We isolated and functionally characterized a Dendrobium Actin1 (DmACT1) promoter that drives strong gene expression in the orchid genus Dendrobium. A genomic fragment containing the region 3227 bp upstream of the coding region of DmACT1 was obtained by inverse PCR. Detailed comparison of the full-length cDNA and genomic sequences revealed that DmACT1 has a 1374 bp first intron in the 5' UTR. However, the 5' flanking sequences upstream of the coding region showed no obvious sequence similarities compared to those of known promoters, including plant actin promoters. Serial deletion constructs of the 5' flanking region from the translation initiation codon were fused to the coding sequence of a GUS/luciferase fusion reporter to identify the regulatory elements necessary for promoter activity. Transient assays in the flowers of Dendrobium revealed that the 5' UTR-intron greatly enhanced promoter activity. Moreover, the DmACT1 promoter with its 5' UTR-intron yielded approximately 10-fold higher reporter activity than the rice Act1 promoter-intron. Our data suggest that the DmACT1 promoter with its 5' UTR-intron is a useful tool for strong expression of transgenes in Dendrobium orchids.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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1998.05a
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pp.12-28
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1998
The technology of creating transgenic animals has a potential value in improving productivity and disease resistance of animals, gene therapy, drug pharming and production of model animals for certain diseases. Up to date, fairly low success rate of production of transgenic animals and a pronounced variability with respect to the expression of transgenes have been much observed. The mechanisms how to integrate the injected genes with a certain part of the genomes are unknown yet. Many techniques in gene transfer, beside microinjection, have been introduced and explored thus to improve the production efficiency of transgenic animals. In this article, the methods and efficiency of gene-transfer techniques, the detection and preselection of transgenes in embryos by PCR- and GFP-screenings and cloning of preselected transgenic embryos by nuclear transplantation are described and discussed. Some experimental results showed that the early screening and selection of integration of the injected gene with embryonic genome by polymerase chain reaction(PCR) and green fluorecence protein(GFP) were promising methods. Further, the application of nuclear transplantation technology to cloning and multiplication of the positively integrated genes in the cleaving embryos and embryonic cells will be beneficially used for the mass production of transgenic embryos and consequently improving the production efficiency in transgenic animals.
It is known that the incorporation of genes into transgenic mice is generally stable and is p passed on to succeeding generations in a Mendelian fashion. In this report, transgenic mice were set as a model to evaluate whether the transgenes are transmitted in a Mendelian principle in a successive generations and how they are tran s smitted into their offspring. A 3.0 kb linear DNA fragment, containing the MMTV LTR, bovine aSI casein cDNA and SV 40 splicing and polyadenylation site; was microinjected into fertilized mouse embryos. The tail DNAs of the resulting pups were subjected to dot and Southern hybridizations to screen transgenic founders. The DNAs of their offspring were anlyzed by PCR to confirm the transmission of the transgene from F0. Out of 72 live pups four pups (5.6%), 3 males and 1 female, were positive for the transgene. The rates of transmission from F0 into F1 were 33.3, 7.7, 0, and 62.5%. Those from F1 into F2 were 63.6, 5.9, and 68.8% and those from F2 into F3 were 85.7, and 88.2%. In this report, the transmission pattern of transgenes in transgenic mice into their offspring was demonstrated. It either follows or does not follow in a Mendelian fashion. Deletion or loss of the transgenes from F0 in some lines became apparant to the succeeding generations.
To effectively modify tree function with genetic engineering, transgenes must be expressed at the proper level in the appropriate tissues at suitable developmental stages. Toward understanding the spatial and temporal expression of transgenes in woody plants, transgene expression was evaluated in three greenhouse-grown, transgenic lines of Populus alba ${\times}$ P. grandidentata hybrid clone 'Hansen'. All transgenic poplar lines possess constructs containing the bacterial nopaline synthase(nos) promoter linked to a neomycin phosphotransferase II(NPT II) selectable marker gene. In addition, each transgenic poplar line contains one of the following gene constructs : 1) a wound-inducible potato proteinase inhibitor II (pin2) promoter linked to a chloramphenicol acetyltransferase(CAT) reporter gene. 2) a nos promoter linked to a PIN2 structural gene : or 3) a Cauliflower Mosaic Virus 35s promoter linked to a PIN2 structural gene. Polymerase chain reaction(PCR) was used to verify the presence of foreign genes in the poplar genome. Enzyme-linked immunosorbent assays(ELISAs) were used to evaluate organ specific expression of the nos-NPT II construct. NPT II expression was detected in leaves, petioles, stems, and roots of transgenic poplar, thereby indicating that the nos promoter is potentially effective for general constitutive expression of transgenes. NPT expression varied among transgenic poplar lines and among organs for one transgenic line, Tr15. With Tr15, NPT II levels were highest in older leaves and petioles. These results indicate that screening of several transgenic lines may be required to identify lines with optimal transgene expression.
