The CCR4-CAF1-NOT complex-mediated degradation of mRNA is a fundamental aspect of gene regulation in eukaryotes. We herein examined the role of AtCAF1 in the innate immune and wound responses of plants. Our results showed that overexpression of AtCAF1 significantly downregulated the transcript level of EFR but not FLS2 and BRI1, as well as abolished up-regulated expression pattern of EFR in response to wounding. Consistently, Agrobacteriummediated transient expression of GUS was highly enhanced in the transgenic plants overexpressing AtCAF. Furthermore, JA responsive genes were down-regulated by overexpression of AtCAF, causing the transgenic plants overexpressing AtCAF more susceptible to necrotrophic fungal pathogen, Botrytis cinerea. These results suggest that The CCR4-CAF1-NOT complex-mediated degradation of mRNA negatively regulates wounding-mediated disease resistance in Arabidopsis thaliana.
Glyphosate inhibits the target enzyme 5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase (EPSPS) in the shikimate pathway. A mutant of EPSPS from Pantoea sp. was identified using site-directed mutagenesis. The mutant showed significantly improved glyphosate resistance. The mutant had mutations in three amino acids: Gly97 to Ala, Thr 98 to Ile, and Pro 102 to Ser. These mutation sites in Escherichia coli have been studied as significant active sites of glyphosate resistance. However, in our research, they were found to jointly contribute to the improvement of glyphosate tolerance. In addition, the level of glyphosate tolerance in transgenic Arabidopsis confirmed the potentiality of the mutant in breeding glyphosate-resistant plants.
Genetic transformation was affected by material of explant, age of callus, and medium of regeneration. Two rice seed cultivars (Ilpum and Baekjinju) and mediums were investigated in this study for enhancing regeneration of transgenic rice expressed AtBI-1 gene encoding the Arabidopsis thaliana Bax inhibitor. Regeneration rate of Ilpum rice transformant in gelrite of 5 and 8 g were 27.4% and 18.0%, respectively. In Baekjinju, regeneration rate of transformant was 5.4% and 4.3% in 5 and 8 g gelrite, respectively. The highest number of transformant plant in this study was regenerated from Ilpum cultivar on MS medium (30.4%) and was applied for the subsequent experiment. The callus regeneration rate of transformant were 40.7% in callus infection of up-side, it was higher regeneration then in the down-side (3.9%). The regeneration rate of callus of 25 days and 35 days were 14.7% and 38.6%, respectively. The most important application of this work is in genetic transformation of rice, particularly for improvement transgenic plant tissue culture protocol with high frequency of plant regeneration.
Chung, Mi-Young;Kim, Min Bae;Chung, Yong Mo;Nou, Ill-Sup;Kim, Chang Kil
Journal of Plant Biotechnology
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v.43
no.2
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pp.255-260
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2016
This research was conducted to improve the cold tolerance of the gerbera cv. Gold Eye by introduction of the Arabidopsis $Ca^{2+}/H^+$ antiporter gene (CAX1) via Agrobacterium-mediated transformation. Prior to genetic transformation, we optimized a combination of plant growth regulators; $1.0mgl^{-1}$ 6-Benzyladenine (BA) and $0.1mgl^{-1}$3-indole-acetic acid (IAA) were found to lead to proper in vitro shoot regeneration from petiole explants. In addition, $50mgl^{-1}$ kanamycin was determined to be the minimal concentration useful for selection of putative transgenic plants. In this study, transgenic gerbera expressing the Arabidopsis $Ca^{2+}/H^+$ antiporter gene (CAX1) were obtained using the optimized concentrations. We expect that introduction of the gene to the cultivar will improve cold tolerance, which will be important in the winter months.
Three Arabidopsis cDNAs, MAM1, CYP79F1, and CYP83A1, required for aliphatic glucosinolate biosynthesis were introduced into Chinese cabbage by Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. The transgenic lines overexpressing MAM1 or CYP83A1 showed wild-type phenotypes. However, all the lines overexpressing CYP79F1 displayed phenotypes different from wild type with respect to the stem thickness as well as leaf width and shape. Glucosinolate contents of the transgenic plants were compared with those of wild type. In the MAM1 line M1-1, accumulation of aliphatic glucosinolates gluconapin and glucobrassicanapin significantly increased. In the CYP83A1 line A1-1, all the aliphatic glucosinolate levels were increased, and the levels of gluconapin and glucobrassicanapin were elevated by 4.5 and 2 fold, respectively. The three CYP79F1 transgenic lines exhibited dissimilar glucosinolate profiles. The F1-1 line accumulated higher levels of gluconapoleiferin, glucobrassicin, and 4-methoxy glucobrassicin. However, F1-2 and F1-3 lines demonstrated a decrease in the levels of gluconapin and glucobrassicanapin and an increased level of 4-hydroxy glucobrassicin.
