Hernandez, Eric Moore;Johnson, Anna;Notario, Vicente;Chen, Andrew;Richert, John R.
BMB Reports
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제35권3호
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pp.273-282
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2002
Sp3 is a bifunctional transcription factor that has been reported to stimulate or repress the transcription of numerous genes. Although the size of Sp3 mRNA is 4.0kb, the size of the known Sp3 cDNA sequence is 3.6kb. Thus, Sp3 functional studies have been performed with an artificially introduced start codon, and thus an amino-terminus that differs from the wild-type. Ideally, full-length cDNA expression vectors with the appropriate start codon should be utilized for these studies. Using 5'rapid amplification of cDNA ends, a full-length Sp3 cDNA clone was generated and the sequence verified in nine cell lines. No AUG initiation codon was present. However, stop codons were present in all three frames 5' to the known coding sequence. In vitro translation of this full-length cDNA clone produced the expected three isoforms-one at 100 kDa and two in the mid 60 kDa range. Electrophoretic mobility shift assays showed that the protein products had the ability to bind to the Sp1/3 consensus sequence. In vitro studies, using our Sp3 clone and site directed mutagenesis, identified the translation initiation site for the larger isoform as AUA. AUA has not been previously described as an endogenous initiation codon in eukaryotes.
The GC-rich discriminator sequence between the -10 region and the transcription start site of the rnpB promoter is responsible for stringent control of M1 RNA synthesis. The rnpB promoter also contains a G nucleotide at the previously identified transcription start site. In this study, we examined by mutagenesis of G to A whether this +1G nucleotide is involved in the stringent response. We found that the change did not alter the stringent response. Since the +1 mutation might alter transcription initiation, we compared the transcription start sites of the wt and mutant promoters by primer extension analysis. Surprisingly, we found that wild type rnpB transcription starts at both the +1G position (70%) and the -1C position (30%), and that the +1A mutation led to transcription initiation exclusively at the -1C position. We also generated two transversion mutations at the -1 position, both of which led to transcription starting exclusively at that position. The -1G mutant promoter gave a stringent signal similar to the wild-type, whereas the -1A mutant generated a significantly less stringent signal. Base on these results, we propose that a short sequence, up to 7 bp downstream of the -10 region, is involved in the stringent response of the rnpB promoter.
The alkaline phosphatase (K-ALPase) gene of Kluyveromyces fragilis has been cloned (1) and determined its base sequences (2) previously in our laboratory. When the K-ALPase gene was expressed in Escherichia coli and Saccharomyces cerevisiae, it showed a constitutive activity in E. coli, and a derepressed activity in S. cerevisiae in phosphate-limited medium. Northem hybridization experiment was performed to elucidate the transcription level of the K-ALPase gene. Northern experiment showed that transcription level of K-ALPase gene in S. cerevisiae was higher in phosphate depletion, but it was higher in high phosphate medium than in phosphate limited medium in K. fragilis. The transcription initiation site of the K-ALPase gene was determined by primer extension analysis. It matched nucleotide position - 169 in relation to the putative trnslational start site.
An nprX gene of Bacillus subtilis NS15-4 encoding a neutral protease was cloned and its molecular characteristics were analyzed. The complete nucleotide sequence indicated that there is an open reading frame (0RF) possibly encoding 521 amino acid polypeptide. The ORF used all codons expected two cysteine and a proline having a codon bias index (CBI) of 0.09 in Escherichia coli. There were homologous sequences to the consensus sequence of -35 and -10 regions of E. coli promoters and to a Shine-Dalgarno (SD) sequence located 25 bp downstream of a mojor transcription initiation site. Moreover, there were also five minor transcription initiation sites at 6. 7. 8. 14 and 15 nt downstream of the major site. Northern blot analysis revealed the presence of about 1.8 kb mRNA transcript in E. coli having the nprX gene. The nucleotide sequence was identified in GenBank to be a gene for a neutral protease of B. sutilis with six nucleotide difference in the ORF region. The flanking regions of the NprX ORF showed much more differences form those of other neutral protease genes except the nprE gene of B. subtilis, which has the most homology to the nprX gene, and of which the flanking regions were identical to those of the nprX gene.
정확한 in vitro 전사가 일어날 수 있는 진딧물의 세포추출액을 제조하였다. 전사를 직접 조절할 수 있는 단백질 인자를 규명하기 위하여 전사개시점과 그의 상류에 결합하는 DNA 결합단백질을 탐색했다. 전사개시점을 포함하는 단편 A(-194/23)에는 52kDa, 50kDa, 40kDa의 단백질들이 결합했으며 전사개시점 상류의 DNA 단편 B(-393/-263)에는 52kDa, 50kDa, 40kDa의 단백질들이 결합한 반면 DNA 단편 C(-263/-195)는 53kDa단백질만이 결합했다. 그리고 이들 DNA 결합단백질들의 DNA 결합 활성에는 양이온이 요구되었다.
