IbMYB1, a transcription factor (TF) for R2R3-type MYB TFs, is a key regulator of anthocyanin biosynthesis during storage of sweet potatoes. Anthocyanins provide important antioxidants of nutritional value to humans, and also protect plants from oxidative stress. This study aimed to increase transgenic potatoes' (Solanum tuberosum cv. LongShu No.3) tolerance to environmental stress and enhance their nutritional value. Transgenic potato plants expressing IbMYB1 genes under the control of an oxidative stress-inducible peroxidase (SWPA2) promoter (referred to as SM plants) were successfully generated through Agrobacterium-mediated transformation. Two representative transgenic SM5 and SM12 lines were evaluated for enhanced tolerance to salinity, UV-B rays, and drought conditions. Following treatment of 100 mM NaCl, seedlings of SM5 and SM12 lines showed less root damage and more shoot growth than control lines expressing only an empty vector. Transgenic potato plants in pots treated with 400 mM NaCl showed high amounts of secondary metabolites, including phenols, anthocyanins, and flavonoids, compared with control plants. After treatment of 400 mM NaCl, transgenic potato plants also showed high DDPH radical scavenging activity and high PS II photochemical efficiency compared with the control line. Furthermore, following treatment of NaCl, UV-B, and drought stress, the expression levels of IbMYB1 and several structural genes in the flavonoid biosynthesis such as CHS, DFR, and ANS in transgenic plants were found to be correlated with plant phenotype. The results suggest that enhanced IbMYB1 expression affects secondary metabolism, which leads to improved tolerance ability in transgenic potatoes.
Woo, Seon Rang;Park, Jeong-Eun;Kim, Yang Hyun;Ju, Yeun-Jin;Shin, Hyun-Jin;Joo, Hyun-Yoo;Park, Eun-Ran;Hong, Sung Hee;Park, Gil Hong;Lee, Kee-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.12
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pp.1785-1790
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2013
The synthetic machinery of ATF4 (activating transcription factor 4) is activated in response to various stress conditions involved in nutrient restriction, endoplasmic reticulum homeostasis, and oxidation. Stress-induced inhibition of proteasome activity triggers the unfolded protein response and endoplasmic reticulum stress, where ATF4 is crucial for consequent biological events. In the current study, we showed that the $NAD^+$-dependent deacetylase, SIRT1, suppresses ATF4 synthesis during proteasome inhibition. SIRT1 depletion via transfection of specific siRNA into HeLa cells resulted in a significant increase in ATF4 protein, which was observed specifically in the presence of the proteasome inhibitor MG132. Consistent with SIRT1 depletion data, transient transfection of cells with SIRT1-overexpressing plasmid induced a decrease in the ATF4 protein level in the presence of MG132. Interestingly, however, ATF4 mRNA was not affected by SIRT1, even in the presence of MG132, indicating that SIRT1-induced suppression of ATF4 synthesis occurs under post-transcriptional control. Accordingly, we propose that SIRT1 serves as a negative regulator of ATF4 protein synthesis at the post-transcriptional level, which is observed during stress conditions, such as proteasome inhibition.
Park, Keon-Uk;Hwang, Mi-Sun;Suh, Seong-Il;Suh, Min-Ho;Kwon, Taeg-Kyu;Park, Jong-Wook;Cho, Jae-We;Choi, Eun-Ju;Baek, Won-Ki
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.35
no.4
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pp.299-308
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2000
Recently developed cDNA microarray or DNA chip technology allows expression monitoring of expression of hundreds and thousands of genes simultaneously and provides a format for identifying genes as well as changes in their activity. In order to search for changes in gene expression after X irradiation in HL60 cells, cDNA microarray technique was done. In this study, expression of 588 human genes (including oncogenes, tumor suppressor genes, cell cycle regulator genes, intracellular signal transduction modulator genes, apoptosis related genes, transcription factor genes, growth factors and receptor genes, cytokine genes, etc) were analyzed. For cDNA microarray analysis mRNAs were extracted from control and 8 Gy-irradiated HL60 cells. As a result the changes in expression of several genes were observed. This alteration of gene expression was confirmed by reverse transcription-polymerase chain reaction. The expression of heat shock 60 KD protein, c-jun, erythroid differentiation factor, CPP32, myeloid cell nuclear differentiation antigen, MAP kinase-activated protein kinase, interleukin-8, monocyte chemotactic peptide 1 and RANTES genes was increased, but the expression of p55CDC gene was decreased after X irradiation.
