Chemically synthesized small interfering RNAs (siRNAs) can specifically knock-down expression of target genes via RNA interference (RNAi) pathway. To date, the length of synthetic siRNA duplex has been strictly maintained less than 30 bp, because an early study suggested that double-stranded RNAs (dsRNAs) longer than 30 bp could not trigger specific gene silencing due to the induction of non-specific antiviral interferon responses. Contrary to the current belief, here we show that synthetic dsRNA as long as 38 bp can result in specific target gene silencing without non-specific antiviral responses. Using this longer duplex structure, we have generated dsRNAs, which can simultaneously knock-down expression of two target genes (termed as dual-target siRNAs or dsiRNAs). Our results thus demonstrate the structural flexibility of gene silencing siRNAs, and provide a starting point to construct multifunctional RNA structures. The dsiRNAs could be utilized to develop a novel therapeutic gene silencing strategy against diseases with multiple gene alternations such as viral infection and cancer.
The number of commercially approved gene-edited crops is gradually increasing, and in South Korea, it has led to intense investment in gene-edited crop development to increase international competitiveness. However, as with genetically modified crops, the safety of gene-edited crops regarding unexpected risks for humans and the environment is subject to an ongoing debate. In particular, unintentional "off-target effects" have become the center of controversy. In this review, we discuss typical plant characteristics (including somatic variation and ploidy), the extent of various off-target effects in genetically modified crops generated via horizontal transfer in nature, and the off-target effects in commercial genetically modified crops. We conclude that most off-target effects possibly occurring in gene-edited crops are not expected to be critically harmful to humans or the environment. Therefore, existing regulation for genetically modified crops should be enough for the risk assessment of gene-edited crops.
Park, Hongmarn;Yoon, Yeongseong;Suk, Shinae;Lee, Ji Young;Lee, Younghoon
BMB Reports
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v.47
no.11
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pp.619-624
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2014
Antisense RNA is a type of noncoding RNA (ncRNA) that binds to complementary mRNA sequences and induces gene repression by inhibiting translation or degrading mRNA. Recently, several small ncRNAs (sRNAs) have been identified in Escherichia coli that act as antisense RNA mainly via base pairing with mRNA. The base pairing predominantly leads to gene repression, and in some cases, gene activation. In the current study, we examined how the location of target sites affects sRNA-mediated gene regulation. An efficient antisense RNA expression system was developed, and the effects of antisense RNAs on various target sites in a model mRNA were examined. The target sites of antisense RNAs suppressing gene expression were identified, not only in the translation initiation region (TIR) of mRNA, but also at the junction between the coding region and 3' untranslated region. Surprisingly, an antisense RNA recognizing the upstream region of TIR enhanced gene expression through increasing mRNA stability.
MicroRNAs (miRNAs) act as regulators of gene expression by binding to the 3' untranslated region (UTR) of target genes. They perform important biological functions in the various species. Among many miRNAs, miR-21-3p is known to serve vital functions in development and apoptosis in olive flounder. Using genomic and bioinformatic tools, evolutionary conservation of miR-21-3p was examined in various species, and expression pattern was analyzed in olive flounder. Conserved sequences (5'-CAGUCG-3') in numerous species were detected through the stem-loop structure of miR-21-3p. Thus, we analyzed target genes of miR-21-3p. Among them, 3' UTR region of PPIL2 gene indicated the highest binding affinity with miR-21-3p based on the minimum free energy value. The PPIL2 gene showed high expression levels in testis tissue of the olive flounder, whereas miR-21-3p showed rather ubiquitous expression patterns except in testis tissue, indicating that miR-21-3p seems to control the PPIL2 gene expression in a complementary repression manner in various tissues of olive flounder. Taken together, this current study contributes to infer the target gene candidates for the miR-21-3p using bioinformatics tools. Furthermore, our data offers important information on the relationship between miR-21-3p and target gene for further functional study.
Song, Jun;Giang, An;Lu, Yingchun;Pang, Shen;Chiu, Robert
BMB Reports
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v.41
no.5
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pp.358-362
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2008
RNA interference (RNAi) is the process of sequence-specific gene silencing. However, RNAi efficiency still needs to be improved for effective inhibition of target genes. We have developed an effective strategy to express multiple shRNAs (small hairpin RNA) simultaneously using multiple RNA Polymerase III (Pol III) promoters in a single vector. Our data demonstrate that multiple shRNAs expressed from Pol III promoters have a synergistic effect in repressing the target gene. Silencing of endogenous cyclophilin A (CypA) or key HIV viral genes by multiple shRNAs results in significant inhibition of the target gene.