Seed storage oils are essential resources for not only human and animal diets but also industrial applications. The primary goal of this study was to increase seed oil content through comparative analysis of two seed-specific promoters, AtFAE1 from Arabidopsis Fatty Acid Elongase 1 gene and BnNapin from Brassica napus seed storage protein gene. AtWRI1 and AtDGAT1 genes encoding an AP2-type transcription factor and a Diacylglycerol Acyltransferase 1 enzyme, respectively, were expressed under the control of AtFAE1 and BnNapin promoters in Arabidopsis. The total seed oil content in all transgenic plants was increased by 8-11% compared with wild-type seeds. The increased level of oil content in AtWRI1 and AtDGAT1 transgenic lines under the control of both promoters was similar, although the activity of the BnNapin promoter is much stronger than that of AtFAE1 promoter in the mature stage of developing seeds where storage oil biosynthesis occurs at a maximum rate. This result demonstrates that the AtFAE1 promoter as well as the BnNapin promoter can be used to increase the seed oil content in transgenic plants.
The amino acids found in plants play important roles in protein biosynthesis, signaling processes, and stress responses, and as components in other biosynthesis pathways. Amino acid degradation helps maintain plant cells' energy states under certain carbon starvation conditions. Branched-chain amino acid transferases (BCATs) play an essential role in the metabolism of branched-chain amino acids (BCAAs) such as isoleucine, leucine and valine. In this paper, we performed genome-wide RNA-seq analysis using CsBCAT7-overexpressing Arabidopsis plants. We observed significant changes in genes related to flowering time and genes that are germination-responsive in transgenic plants. RNA-seq and RT-qPCR analyses revealed that the expression levels of some BCAA catabolic genes were upregulated in these same transgenic plants, and that this correlated with a delay in their senescence phenotype when the plants were placed in extended darkness conditions. These results suggest a connection between BCAT and the genes implicated in BCAA catabolism.
Kim, June-Sik;Park, Minkyu;Lee, Dong Ju;Kim, Byung-Dong
Molecules and Cells
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v.28
no.4
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pp.331-339
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2009
Capsaicin is a very important secondary metabolite that is unique to Capsicum. Capsaicin biosynthesis is regulated developmentally and environmentally in the placenta of hot pepper. To investigate regulation of capsaicin biosynthesis, the promoter (1,537 bp) of pepper capsaicin synthase (CS) was fused to GUS and introduced into Arabidopsis thaliana (Col-0) via Agrobacterium tumefaciens to produce CSPRO::GUS transgenic plants. The CS was specifically expressed in the placenta tissue of immature green fruit. However, the transgenic Arabidopsis showed ectopic GUS expressions in the leaves, flowers and roots, but not in the stems. The CSPRO activity was relatively high under light conditions and was induced by both heat shock and wounding, as CS transcripts were increased by wounding. Exogenous capsaicin caused strong suppression of the CSPRO activity in transgenic Arabidopsis, as demonstrated by suppression of CS expression in the placenta after capsaicin treatment. Furthermore, the differential expression levels of Kas, Pal and pAmt, which are associated with the capsaicinoid biosynthetic pathway, were also suppressed in the placenta by capsaicin treatment. These results support that capsaicin, a feedback inhibitor, plays a pivotal role in regulating gene expression which is involved in the biosynthesis of capsaicinoids.
Proceedings of the Korean Society of Life Science Conference
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2005.04a
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pp.23-36
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2005
Bax, a mammalian pro-apoptotic member of the Bcl-2 family, induces cell death when expressed In yeast. To investigate whether .Bax expression can induce cell death in plant, we produced transgenic Arabidopsis plants that contained murine Bax cDNA under control of a glucocorticoid-inducible promoter. Transgenic plants treated with dexamethasone, a strong synthetic glucocorticoid, induced Bax accumulation and cell death, suggesting that some elements of cell death mechanism by Bax may be conserved among various orgarusms. Therefore, we developed novel yeast genetic system, and cloned several Plant Bax Inhibitors (PBIs). Here, we report the function of two PBIs In detail. PBIl is ascorbate peroxidase (sAPX). Fluorescence method of dihydrorhodamine123 oxidation revealed that expression of Bax in yeast cells generated reactive oxygen species (ROS), and which was greatly reduced by co-expression with sAPX. These results suggest that sAPX inhibits the generation of ROS by Bax, which in turn suppresses Bax-induced cell death in yeast. PBI2 encodes nucleoside diphosphate kinase (NDPK). ROS stress strongly induces the expression of the NDPK2 gene in Arabidopsis thaliana (AtNDPK2). Transgenic plants overexpressing AtNDPK2 have lower lovels of ROS than wildtype plants. Mutants lacking AtNDPK2 had higher levels of ROS than wildtype. H$_{2O2}$ treatment induced the phosphorylation of two endogenous proteins whose molecular weights suggested they are AtMPK3 and AtMPK6. In the absence of H2O2 treatment, phosphorylation of these proteins was slightly elevated in plants overexpressing AtNDPK2 but markedly decreased In the AtNDPK2 deletion mutant. Yeast two-hybrid and in vitro protein pull-down assays revealed that AtNDPK2 specifically interacts with AtMPK3 and AtMPK6. Furthermore, AtNDPK2 also enhances the MBP phosphorylation activity of AtMPK3 i'n vitro. Finally, constitutive overexpression of AtNDPK2 in Arabidopsis plants conferred an enhanced tolerance to multiple environmental stresses that elicit ROS accumulation In situ. Thus, AtNDPK2 appears to play a novel regulatory role in H2O2-mediated MAPK signaling in plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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