The Tcf-1 (T cell specific factor-1) is a transcription factor uniquely expressed in T-lineage cells. Its expression is developmentally regulated, which is high in the specific stage of immature thymocytes, but is much lower in mature T cells. We cloned the Tcf-1 gene by subtractive hybridization and found it to be highly expressed in the thymus compared to the mRNA level in the spleen as expected. Since apoptosis occurs enormously in the thymus, we were interested in whether Tcf-1 gene expression could be regulated by such a high level of apoptotic assault. By using T cell hybridoma 70.7 cells, we induced apoptosis by incubating cells with anti-CD3 antibody in vitro. After apoptosis induction, Tcf-1 mRNA level was found to be significantly reduced compared to normal cells. Since Tcf-1 is a transcription factor for the CD3-e gene, we tested how CD3-e expression is regulated in apoptotic cells. The surface level of CD3-e protein is also down-regulated after apoptosis induction. Such a down-modulation of CD3-e protein would reduce the TCR/CD3 complex on the cell surface, which would be an important regulator for T cell apoptosis.
Plants have evolved strategies to cope with drought stress by maximizing physiological capacity and adjusting developmental processes such as flowering time. The WOX13 orthologous group is the most conserved among the clade of WOX homeodomain-containing proteins and is found to function in both drought stress and flower development. In this study, we isolated and characterized OsWOX13 from rice. OsWOX13 was regulated spatially in vegetative organs but temporally in flowers and seeds. Overexpression of OsWOX13 (OsWOX13-ov) in rice under the rab21 promoter resulted in drought resistance and early flowering by 7-10 days. Screening of gene expression profiles in mature leaf and panicles of OsWOX13-ov showed a broad spectrum of effects on biological processes, such as abiotic and biotic stresses, exerting a cross-talk between responses. Protein binding microarray and electrophoretic mobility shift assay analyses supported ATTGATTG as the putative cis-element binding of OsWOX13. OsDREB1A and OsDREB1F, drought stress response transcription factors, contain ATTGATTG motif(s) in their promoters and are preferentially expressed in OsWOX13-ov. In addition, Heading date 3a and OsMADS14, regulators in the flowering pathway and development, were enhanced in OsWOX13-ov. These results suggest that OsWOX13 mediates the stress response and early flowering and, thus, may be a regulator of genes involved in drought escape.
Adipocyte differentiation is an ordered multistep process requiring the sequential activation of several groups of adipogenic transcription factors, including CCAAT/enhancer-binding protein-$\alpha$ and peroxisome proliferator-activated receptor-$\gamma$, and coactivators. In previous reports, we identified that replication factor C 140 (RFC140) protein played a critical role in regulating adipocyte differentiation as a coactivator. Here, we show expressional regulation of RFC140 and small RFC subunit, RFC38, following characterization of gene promoter of RFC140 and RFC38. In addition, RFC140 increases PPAR$\gamma$-mediated gene activation, resulting from direct protein-protein interaction of RFC140 and PPAR$\gamma$. Taken together, these findings demonstrate that the regulated expression of RFC140 and RFC38 by specific adipocyte transcription factors is required for the adipocyte differentiation process.
Ikaros, a transcription factor containing zinc-finger motif, has known as a critical regulator of hematopoiesis in immune system. Ikaros protein modulates the transcription of target genes via binding to the regulatory elements of the genes promoters. However the regulatory function of Ikaros in other organelle except nuclear remains to be determined. This study explored radiation-induced modulatory function of Ikaros in cytoplasm. The results showed that Ikaros protein lost its DNA binding ability after LDIR (low-dose ionizing radiation) exposure. Cell fractionation and Western blot analysis showed that Ikaros protein was translocated into cytoplasm from nuclear by LDIR. This was confirmed by immunofluorescence assay. We identified Autotaxin as a novel protein which potentially interacts with Ikaros through in vitro protein-binding screening. Co-immunoprecipitation assay revealed that Ikaros and Autotaxin are able to bind each other. Autotaxin is a crucial enzyme generating lysophosphatidic acid (LPA), a phospholipid mediator, which has potential regulatory effects on immune cell growth and motility. Our results indicate that LDIR potentially regulates immune system via protein-protein interaction of Ikaros and Autotaxin.