Park, Young-Seo;Yum, Do-Young;Kim, Jin-Man;Bai, Dong-Hoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제3권4호
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pp.224-231
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1993
The nucleotide sequence of the xylanase gene (xynY) from alkalophilic Bacillus sp. YC-335 was determined and analyzed. An open reading frame of 1, 062 base pairs for xynY gene was observed and encoded for a protein of 354 amino acids with a molecular weight of 38, 915. S1 nuclease mapping showed that the transcription initiation sites of the xynY gene were different in Bacillus sp. YC-335 and Escherichia coli HB101 (pYS55). S1 mapping also showed that -10 region of the xynY gene recognized by RNA polymerases of E. coli and Bacillus sp. YC-335 were TACAGT and TATGAT , respectively. A ribosome binding site sequence with the free energy of -17.0 Kcal/mol was observed 9 base pairs upstream from the unusual initiation codon, TTG. The proposed signal sequence consisted of 27 amino acids, 2 of which were basic amino acid residues and 21 were hydrophobic amino acid residues. When the amino acid sequences of xylanases were compared, Bacillus sp. YC-335 xylanase showed more than 50% homology with xylanases from B. pumilus, B. subtilis, and B. circulans.
MCM 단백질의 암세포내에서 과발현 되는 원인을 규명하기 위하여 mcm7, 2 promoter영역의 전사인자 결합 부위의 역할을 조사하였다. 암세포에서 promoter 활성은 정상세포보다 8배정도 높은 활성을 나타내 특유 전사인자의 존재를 시사하였다. Promoter영 역 에는 E2F 결합부위 와 Myc/Max/Mad단백질 결합 부위로 알려진 I-box가 존재한다. 이들 각각의 변이체 promoter를 작성하여 암세포와 정상세포에서 luciferase reporter 활성을 측정하는 것으로 각 영역의 역할을 검토하였다. 그 결과 정상세포 내에서는 강한 repressor존재 또는 활성을 negative로 조절 할 수 있는 complex의 존재로 promoter활성이 조절되는 반면 암세포 내에서는 I-box에 결합하여 promoter를 활성화시키는 특유 단백질의 존재가 시사되었다.
Park, So-Young;Park, Na-Hyun;Kwon, Eun-Jeong;Yoo, Mi-Ye
Journal of Life Science
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제9권2호
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pp.52-56
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1999
The Raf, a cytoplasmic serine/thereonine protein kinase, acts as an important mediator of signals involving cell proliferation, differentiation and development. Multiple regulatory elements should participate in the expression of D-raf, Drosophila homolog of human c-raf-1. In order to search regulatory factors involved in the D-raf promoter activation, we accomplished the yeast one-hybrid screening using D-raf promoter region from bp-330 to -309 with respect to the transcription initiation site as bait. After screening, sixteen independent positive clones of ${\beta}$-galactosidase activties were identified and sequenced. Two clones having 94-98% identity with daughterless and one clone having 93% identity with escargot by Blast search among these clones were screened.
The nucleotide sequence of the xylanase gene (xynS) from alkali-tolerant Bacillus sp. YA.14 was determined and analyzed. A 639 base pairs open reading frame for xynS gene was observed and encoded for a protein of 213 amino acids with a molecular weight of 23, 339. S1 nuclease mapping showed that the transcription initiation site of the xynS gene did not exist in the cloned DNA. Ribosome binding site sequence with the free energy of -18.8 Kcal/mol was observed 8 base pairs upstream from the initiation codon, ATG. The proposed signal sequence consisted of 28 amino acids, of which 3 were basic amino acid residues and 21 were hydrophobic amino acid residues. When the amino acid sequences of xylanases were compared, Bacillus sp. YA-14 xylanase showed 48% homology with Bacillus sp. YC-335 xylanase and 96% homology with xylanases from B. subtilis and B. circulans.
Xylan 분해 균주인 Bacillus stearothermophilus No. 236 분리균의 $\beta$-xylosidase 생산 유전자(xylA)의 염기 서열 및 transcription start site를 결정한 이전 연구 결과에 의하면 xylA 유전자는 매우 특이하게 UUG codon에서 translation이 시작되며 initiation codon 15dp 윗쪽에는 promoter로 추정되는 염기 서열을 가지고 있는 것으로 분석되었다. 이와 같은 xylA 유전자 promoter region의 구조는 E. coli에 클로닝된 xalA 유전자를 이용한 실험 결과로도 확인되었다. xalA promoter의 -10 element는 CATAAT로서 6개의 염기 중 5개가 그리고 -35 element의 경우는 TTGTTA로서 6개의 염기 중 4개가 consensus sequence와 일치되었으나 두 hexamer 사이의 거리가 최적 거리에서 크게 벗어난 12 bp인 것으로 분석되었다. 본 연구에서는 $\beta$-xylosidase의 대량 생산을 위한 연구의 일환으로 xalA promoter sequence의 체계적 구조 변화에 의한 promoter strength에 미치는 효과를 E. coli와 B. subtilis두 숙주 세포에서 조사 분석해 본 결과, 첫째로 두 promoter elements사이의 거리를 최적거리인 17 bp로 바꾸었을 때 xalA의 발현율은 E. coli에서는 1.6배, B. subtilis에서는 2.5배 정도 증가함을 보여주었다. 그리고 -35 element는 consensus sequence와 같이 5'쪽에서 네번째 위치에 있는 T$\longrightarrow$A로 변이 시켰을 때 E. coli경우 2.3배, 특히 B. subtilis에서는 35배나 되는 가장 높은 promoter 활성의 증가를 보였다. 그러나 -10 sequence의 경우 consensus sequence와 같이 5' 쪽에서 첫번째 위치에 있는 C$\longrightarrow$T로 transition시켰을 때 예상외로 오히려 발현율이 5~15배까지 낮아지는 특이한 결과를 얻었다. 따라서 본 연구 결과 xalA promoter의 경우 -10 sequence인 CATAAT의 C와 -35 element의 두 염기가 promoter활성에 있어 가장 중요한 염기임을 알 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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