PTPRT/RPTPρ is the most recently isolated member of the type IIB receptor-type protein tyrosine phosphatase family and its expression is restricted to the nervous system. PTPRT plays a critical role in regulation of synaptic formation and neuronal development. When PTPRT was overexpressed in hippocampal neurons, synaptic formation and dendritic arborization were induced. On the other hand, knockdown of PTPRT decreased neuronal transmission and attenuated neuronal development. PTPRT strengthened neuronal synapses by forming homophilic trans dimers with each other and heterophilic cis complexes with neuronal adhesion molecules. Fyn tyrosine kinase regulated PTPRT activity through phosphorylation of tyrosine 912 within the membrane-proximal catalytic domain of PTPRT. Phosphorylation induced homophilic cis dimerization of PTPRT and resulted in the inhibition of phosphatase activity. BCR-Rac1 GAP and Syntaxin-binding protein were found as new endogenous substrates of PTPRT in rat brain. PTPRT induced polymerization of actin cytoskeleton that determined the morphologies of dendrites and spines by inhibiting BCR-Rac1 GAP activity. Additionally, PTPRT appeared to regulate neurotransmitter release through reinforcement of interactions between Syntaxin-binding protein and Syntaxin, a SNARE protein. In conclusion, PTPRT regulates synaptic function and neuronal development through interactions with neuronal adhesion molecules and the dephosphorylation of synaptic molecules. [BMB Reports 2015; 48(5): 249-255]
Kim, Somi;Kim, TaeHyun;Lee, Hye-Ryeon;Kong, Young-Yun;Kaang, Bong-Kiun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.19
no.6
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pp.515-522
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2015
Notch signaling is a key regulator of neuronal fate during embryonic development, but its function in the adult brain is still largely unknown. Mind bomb-2 (Mib2) is an essential positive regulator of the Notch pathway, which acts in the Notch signal-sending cells. Therefore, genetic deletion of Mib2 in the mouse brain might help understand Notch signaling-mediated cell-cell interactions between neurons and their physiological function. Here we show that deletion of Mib2 in the mouse brain results in impaired hippocampal spatial memory and contextual fear memory. Accordingly, we found impaired hippocampal synaptic plasticity in Mib2 knock-out (KO) mice; however, basal synaptic transmission did not change at the Schaffer collateral-CA1 synapses. Using western blot analysis, we found that the level of cleaved Notch1 was lower in Mib2 KO mice than in wild type (WT) littermates after mild foot shock. Taken together, these data suggest that Mib2 plays a critical role in synaptic plasticity and spatial memory through the Notch signaling pathway.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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1998.06a
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pp.14-14
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1998
Mammalian brian contains substantial amounts of chelatable zinc in presynaptic vesicles of certain glutamatergic terminals. The synaptic zinc is released with intense neuronal activity, suggesting its role in synaptic transmission. However, in pathological conditions, zinc may get released too excessively, which may contribute to neuronal death as shown in cortical cultures.(omitted)
Background: Brain-derived neurotrophic factor (BDNF)-tropomyosin-related kinase B (TrkB) plays a critical role in the pathogenesis of depression by modulating synaptic structural remodeling and functional transmission. Previously, we have demonstrated that the ginsenoside Rb1 (Rb1) presents a novel antidepressant-like effect via BDNF-TrkB signaling in the hippocampus of chronic unpredictable mild stress (CUMS)-exposed mice. However, the underlying mechanism through which Rb1 counteracts stress-induced aberrant hippocampal synaptic plasticity via BDNF-TrkB signaling remains elusive. Methods: We focused on hippocampal microRNAs (miRNAs) that could directly bind to BDNF and are regulated by Rb1 to explore the possible synaptic plasticity-dependent mechanism of Rb1, which affords protection against CUMS-induced depression-like effects. Results: Herein, we observed that brain-specific miRNA-134 (miR-134) could directly bind to BDNF 30 UTR and was markedly downregulated by Rb1 in the hippocampus of CUMS-exposed mice. Furthermore, the hippocampus-targeted miR-134 overexpression substantially blocked the antidepressant-like effects of Rb1 during behavioral tests, attenuating the effects on neuronal nuclei-immunoreactive neurons, the density of dendritic spines, synaptic ultrastructure, long-term potentiation, and expression of synapse-associated proteins and BDNF-TrkB signaling proteins in the hippocampus of CUMS-exposed mice. Conclusion: These data provide strong evidence that Rb1 rescued CUMS-induced depression-like effects by modulating hippocampal synaptic plasticity via the miR-134-mediated BDNF signaling pathway.
