Severe fever with thrombocytopenia syndrome virus (SFTSV) is an emerging phlebovirus of the Phenuiviridae family that has been circulating in the following Asian countries: Vietnam, Myanmar, Taiwan, China, Japan, and South Korea. Despite the increasing infection rates and relatively high mortality rate, there is limited information available regarding SFTSV pathogenesis. In addition, there are currently no vaccines or effective antiviral treatments available. Previous reports have shown that SFTSV suppresses the host immune response and its nonstructural proteins (NSs) function as an antagonist of type I interferon (IFN), whose induction is an essential part of the host defense system against viral infections. Given that SFTSV NSs suppress the innate immune response by inhibiting type I IFN, we investigated the mechanism utilized by SFTSV NSs to evade IFNmediated response. Our co-immunoprecipitation data suggest the interactions between NSs and retinoic acid inducible gene-I (RIG-I) or TANK binding kinase 1 (TBK1). Furthermore, confocal analysis indicates the ability of NSs to sequester RIG-I and related downstream molecules in the cytoplasmic structures called inclusion bodies (IBs). NSs are also capable of inhibiting TBK1-interferon regulatory factor 3 (IRF3) interaction, and therefore prevent the phosphorylation and nuclear translocation of IRF3 for the induction of type I IFN. The ability of SFTSV NSs to interact with and sequester TBK1 and IRF3 in IBs demonstrate an effective yet unique method utilized by SFTSV to evade and suppress host immunity.
Interferon regulatory factor 3 (IRF3) integrates both immunological and non-immunological inputs to control cell survival and death. Small GTPases are versatile functional switches that lie on the very upstream in signal transduction pathways, of which duration of activation is very transient. The large number of homologous proteins and the requirement for site-directed mutagenesis have hindered attempts to investigate the link between small GTPases and IRF3. Here, we constructed a constitutively active mutant expression library for small GTPase expression using Gibson assembly cloning. Small-scale screening identified multiple GTPases capable of promoting IRF3 phosphorylation. Intriguingly, 27 of 152 GTPases, including ARF1, RHEB, RHEBL1, and RAN, were found to increase IRF3 phosphorylation. Unbiased screening enabled us to investigate the sequence-activity relationship between the GTPases and IRF3. We found that the regulation of IRF3 by small GTPases was dependent on TBK1. Our work reveals the significant contribution of GTPases in IRF3 signaling and the potential role of IRF3 in GTPase function, providing a novel therapeutic approach against diseases with GTPase overexpression or active mutations, such as cancer.
Hossen, Muhammad Jahangir;Hong, Yong Deog;Baek, Kwang-Soo;Yoo, Sulgi;Hong, Yo Han;Kim, Ji Hye;Lee, Jeong-Oog;Kim, Donghyun;Park, Junseong;Cho, Jae Youl
Journal of Ginseng Research
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제41권1호
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pp.43-51
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2017
Background: BIOGF1K, a compound K-rich fraction prepared from the root of Panax ginseng, is widely used for cosmetic purposes in Korea. We investigated the functional mechanisms of the anti-inflammatory and antioxidative activities of BIOGF1K by discovering target enzymes through various molecular studies. Methods: We explored the inhibitory mechanisms of BIOGF1K using lipopolysaccharide-mediated inflammatory responses, reporter gene assays involving overexpression of toll-like receptor adaptor molecules, and immunoblotting analysis. We used the 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) assay to measure the antioxidative activity. We cotransfected adaptor molecules, including the myeloid differentiation primary response gene 88 (MyD88) and Toll/interleukin-receptor domain containing adaptor molecule-inducing interferon-${\beta}$ (TRIF), to measure the activation of nuclear factor (NF)-${\kappa}B$ and interferon regulatory factor 3 (IRF3). Results: BIOGF1K suppressed lipopolysaccharide-triggered NO release in macrophages as well as DPPH-induced electron-donating activity. It also blocked lipopolysaccharide-induced mRNA levels of interferon-${\beta}$ and inducible nitric oxide synthase. Moreover, BIOGF1K diminished the translocation and activation of IRF3 and NF-${\kappa}B$ (p50 and p65). This extract inhibited the upregulation of NF-${\kappa}B$-linked luciferase activity provoked by phorbal-12-myristate-13 acetate as well as MyD88, TRIF, and inhibitor of ${\kappa}B$ ($I{\kappa}B{\alpha}$) kinase ($IKK{\beta}$), and IRF3-mediated luciferase activity induced by TRIF and TANK-binding kinase 1 (TBK1). Finally, BIOGF1K downregulated the NF-${\kappa}B$ pathway by blocking $IKK{\beta}$ and the IRF3 pathway by inhibiting TBK1, according to reporter gene assays, immunoblotting analysis, and an AKT/$IKK{\beta}$/TBK1 overexpression strategy. Conclusion: Overall, our data suggest that the suppression of $IKK{\beta}$ and TBK1, which mediate transcriptional regulation of NF-${\kappa}B$ and IRF3, respectively, may contribute to the broad-spectrum inhibitory activity of BIOGF1K.