MYB-type transcription factors (TFs) play important roles in plant growth and development, and in the rapid responses to unfavorable environmental conditions. We recently reported the isolation and characterization of a rice (Oryza sativa) MYB TF, OsMYB102, which is involved in the regulation of leaf senescence by downregulating abscisic acid (ABA) biosynthesis and the downstream signaling response. Based on the similarities of their sequences and expression patterns, OsMYB102 appears to be a homolog of the Arabidopsis thaliana AtMYB44 TF. Since AtMYB44 is a key regulator of leaf senescence and abiotic stress responses, it is important to examine whether AtMYB44 homologs in other plants also act similarly. Here, we generated transgenic Arabidopsis plants expressing OsMYB102 (OsMYB102-OX). The OsMYB102-OX plants showed a delayed senescence phenotype during dark incubation and were more susceptible to salt and drought stresses, considerably similar to Arabidopsis plants overexpressing AtMYB44. Real-time quantitative PCR (RT-qPCR) revealed that, in addition to known senescence-associated genes, genes encoding the ABA catabolic enzymes AtCYP707A3 and AtCYP707A4 were also significantly upregulated in OsMYB102-OX, leading to a significant decrease in ABA accumulation. Furthermore, protoplast transient expression and chromatin immunoprecipitation assays revealed that OsMYB102 directly activated AtCYP707A3 expression. Based on our findings, it is probable that the regulatory functions of AtMYB44 homologs in plants are highly conserved and they have vital roles in leaf senescence and the abiotic stress responses.
OCT4, also known as POU5F1 (POU domain class 5 transcription factor 1), is a transcription factor that acts as a master regulator of pluripotency in embryonic stem cells and is one of the reprogramming factors required for generating induced pluripotent stem cells. The human OCT4 encodes three isoforms, OCT4A, OCT4B, and OCT4B1, which are generated by alternative splicing. Currently, the functions and expression patterns of OCT4B remain largely unknown in malignancies, especially in human glioblastomas. Here, we demonstrated the function of OCT4B in human glioblastomas. Among the isoform of OCT4B, OCT4B-190 ($OCT4B^{19kDa}$) was highly expressed in human glioblastoma stem cells and glioblastoma cells and was mainly detected in the cytoplasm rather than the nucleus. Overexpression of $OCT4B^{19kDa}$ promoted colony formation of glioblastoma cells when grown in soft agar culture conditions. Clinical data analysis revealed that patients with gliomas that expressed OCT4B at high levels had a poorer prognosis than patients with gliomas that expressed OCT4B at low levels. Thus, $OCT4B^{19kDa}$ may play a crucial role in regulating cancer cell survival and adaption in a rigid environment.
A plant-specific B3 domain and AP2 domain-containing transcription factor, RAV1 acts as a negative regulator of growth in many plant species and its transcription was down-regulated by BR and ABA. In this study, we found that RAV1-overexpressing transgenic plants showed abnormally developed ovules, resulting in reduced seed size, weight, and number in a silique. Interestingly, the endogenous expression of RAV1 fluctuated during seed development; it remained low during the early stage of seed development and sharply increased in the seed maturation stage. In plants, seed development is a complex process that requires coordinated growth of the embryo, endosperm, and maternal integuments. Among many genes that are associated with endosperm proliferation and embryo development, three genes consisting of SHB1, MINI3, and IKU2 form a small unit positively regulating this process, and their expression was regulated by BR and ABA. Using the floral stage-specific RNAs, we found that the expression of MINI3 and IKU2, the two downstream genes of the SHB1-MINI3-IKU2 cascade in the seed development pathway, were particularly reduced in the RAV1-overexpressing transgenic plants. We further determined that RAV1 directly binds to the promoter of MINI3 and IKU2, resulting in their repression. Direct treatment with brassinolide (BL) improved seed development of RAV1-overexpressing plants, but treatment with ABA severely worsened it. Overall, these results suggest that RAV1 is an additional negative player in the early stages of seed development, during which ABA and BR signaling are coordinated.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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