Whales are marine mammals that are fully adapted to aquatic environment. Whales breathe by lungs so they require adaptive system to low oxygen concentration (hypoxia) while deep and prolonged diving. However, the study for the molecular mechanism underlying cetacean adaptation to hypoxia has been limited. Hypoxia-inducible factor (HIF) is the central transcription factor that regulates hypoxia-related gene expression. Here we identified HIF-binding sites in whale genome by phylogenetic footprinting and analyzed HIF-target genes to understand how whales cope with hypoxia. By comparison with the HIF-target genes of terrestrial mammals, it was suggested that whales may retain unique adaptation mechanisms to hypoxia.
Previously, we have identified 14 putative downstream target genes of Hoxc8 homeoprotein in F9 murine embryonic teratocarcinoma cells through proteomics analysis. Among those, we tested a possibility of a DNA-k type molecular chaperone, Grp78, as a direct downstream target of Hoxc8, by cloning a 2.4 kb upstream region of murine Grp78 into a reporter plasmid and by testing if Hoxc8 can regulate its expression. We observed that Hoxc8 proteins could transactivate the reporter gene, which was affected by small interference RNAs (siRNAs) against to Hoxc8, suggesting that Grp78 is a novel downstream target of Hoxc8 in vivo.
Of the various types of mice used for genome editing, conditional knock-out (cKO) mice serve as an important model for studying the function of genes. cKO mice can be produced using loxP knock-in (KI) mice in which loxP sequences (34 bp) are inserted on both sides of a specific region in the target gene. These mice can be used as KO mice that do not express a gene at a desired time or under a desired condition by cross-breeding with various Cre Tg mice. Genome editing has been recently made easy by the use of third-generation gene scissors, the CRISPR-Cas9 system. However, very few laboratories can produce mice for genome editing. Here we present a more efficient method for producing loxP KI mice. This method involves the use of an HDR vector as the target vector and ssODN as the donor DNA in order to induce homologous recombination for producing loxP KI mice. On injecting 20 ng/µL of ssODN, it was observed that the target exon was deleted or loxP was inserted on only one side. However, on injecting 10 ng/µL of the target HDR vector, the insertion of loxP was observed on both sides of the target region. In the first PCR, seven mice were identified to be loxP KI mice. The accuracy of their gene sequences was confirmed through Sanger sequencing. It is expected that the loxP KI mice produced in this study will serve as an important tool for identifying the function of the target gene.
We have examined the effect of bithorax complex genes on the expression of castor gene. During the embryonic stages 12-15, both Ultrabithorax and abdominal-A regulated the castor gene expression negatively, whereas Abdominal-B showed a positive correlation with the castor gene expression according to real-time PCR. To investigate whether ABD-B protein directly interacts with the castor gene, electrophoretic mobility shift assays were performed using the recombinant ABD-B homeodomain and oligonucleotides, which are located within the region 10 kb upstream of the castor gene. The results show that ABD-B protein directly binds to the castor gene specifically. ABD-B binds more strongly to oligonucleotides containing two 5'-TTAT-3' canonical core motifs than the probe containing the 5'-TTAC-3' motif. In addition, the sequences flanking the core motif are also involved in the protein-DNA interaction. The results demonstrate the importance of HD for direct binding to target sequences to regulate the expression level of the target genes.
RNA interference (RNAi), a process of sequence-specific gene suppression, has been known as a natural gene regulatory mechanism in a wide range of lower organisms. Recently, we have reported that a transfection of human U6 promoter (hU6) driven hairpin small-interference RNA (siRNA) plasmid specifically knocks down the target gene by post-transcriptional gene silencing in mammalian cells. Here we report that transfection of polymerase chain reaction (PCR) products, containing human U6 promoter with hairpin siRNA, knocks down the target gene expression in human teratocarcinoma NT-2/D1 cells. Moreover, we showed 3' end termination sequence, 5 Ts, is not critical elements for knocking down in PCR-based siRNA system. Therefore, the PCR-based siRNA system is a promising tool not only for the screening but also to temporally regulate gene expression in the human progenitor cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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