transcription are different in different populations of astrocytes, and may reflect the functional diversity of astrocytes.
The neuropeptide vasopressin (VP) is a nine- amino acid hormone synthesized as preprohormone in the cell bodies of hypothalamic magnocellular neurons. The tumor in magnocellular neurons of the hypothalamus is associated with disfunctions of the cell bodies, leading to the diabetes insipidus. In order to produce the disease models with a defect in VP synthesis and its secretion, we have produced the transgenic mice regulated by VP constructs containing 3.8 kbp of the 5'flanking region and all the exons and introns in the mouse VP gene, which was fused at the end of exon 3 to a SV40 Tag. The two VP-transgene constructs differed by the lengths of their VP gene 3' flanking regions (2.1 versus 3.6 kbp). (omitted)
Effectiveness of transgene transfer into genome is crucially concerned in mass production of the bio-pharmaceuticals using genetically modified transgenic animals as a bioreactor. Recently, the mammary gland has been considered as a potential bioreactor for the mass production of the bio-pharmaceuticals, which appears to be capable of appropriate post-translational modifications of recombinant proteins. The mammary gland tissue specific vector system may be helpful in solving serious physiological disturbance problems which have been a major obstacle in successful production of transgenic animals. In this study, to minimize physiological disturbance caused by constitutive over-expression of the exogenous gene, we constructed new retrovirus vector system designed for mammary gland-specific expression of the hEPO gene. Using piggyBac vector system, we designed to express hEPO gene under the control of mammary gland tissue specific and lactogenic hormonal inducible goat ${\beta}$-casein or mouse Whey Acidic Protein (mWAP) promoter. Inducible expression of the hEPO gene was confirmed using RT-PCR and ELISA in the mouse mammary gland cells treated with lactogenic hormone. We expect the vector system may optimize production efficiency of transgenic animal and reduce the risk of global expression of transgene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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