Our body's immune system has defense mechanisms against pathogens such as viruses and bacteria. Immune responses are primarily initiated by the activation of toll-like receptors (TLRs). In particular, TLR4 is well-characterized and is known to be activated by gram-negative bacteria and tissue damage signals. TLR4 requires myeloid differentiation factor 2 (MD2) as a co-receptor to recognize its ligand, lipopolysaccharides (LPS), which is an extracellular membrane component of gram-negative bacteria. Gambogic acid is a xanthonoid isolated from brownish or orange resin extracted from Garcinia hanburyi. Its primary effect is tumor suppression. Since inflammatory responses are related to the development of cancer, we hypothesized that gambogic acid may regulate TLR4 activation. Our results demonstrated that gambogic acid decreased the expression of pro-inflammatory cytokines ($TNF-{\alpha}$, IL-6, IL-12, and $IL-1{\beta}$) in both mRNA and protein levels in bone marrow-derived primary macrophages after stimulation with LPS. Gambogic acid did not inhibit the activation of Interferon regulatory factor 3 (IRF3) induced by TBK1 overexpression in a luciferase reporter gene assay using IFN-${\beta}$-PRD III-I-luc. An in vitro kinase assay using recombinant TBK1 revealed that gambogic acid did not directly inhibit TBK1 kinase activity, and instead suppressed the binding of LPS to MD2, as determined by an in vitro binding assay and confocal microscopy analysis. Together, our results demonstrate that gambogic acid disrupts LPS interaction with the TLR4/MD2 complex, the novel mechanism by which it suppresses TLR4 activation.
Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV) is a newly emerging coronavirus which is zoonotic from bats and camels. Its infection in humans can be fatal especially in patients with preexisting conditions due to smoking and chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Among the 25 proteins encoded by MERS-CoV, 5 accessory proteins seem to be involved in viral evasion of the host immune responses. Here we report that ORF4a, ORF4b, and ORF8b proteins, alone or in combination, effectively antagonize nuclear factor kappa B ($NF-{\kappa}B$) activation. Interestingly, the inhibition of $NF-{\kappa}B$ by MERS-CoV accessory proteins was mostly at the level of pattern recognition receptors: melanoma differentiation-associated gene 5 (MDA5). ORF4a and ORF4b additively inhibit MDA5-mediated activation of $NF-{\kappa}B$ while that of retinoic acid-inducible gene 1 (RIG-I) is largely not perturbed. Of note, ORF8b was found to be a novel antagonist of MDA5-mediated $NF-{\kappa}B$ activation. In addition, ORF8b also strongly inhibits Tank-binding kinase 1 (TBK1)-mediated induction of $NF-{\kappa}B$ signaling. Taken together, MERS-CoV accessory proteins are involved in viral escape of $NF-{\kappa}B$-mediated antiviral immune responses.