Proceedings of the Korean Society of Fisheries Technology Conference
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2002.10a
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pp.183-184
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2002
The use of transgenic fish has so far been chiefly limited by the lack of predictable, strong, tissue specific, and position-independent expression of transgenes. For genetic analysis, expression of a marker transgene, easily screenable in the living fish, could facilitate studies of gene targeting, insertional mutagenesis, lineage, and mutational analysis. (omitted)
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2000.11a
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pp.46-54
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2000
Transgenic rabbits were produced by DNA microinjection using growth hormone receptor (GHR) and IGF-1 receptor (IGF-1R) genes. Overall efficiencies for production of transgenic rabbits were 3.2% and 3.1% in GHR and IGF-1R genes, respectively. Founder rabbits transmitted transgenes to their progenies through medelian fashion. Growth rate in GHR and ICF-1R transgenic rabbits was faster than non-transgenic rabbits. Transgenic rabbits grew larger (25% and 15% increase in body weight of GHR and IGF-1R transgenic rabbits, respectively) than non-transgenic rabbits and organ weight of transgenic rabbits increased, suggesting that GHR and IGF-1 genes affects growth rates in transgenic rabbits.
Chloroplast transformation in higher plants offers many attractive advantages over nuclear transformation, including a high-level accumulation of foreign proteins, multi-gene expression in single transformation event via transgene stacking in operons and no position effect due to site-specific integration of transgenes by homologous recombination. Most importantly, chloroplast transgenic plants are eco-friendly because their transgenes are maternally inheritance in most crop plants. However, chloroplast transformation system has limited success in crops alike nuclear transformation. In the past two decades, great progress has been made to overcome the limitations of chloroplast transformation, thus expending chloroplast bioreactor to several important crops including soybean, carrot, lettuce, and oilseed. Therefore, it has become possible that chloroplast transformation of crops can be used not only for the improvement of agronomic traits, but also for the production of vaccines and high valuable therapeutic proteins in pharmaceutical industry.
Most studies on transgenic bioreactors have focused on expression levels of interest genes. In this study we examined whether transgenic bioreactors would inherit expression level of the Oansgene to long-term generations independently of transgene sources. We employed three transgenic mice, which were separately reported, carrying different transgenes and copy numbers, 27 kb of hLF and 22 kb of hIL-10 genomic sequences, and 1.3 kb of hTPO cDNA, respectively. Three females of the transgenic lineages crossbred with a wild-type male up to 20 generations to test transgenic frequencies of their progenies and to determine expression levels of the transgenes. Ultimately, transmission rates of kLF, hIL-10, and hTPO were $64.3{\pm}7.0$, $59.3{\pm}9.8$, and $56.1{\pm}9.7$, respectively, appeared following Mendelian pattern of inheritance. Notably, we found that levels of expressions of hLF, hIL-10, and hTPO in milk were sustained to high numbers of generations. No transgene silencing of expression was observed in every generations of all transgenic mice. In conclusion, we suggest that once established animal bioreactors could consistently transmit the transgene to continual generations, without loss of expressional activity, independently of transgene sources.
Jiwon Koh;Hyun Keun Chee;Kyung-Hee Kim;In-Seok Jeong;Jung-Sun Kim;Chang-Ha Lee;Jeong-Wook Seo
Korean Circulation Journal
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v.53
no.6
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pp.351-366
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2023
Along with the development of immunosuppressive drugs, major advances on xenotransplantation were achieved by understanding the immunobiology of xenograft rejection. Most importantly, three predominant carbohydrate antigens on porcine endothelial cells were key elements provoking hyperacute rejection: α1,3-galactose, SDa blood group antigen, and N-glycolylneuraminic acid. Preformed antibodies binding to the porcine major xenoantigen causes complement activation and endothelial cell activation, leading to xenograft injury and intravascular thrombosis. Recent advances in genetic engineering enabled knock-outs of these major xenoantigens, thus producing xenografts with less hyperacute rejection rates. Another milestone in the history of xenotransplantation was the development of co-stimulation blockaded strategy. Unlike allotransplantation, xenotransplantation requires blockade of CD40-CD40L pathway to prevent T-cell dependent B-cell activation and antibody production. In 2010s, advanced genetic engineering of xenograft by inducing the expression of multiple human transgenes became available. So-called 'multi-gene' xenografts expressing human transgenes such as thrombomodulin and endothelial protein C receptor were introduced, which resulted in the reduction of thrombotic events and improvement of xenograft survival. Still, there are many limitations to clinical translation of cardiac xenotransplantation. Along with technical challenges, zoonotic infection and physiological discordances are major obstacles. Social barriers including healthcare costs also need to be addressed. Although there are several remaining obstacles to overcome, xenotransplantation would surely become the novel option for millions of patients with end-stage heart failure who have limited options to traditional therapeutics.
There are several gene transfer methods available to introduce foreign DNA into animal. The most common method at present is microinjection. However, the overall efficiency of producing practical application of gene transfer technology to livestock species is production of pharmaceuticals. Rare human proteins, which cannot be produced into milk of transgenic animals. Large amount of biologically active protein may be obtained from transgenic farm animals using this system. Growth-related application to livestock species using growth hormone genes or factor genes have been disappointing. There were many undesirable side effects noted in the transgenic animals. More sophisticated on or off transgene expression are needed to control expression of transgenes in the transgenic animals. Turning positive effects while circumventing potentially harmful effects.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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