In prion disease, spongiform neurodegeneration is preceded by earlier synaptic dysfunction. There is evidence that soluble N-ethylmaleimide sensitive factor attachment receptor (SNARE) complex formation is reduced in scrapie-infected in vivo models, which might explain this synaptic dysfunction because SNARE complex plays a crucial role in neuroexocytosis. In the present study, however, it is shown that prion protein (PrP) does not interfere with SNARE complex formation of 3 SNARE proteins: syntaxin 1a, SNAP-25, and synaptobrevin. Sodium dodecyl sulfate-resistant complex formation, SNAREdriven membrane fusion, and neuroexocytosis of PC12 cells were not altered by PrP. Thus, PrP does not alter synaptic function by directly interfering with SNARE complex formation.
Multiple synaptic boutons (MSBs) have been reported to be synapse with two or more postsynaptic terminals in one presynaptic terminal. These MSBs are known to be increased by various brain stimuli. In the motor cortex, increased number of MSB was observed in both acrobat training (AC) model and traumatic brain injury (TBI) model. Interestingly one is a physiological stimuli and the other is pathological insult. The purpose of this study is to compare the connectivity of MSBs between AC model and TBI model in the cerebral motor cortex, based on the hypothesis that the connectivity of MSBs might be different according to the models. The motor cortex was dissected from perfused brain of each experimental animal, the samples were prepared for routine transmission electron microscopy. The 60~70 serial sections were mounted on the one-hole grid and MSB was analyzed. The 3-dimensional analysis revealed that 94% of MSBs found in AC model synapse two postsynaptic spines from same dendrite. But, 28% MSBs from TBI models synapse two postsynaptic spines from different dendrite. This imply that the MSBs observed in motor cortex of AC model and TBI model might have different circuits for the processing the information.
To identify the structural basis of mutations that affect synaptic transmission we have begun quantitative ultrastructural descriptions of synapses in cultured Drosophila embryonic neurons. In wild-type cultures, synapses are distinguished by the parallel arrangement of a thickened pre- and post synaptic membrane separated by a synaptic cleft. The presynaptic active zones and postsynaptic densities are defined by electron dense material close to the membrane. Presynaptic regions are also characterized by the presence of one or more electron dense regions, presynaptic densities, around which a variable number of small, clear core synaptic vesicles (mean $35.1{\pm}1.44$ nm in diameter) are clustered. Subsets of these vesicles are in direct contact with either the presynaptic density or the membrane and are considered morphologically docked. A small number of larger, dense core vesicles are also observed in most presynaptic profiles.
Proteomic analyses of synaptic vesicle fraction from rat brain have been performed for the better understanding of vesicle regulation and signal transmission. Two different approaches were applied to identify proteins in synaptic vesicle fraction. First, the isolated synaptic vesicle proteins were treated with trypsin, and the resulting peptides were analyzed using a high-pressure capillary reversed phase liquid chromatography/tandem mass spectrometry (cRPLC/MS/MS). Alternatively, proteins were separated by two-dimensional gel electrophoresis (2DE) and identified by matrix-assisted laser desorption ionization mass spectrometry (MALDI-TOF/MS). Total 18 and 52 proteins were identified from cRPLC/MS-MS and 2DE-MALDI-TOF-MS analysis, respectively. Among them only 2 proteins were identified by both methods. Of the proteins identified, 70% were soluble proteins and 30% were membrane proteins. They were categorized by their functions in vesicle trafficking and biogenesis, energy metabolism, signal transduction, transport and unknown functions. Among them, 27 proteins were not previously reported as synaptic proteins. The cellular functions of unknown proteins were estimated from the analysis of domain structure, expression profile and predicted interaction partners.
Fluoxetine, widely used for the treatment of depression, is known to be a selective serotonin reuptake inhibitor (SSRI), however, there are also reports that fluoxetine has direct effects on several receptors. Employing whole-cell patch clamp techniques in rat brain slice, we studied the effects of fluoxetine on corticostriatal synaptic transmission by measuring the change in spontaneous excitatory postsynaptic currents (sEPSC). Acute treatment of rat brain slice with fluoxetine ($10{\mu}M$) significantly decreased the amplitude of sEPSC ($8.1{\pm}3.3$%, n=7), but did not alter its frequency ($99.1{\pm}4.7$%, n=7). Serotonin ($10{\mu}M$) also significantly decreased the amplitude ($81.2{\pm}3.9$%, n=4) of sEPSC, but did not affect its frequency ($105.8{\pm}8.0$, n=4). The effect of fluoxetine was found to have the same trend as that of serotonin. We also found that the inhibitory effect of fluoxetine on sEPSC amplitude ($93.0{\pm}1.9$%, n=8) was significantly blocked, but not serotonin ($84.3{\pm}1.6$%, n=4), when the brain slice was incubated with p-chloroamphetamine ($10{\mu}M$), which depletes serotonin from the axon terminals and blocks its reuptake. These results suggest that fluoxetine inhibits corticostriatal synaptic transmission through postsynaptic, and that these effects are exerted through both serotonin dependent and independent mechanism.
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