Toll-like receptors (TLRs) induce innate immune responses that are essential for host defenses against invading microbial pathogens, thus leading to the activation of adaptive immune responses. In general, TLRs have two major downstream signaling pathways: the MyD88- and TRIF-dependent pathways, which lead to the activation of $NF-{\kappa}B$ and IRF3. Numerous studies have demonstrated that certain phytochemicals possessing anti-inflammatory effects inhibit $NF-{\kappa}B$ activation induced by pro-inflammatory stimuli, including lipopolysaccharides and $TNF{\alpha}$. However, the direct molecular targets for such anti-inflammatory phytochemicals have not been fully identified. Identifying the direct targets of phytochemicals within the TLR pathways is important because the activation of TLRs by pro-inflammatory stimuli can induce inflammatory responses that are the key etiological conditions in the development of many chronic inflammatory diseases. In this paper we discuss the molecular targets of resveratrol, (-)-epigallocatechin-3-gallate (EGCG), and curcumin in the TLR signaling pathways. Resveratrol specifically inhibited the TRIF pathway in TLR3 and TLR4 signaling, by targetting TBK1 and RIP1 in the TRIF complex. Furthermore, EGCG suppressed the activation of IRF3 by targetting TBK1 in the TRIF-dependent signaling pathways. In contrast, the molecular target of curcumin within the TLR signaling pathways is the receptor itself, in addition to $IKK{\beta}$. Together, certain dietary phytochemicals can modulate TLR-derived signaling and inflammatory target gene expression, and in turn, alter susceptibility to microbial infection and chronic inflammatory diseases.
Hwang, Hyun Sook;Lee, Mi Hyun;Choi, Min Ha;Kim, Hyun Ah
BMB Reports
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제52권5호
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pp.336-341
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2019
The cGAS-STING pathway plays an important role in pathogen-induced activation of the innate immune response. The 29-kDa amino-terminal fibronectin fragment (29-kDa FN-f) found predominantly in the synovial fluid of osteoarthritis (OA) patients increases the expression of catabolic factors via the toll-like receptor-2 (TLR-2) signaling pathway. In this study, we investigated whether 29-kDa FN-f induces inflammatory responses via the cyclic GMP-AMP synthase (cGAS)/stimulator of interferon gene (STING) pathway in human primary chondrocytes. The levels of cGAS and STING were elevated in OA cartilage compared with normal cartilage. Long-term treatment of chondrocytes with 29-kDa FN-f activated the cGAS/STING pathway together with the increased level of gamma-H2AX, a marker of DNA breaks. In addition, the expression of pro-inflammatory cytokines, including granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF/CSF-2), granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF/CSF-3), and type I interferon ($IFN-{\alpha}$), was increased more than 100-fold in 29-kDa FN-f-treated chondrocytes. However, knockdown of cGAS and STING suppressed 29-kDa FN-f-induced expression of GM-CSF, G-CSF, and $IFN-{\alpha}$ together with the decreased activation of TANK-binding kinase 1 (TBK1), interferon regulatory factor 3 (IRF3), and inhibitor protein ${\kappa}B{\alpha}$ ($I{\kappa}B{\alpha}$). Furthermore, NOD2 or TLR-2 knockdown suppressed the expression of GM-CSF, G-CSF, and $IFN-{\alpha}$ as well as decreased the activation of the cGAS/STING pathway in 29-kDa FN-f-treated chondrocytes. These data demonstrate that the cGAS/STING/TBK1/IRF3 pathway plays a critical role in 29-kDa FN-f-induced expression of pro-inflammatory cytokines.
Kim, Yong;Kim, Han Gyung;Han, Sang Yun;Jeong, Deok;Yang, Woo Seok;Kim, Jung-Il;Kim, Ji Hye;Yi, Young-Su;Cho, Jae Youl
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제21권5호
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pp.547-554
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2017
Previous studies have demonstrated the role of hydroquinone (HQ), a hydroxylated benzene metabolite, in modulating various immune responses; however, its role in macrophage-mediated inflammatory responses is not fully understood. In this study, the role of HQ in inflammatory responses and the underlying molecular mechanism were explored in macrophages. HQ down-regulated the expression of interferon $(IFN)-{\beta}$ mRNA in LPS-stimulated RAW264.7 cells without any cytotoxicity and suppressed interferon regulatory factor (IRF)-3-mediated luciferase activity induced by TIR-domain-containing adapter-inducing interferon-${\beta}$ (TRIF) and TANK-binding kinase 1 (TBK1). A mechanism study revealed that HQ inhibited IRF-3 phosphorylation induced by lipopolysaccharide (LPS), TRIF, and AKT by suppressing phosphorylation of AKT, an upstream kinase of the IRF-3 signaling pathway. IRF-3 phosphorylation is highly induced by wild-type AKT and poorly induced by an AKT mutant, AKT C310A, which is mutated at an inhibitory target site of HQ. We also showed that HQ inhibited IRF-3 phosphorylation by targeting all three AKT isoforms (AKT1, AKT2, and AKT3) in RAW264.7 cells and suppressed IRF-3-mediated luciferase activities induced by AKT in HEK293 cells. Taken together, these results strongly suggest that HQ inhibits the production of a type I IFN, $IFN-{\beta}$, by targeting AKTs in the IRF-3 signaling pathway during macrophage-mediated inflammation.
The type I interferons (IFNs) play a vital role in activation of innate immunity in response to viral infection. Accordingly, viruses have evolved to employ various survival strategies to evade innate immune responses induced by type I IFNs. For example, hepatitis E virus (HEV) encoded papain-like cysteine protease (PCP) has been shown to inhibit IFN activation signaling by suppressing K63-linked de-ubiquitination of retinoic acid-inducible gene I (RIG-I) and TANK-binding kinase 1 (TBK1), thus effectively inhibiting down-stream activation of IFN signaling. In the present study, we demonstrated that HEV inhibits polyinosinic-polycytidylic acid (poly(I:C))-induced $IFN-{\beta}$ transcriptional induction. Moreover, by using reporter assay with individual HEV-encoded gene, we showed that HEV methyltransferase (MeT), a non-structural protein, significantly decreases RIG-I-induced $IFN-{\beta}$ induction and $NF-{\kappa}B$ signaling activities in a dose-dependent manner. Taken together, we report here that MeT, along with PCP, is responsible for the inhibition of RIG-I-induced activation of type I IFNs, expanding the list of HEV-encoded antagonists of the host innate immunity.
Lee, Jeon-Soo;Lee, Joo Young;Lee, Mi Young;Hwang, Daniel H.;Youn, Hyung Sun
Molecules and Cells
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제25권2호
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pp.253-257
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2008
Acrolein is a highly electrophilic ${\alpha},{\beta}$-unsaturated aldehyde present in a number of environmental sources, especially cigarette smoke. It reacts strongly with the thiol groups of cysteine residues by Michael addition and has been reported to inhibit nuclear $factor-{\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$) activation by lipopolysaccharide (LPS). The mechanism by which it inhibits $NF-{\kappa}B$ is not clear. Toll-like receptors (TLRs) play a key role in sensing microbial components and inducing innate immune responses, and LPS-induced dimerization of TLR4 is required for activation of downstream signaling pathways. Thus, dimerization of TLR4 may be one of the first events involved in activating TLR4-mediated signaling pathways. Stimulation of TLR4 by LPS activates both myeloid differential factor 88 (MyD88)- and TIR domain-containing adapter inducing $IFN{\beta}$ (TRIF)-dependent signaling pathways leading to activation of $NF-{\kappa}B$ and IFN-regulatory factor 3 (IRF3). Acrolein inhibited $NF-{\kappa}B$ and IRF3 activation by LPS, but it did not inhibit $NF-{\kappa}B$ or IRF3 activation by MyD88, inhibitor ${\kappa}B$ kinase $(IKK){\beta}$, TRIF, or TNF-receptor-associated factor family member-associated $NF-{\kappa}B$ activator (TANK)-binding kinase 1 (TBK1). Acrolein inhibited LPS-induced dimerization of TLR4, which resulted in the down-regulation of $NF-{\kappa}B$ and IRF3 activation. These results suggest that activation of TLRs and subsequent immune/inflammatory responses induced by endogenous molecules or chronic infection can be modulated by certain chemicals with a structural motif that enables Michael addition.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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